實施血液原蟲檢驗第一頁，共三十頁，2022年，8月28日1.會操作薄血片、厚血片、瑞姬氏染色檢查蟲體；2.瘧原蟲紅內(nèi)期蟲體；3.能總結(jié)檢驗過程中的質(zhì)量控制要點；4.會對檢驗過程進行評價。能力目標第二頁，共三十頁，2022年，8月28日1．瘧原蟲紅內(nèi)期形態(tài)特征；2.薄血片、厚血片檢驗注意事項；知識目標第三頁，共三十頁，2022年，8月28日1.培養(yǎng)規(guī)范操作的習慣2.嚴謹細致的檢驗素質(zhì)3.醫(yī)學術(shù)語表達的能力素質(zhì)目標第四頁，共三十頁，2022年，8月28日觀察瘧原蟲圖片和實物，分組討論。要求：大小、顏色、形狀、特征第五頁，共三十頁，2022年，8月28日間日瘧原蟲第六頁，共三十頁，2022年，8月28日間日瘧原蟲在RBC內(nèi)的形態(tài)三期六種形態(tài)滋養(yǎng)體期：大、小滋養(yǎng)體裂殖體期：成熟、未成熟裂殖體配子體期：雌、雄配子體瘧原蟲形態(tài)第七頁，共三十頁，2022年，8月28日胞質(zhì)：較少有空泡，呈環(huán)狀，細胞核：位于蟲體一側(cè)，頗似紅寶石戒指;大小：為紅細胞直徑的1/3;紅細胞：沒有明顯的形態(tài)變化。瑞氏或姬氏染色后，核：紅色，胞漿：蘭色，瘧色素：代謝產(chǎn)物呈棕黃色。小滋養(yǎng)體（環(huán)狀體）小滋養(yǎng)體（環(huán)狀體）第八頁，共三十頁，2022年，8月28日時間：10小時，胞核：增大胞質(zhì)：增多，有空泡，有偽足，不規(guī)則，出現(xiàn)瘧色素紅細胞：脹大、變形，顏色變淡，出現(xiàn)鮮紅色的薛氏小點。

大滋養(yǎng)體第九頁，共三十頁，2022年，8月28日時間：40h胞質(zhì)：變圓，無空泡核:開始分裂。少于12個。瘧色素:開始集結(jié)。未成熟裂殖體第十頁，共三十頁，2022年，8月28日時間：48小時，核:

12～24個。（平均16個），胞質(zhì)：分裂，裂殖子瘧色素集結(jié)成塊。成熟裂殖體第十一頁，共三十頁，2022年，8月28日蟲體：較大，球形，占滿脹大的紅細胞。胞質(zhì)：致密，深染呈藍色。核：小，致密，偏一旁。瘧色素：分散

雌配子體第十二頁，共三十頁，2022年，8月28日

蟲體：較小，胞質(zhì)：淺灰紅色。核：大，疏松，中央。瘧色素：分散雄配子體第十三頁，共三十頁，2022年，8月28日第十四頁，共三十頁，2022年，8月28日第十五頁，共三十頁，2022年，8月28日環(huán)纖細,約為RBC直徑的1/5；一個環(huán)狀體可有2核；一個紅細胞可被多個環(huán)狀體寄生；位于紅細胞的邊緣的環(huán)狀體形如“飛鳥狀”。惡性瘧原蟲環(huán)狀體第十六頁，共三十頁，2022年，8月28日新月形，兩端較尖核小致密，位中央。瘧色素黑褐色，分布于核周圍。惡性瘧原蟲雌配子體第十七頁，共三十頁，2022年，8月28日臘腸形，兩端鈍圓胞質(zhì)色藍而略帶紅核大疏松，位中央瘧色素黃棕色，小桿狀，在核周圍較多惡性瘧原蟲雄配子體第十八頁，共三十頁，2022年，8月28日第十九頁，共三十頁，2022年，8月28日紅外期——肝細胞內(nèi)裂殖體紅細胞外期第二十頁，共三十頁，2022年，8月28日雄配子形成過程表現(xiàn)為出絲現(xiàn)象?！崤渥芋w核分裂為4-8塊，胞質(zhì)向外伸出4-8條細絲，核再分別進入每條細絲內(nèi)，細絲脫離母體就形成4－8個♂配子。蚊體配子生殖第二十一頁，共三十頁，2022年，8月28日♀♂配子受精，形成圓球形的合子，數(shù)小時后變?yōu)殚L形的能活動的動合子。動合子第二十二頁，共三十頁，2022年，8月28日動合子穿過蚊胃壁，在胃彈性纖維膜下，形成球形的卵囊(oocyst)。

囊合子（卵囊）第二十三頁，共三十頁，2022年，8月28日卵囊逐漸長大并向蚊胃壁外突出，囊內(nèi)的核和胞質(zhì)反復(fù)分裂進行孢子增殖，生成成千上萬的子孢子孢子增殖第二十四頁，共三十頁，2022年，8月28日子孢子呈梭形，10～15μm×1μm。主動從卵囊壁鉆出或因卵囊破裂后散出，隨血淋巴鉆入蚊涎腺。子孢子形成第二十五頁，共三十頁，2022年，8月28日蚊唾液腺內(nèi)含有瘧原蟲子孢子當雌蚊再吸人血時，子孢子隨蚊的唾液進入人體雌性按蚊（蟲媒）--終宿主第二十六頁，共三十頁，2022年，8月28日血涂片制作及染色1．材料：載玻片，消毒棉球，酒精，剪刀，蠟筆，吸管，蒸餾水，培養(yǎng)皿，姬氏或瑞氏染液，緩沖液等。2方法：薄血膜加厚血膜技能操作第二十七頁，共三十頁，2022年，8月28日1.薄血膜制備法（1）器材：刺血針、載玻片、酒精棉球、干棉球。（2）試劑：瑞氏或姬氏染液、甲醇。（3）操作方法：①取一潔凈無油脂的載玻片作載片及一張兩端邊緣光滑的玻片作推片備用。②以70％酒精棉球消毒病人耳垂，待干后，針刺取血③則用推片取適量血一滴，30～45度角與載片一端接觸后，迅速向前推成一薄膜，推動時注意保持一定的速度和兩片間的角度，切忌過分用力成中間停頓，否則將使血球破碎或涂片不勻。④涂片完畢，將血片置空氣中干燥。⑤血片染色：瑞氏染色（甲醇溶液）a．染色前在已經(jīng)干燥的血膜兩邊用臘筆劃兩條線。ｂ．滴加瑞氏染液在血膜上，使血膜全部為染液所遮蓋，靜置1分鐘。c．加等量蒸餾水或PH7.0緩沖液，然后輕輕搖動血片，使水與染液混勻，靜止5～10分鐘，一般至液面發(fā)生明顯的一層金屬光澤浮膜為止。d．注意點：①本次實驗，薄血膜制作所用之血，系采用感染伯氏瘧原蟲的小白鼠血液，可將小白鼠尾巴剪斷一小節(jié)后，擠血制片。②沖去染液時勿先將染液倒掉，應(yīng)一邊沖洗一邊讓染液自然流失否則染液色素易沉著于薄血膜上，而影響原蟲的檢查。第二十八頁，共三十頁，2022年，8月28日（1）器材：刺血針、載玻片、酒精棉球、干棉球。（2）試劑：瑞氏或姬氏染液、甲醇。（3）操作方法：①取一潔凈無油脂的載玻片作載片及一張兩端邊緣光滑的玻片作推片備用。②以70％酒精棉球消毒病人耳垂，待干后，針刺取血③則用推片取適量血一滴，30～45度角與載片一端接觸后，迅速向前推成一薄膜，推動時注意保持一定的速度和兩片間的角度，切忌過分用力成中間停頓，否則將使血球破碎或涂片不勻。④涂片完畢，將血片置空氣中干燥。⑤血片染色：瑞氏染色（甲醇溶液）薄血膜制備法第二十九頁，共三十頁，2022年，8月28日a．染色前在已經(jīng)干燥的血膜兩邊用