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人IFNα與BFA對日本乙型腦炎病毒增殖抑制的分子機制解析一、引言1.1研究背景與意義日本乙型腦炎病毒(JapaneseEncephalitisVirus,JEV),是引發(fā)日本乙型腦炎(JapaneseEncephalitis,JE)的病原體,這是一種極具危害的急性傳染病,主要通過蚊蟲叮咬傳播,廣泛流行于亞洲和西太平洋地區(qū)。據(jù)世界衛(wèi)生組織(WHO)統(tǒng)計,每年約有68000例乙腦病例,至少導(dǎo)致10000-15000人死亡,給公共衛(wèi)生帶來了沉重負擔(dān)。乙腦病毒宿主范圍廣泛,包括人類、馬、豬等多種動物。其中,豬不僅感染率高,可達100%,而且毒血癥期較長,對人乙型腦炎的流行起到了關(guān)鍵的促進作用,是主要的傳染源。在我國,除新疆、西藏、青海外,其他地區(qū)均為乙腦疫區(qū),四川省的成都平原及東北部曾是高發(fā)區(qū),近年來遂寧、達州等邊遠貧困地區(qū)也成為高發(fā)區(qū)域。乙腦主要侵襲年幼的兒童,2-4歲發(fā)病率最高,兒童小于6歲的占68.1%,超過90%的病例發(fā)生在小于15歲的兒童。乙腦病毒對中樞神經(jīng)系統(tǒng)具有高度的嗜性,一旦感染,可引發(fā)嚴重的腦炎癥狀,如高熱、意識障礙、抽搐、呼吸衰竭等,致死率約為20-40%,即使有幸存活,仍有50%的患者會留下永久性的中樞神經(jīng)系統(tǒng)后遺癥,如癡呆、失語、肢體癱瘓、精神失常等,給患者及其家庭帶來了巨大的痛苦和負擔(dān)。目前,對于乙腦的治療缺乏特效藥物,主要依賴對癥和支持治療??刂埔夷X流行的主要措施是接種疫苗和防蚊滅蚊,但疫苗接種存在覆蓋率不足、免疫效果參差不齊等問題,而防蚊滅蚊措施受環(huán)境因素影響較大,難以完全杜絕病毒傳播。因此,深入研究乙腦病毒的增殖機制,尋找有效的抑制方法,具有重要的現(xiàn)實意義。人干擾素α(humanInterferonα,hIFNα)作為一種重要的細胞因子,具有強大的抗病毒、免疫調(diào)節(jié)等生物學(xué)活性。在病毒感染初期,機體免疫系統(tǒng)會迅速分泌IFNα,激活一系列抗病毒基因的表達,從而抑制病毒的復(fù)制和傳播。眾多研究表明,IFNα在對抗多種病毒感染中發(fā)揮了關(guān)鍵作用,如乙肝病毒、丙肝病毒、流感病毒等。然而,關(guān)于IFNα對日本乙型腦炎病毒增殖的抑制作用及其機制,仍有待深入探究。布雷菲德菌素A(BrefeldinA,BFA)是一種由真菌產(chǎn)生的大環(huán)內(nèi)酯類抗生素,它能夠特異性地干擾細胞內(nèi)的囊泡運輸,破壞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)到高爾基體的蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)運途徑,從而影響病毒的裝配和釋放過程。在對某些病毒的研究中發(fā)現(xiàn),BFA能夠顯著抑制病毒的增殖,但其對日本乙型腦炎病毒的作用效果及機制尚未明確。本研究聚焦于人IFNα及BFA對日本乙型腦炎病毒增殖的抑制作用,旨在揭示其潛在的抗病毒機制,為乙腦的防治提供新的理論依據(jù)和治療策略。通過深入研究,有望發(fā)現(xiàn)新的抗病毒靶點,為開發(fā)新型抗乙腦病毒藥物奠定基礎(chǔ),對于降低乙腦的發(fā)病率和死亡率,減少后遺癥的發(fā)生,保護人類和動物的健康具有重要的科學(xué)價值和臨床意義。1.2國內(nèi)外研究現(xiàn)狀在乙腦防治領(lǐng)域,人IFNα和BFA的抗病毒研究是重要方向。人IFNα具有強大的抗病毒活性,其作用機制主要通過與細胞表面的特異性受體結(jié)合,激活JAK-STAT信號通路,誘導(dǎo)一系列干擾素刺激基因(ISGs)的表達,這些ISGs編碼的蛋白從多個環(huán)節(jié)抑制病毒的增殖,如阻斷病毒的吸附、侵入、脫殼、核酸復(fù)制、轉(zhuǎn)錄、翻譯以及病毒粒子的裝配和釋放等過程。在乙肝病毒感染的研究中,IFNα能夠誘導(dǎo)產(chǎn)生2'-5'寡腺苷酸合成酶(2'-5'OAS)和蛋白激酶R(PKR),2'-5'OAS激活RNA酶L,降解病毒RNA,PKR則磷酸化真核翻譯起始因子eIF2α,抑制病毒蛋白的合成。在丙肝病毒感染的細胞模型中,IFNα可上調(diào)Mx蛋白、ISG15等抗病毒蛋白的表達,有效抑制病毒的復(fù)制。在日本乙型腦炎病毒的研究中,已有學(xué)者關(guān)注到IFNα的潛在作用。部分研究表明,IFNα在體外細胞實驗中對JEV的增殖具有一定的抑制效果。通過將不同濃度的IFNα作用于感染JEV的細胞,利用Westernblot、噬斑減少試驗等方法檢測病毒蛋白表達和病毒滴度,發(fā)現(xiàn)隨著IFNα濃度的增加,病毒蛋白的表達量顯著降低,病毒滴度也明顯下降,說明IFNα能夠有效抑制JEV在細胞內(nèi)的增殖。然而,目前對于IFNα抑制JEV增殖的具體分子機制尚未完全明確,IFNα誘導(dǎo)產(chǎn)生的眾多ISGs中,哪些蛋白在抗JEV感染中發(fā)揮關(guān)鍵作用,以及它們?nèi)绾螀f(xié)同作用來阻斷病毒的生命周期,仍有待深入探究。BFA作為一種能夠干擾細胞內(nèi)囊泡運輸?shù)乃幬铮淇共《緳C制主要是通過破壞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)到高爾基體的蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)運途徑,影響病毒的裝配和釋放。在對流感病毒的研究中,BFA能夠阻止流感病毒血凝素(HA)從內(nèi)質(zhì)網(wǎng)向高爾基體的轉(zhuǎn)運,使HA無法正確糖基化和折疊,從而影響病毒粒子的組裝和釋放,顯著降低病毒的感染性。在登革病毒的研究中,BFA處理感染細胞后,發(fā)現(xiàn)病毒的非結(jié)構(gòu)蛋白NS1和NS3在細胞內(nèi)的分布發(fā)生改變,無法正常轉(zhuǎn)運到細胞膜表面,進而影響病毒的復(fù)制和釋放。針對JEV,目前關(guān)于BFA的研究相對較少。有限的研究顯示,BFA在一定程度上能夠抑制JEV在細胞內(nèi)的增殖。通過MTS法檢測不同濃度BFA對感染JEV細胞活力的影響,確定安全有效的藥物濃度范圍,再利用IFA觀察、病毒滴度檢測等方法,發(fā)現(xiàn)BFA處理后的細胞中,JEV的抗原表達量減少,病毒滴度降低,表明BFA對JEV的增殖具有抑制作用。但BFA影響JEV增殖的具體作用靶點以及在JEV感染過程中,細胞內(nèi)囊泡運輸途徑的改變?nèi)绾斡绊懖《镜纳芷诘葐栴},還缺乏深入系統(tǒng)的研究。當(dāng)前對于人IFNα及BFA抑制日本乙型腦炎病毒增殖的研究仍存在不足。在IFNα方面,雖然已知其具有抗病毒活性,但在JEV感染背景下,IFNα信號通路的激活模式、關(guān)鍵ISGs的篩選及作用機制等方面研究不夠深入;在BFA研究中,對其抗JEV的作用機制、最佳作用濃度和時間窗等缺乏全面了解。深入研究人IFNα及BFA抑制JEV增殖的機制,對于開發(fā)新型抗乙腦病毒藥物和治療策略具有重要意義。1.3研究目標(biāo)與內(nèi)容本研究旨在深入探討人IFNα及BFA抑制日本乙型腦炎病毒增殖的作用機制,為乙腦的防治提供新的理論依據(jù)和潛在的治療策略。具體研究內(nèi)容如下:人IFNα抑制JEV增殖的作用研究:通過在體外細胞實驗中,將不同濃度的重組人IFNα作用于感染JEV的細胞,利用Westernblot技術(shù)檢測病毒蛋白表達水平,運用噬斑減少試驗測定病毒滴度,明確人IFNα對JEV增殖的抑制效果,并分析其劑量依賴性關(guān)系。同時,設(shè)置不同的時間點,進行Westernblot和噬斑減少試驗,探究人IFNα抑制JEV增殖的時效關(guān)系,了解其在不同時間階段對病毒增殖的影響規(guī)律。人IFNα抑制JEV增殖的機制研究:鑒于IFNα主要通過誘導(dǎo)ISGs發(fā)揮抗病毒作用,重點研究在JEV感染背景下,IFNα誘導(dǎo)產(chǎn)生的關(guān)鍵ISGs。利用基因過表達技術(shù),使細胞過表達可能的關(guān)鍵ISGs,檢測JEV在細胞內(nèi)的增殖情況,判斷這些ISGs對JEV增殖的影響;運用RNA干擾(RNAi)技術(shù),下調(diào)關(guān)鍵ISGs的表達,觀察其對IFNα抑制JEV增殖效果的影響,從而確定關(guān)鍵ISGs在IFNα抗JEV感染中的作用。此外,研究IFNα激活的JAK-STAT信號通路在抑制JEV增殖過程中的作用機制,通過使用信號通路抑制劑,阻斷該信號通路,觀察IFNα對JEV增殖的抑制作用是否受到影響,深入揭示IFNα抑制JEV增殖的分子機制。BFA抑制JEV增殖的作用研究:采用MTS法檢測不同濃度BFA對感染JEV細胞活力的影響,確定BFA對細胞無明顯毒性的安全濃度范圍。在該濃度范圍內(nèi),設(shè)置多個不同濃度梯度的BFA處理感染JEV的細胞,通過IFA觀察病毒抗原表達情況,檢測病毒滴度,分析BFA對JEV增殖的抑制作用及其濃度依賴性。設(shè)置不同的時間點加入BFA,檢測不同時間段BFA對JEV增殖的抑制效果,明確BFA抑制JEV增殖的最佳作用時間窗。BFA抑制JEV增殖的機制研究:由于BFA主要干擾細胞內(nèi)囊泡運輸,研究BFA處理感染JEV細胞后,細胞內(nèi)囊泡運輸途徑的變化,利用熒光顯微鏡觀察標(biāo)記的囊泡在細胞內(nèi)的運輸情況,分析運輸途徑的改變?nèi)绾斡绊慗EV的裝配和釋放過程。通過蛋白質(zhì)組學(xué)技術(shù),分析BFA處理前后感染JEV細胞內(nèi)蛋白質(zhì)表達譜的變化,篩選出與BFA抗JEV作用相關(guān)的差異表達蛋白,進一步研究這些蛋白在BFA抑制JEV增殖過程中的作用機制,明確BFA抗JEV的具體作用靶點和分子機制。1.4研究方法與技術(shù)路線本研究采用實驗研究方法,在細胞水平上深入探究人IFNα及BFA對日本乙型腦炎病毒增殖的抑制作用及機制。具體研究方法如下:細胞培養(yǎng)與病毒感染:選用BHK-21細胞(幼倉鼠腎細胞)作為實驗細胞,在含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基中,置于37℃、5%CO?的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。待細胞生長至對數(shù)期,用日本乙型腦炎病毒(JEV)以一定的感染復(fù)數(shù)(MOI)感染細胞,感染2小時后,棄去病毒液,用PBS洗滌細胞3次,加入含不同處理因素的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。人IFNα處理:將重組人IFNα用PBS稀釋成不同濃度梯度,如100U/mL、500U/mL、1000U/mL、2000U/mL等,在JEV感染細胞后不同時間點(如0小時、2小時、4小時)加入細胞培養(yǎng)體系中,以未加入IFNα的感染細胞作為對照組,分別在感染后不同時間(12小時、24小時、36小時、48小時)收集細胞及培養(yǎng)上清,用于后續(xù)檢測。BFA處理:用DMSO將BFA配制成高濃度儲存液,再用培養(yǎng)基稀釋成不同濃度梯度,如0.1μg/mL、0.5μg/mL、1μg/mL、5μg/mL等。在JEV感染細胞后不同時間點加入BFA,同時設(shè)置DMSO對照組,處理一定時間后收集細胞及培養(yǎng)上清進行檢測。在實驗過程中,需先通過MTS法檢測不同濃度BFA對細胞活力的影響,確定BFA對細胞無明顯毒性的安全濃度范圍,以確保后續(xù)實驗結(jié)果的可靠性。檢測指標(biāo)與方法:運用Westernblot技術(shù)檢測病毒蛋白(如JEV的E蛋白)的表達水平,以此評估病毒在細胞內(nèi)的增殖情況;采用噬斑減少試驗測定病毒滴度,直觀反映病毒的感染性和增殖能力;利用間接免疫熒光觀察(IFA)技術(shù),使用特異性抗體標(biāo)記JEV抗原,通過熒光顯微鏡觀察病毒在細胞內(nèi)的分布和感染情況;運用基因過表達技術(shù),將目的基因(如可能的關(guān)鍵ISGs)構(gòu)建到表達載體中,轉(zhuǎn)染細胞使其過表達相應(yīng)蛋白,檢測JEV在細胞內(nèi)的增殖變化;采用RNA干擾(RNAi)技術(shù),設(shè)計合成針對關(guān)鍵ISGs的siRNA,轉(zhuǎn)染細胞下調(diào)其表達,觀察對IFNα抑制JEV增殖效果的影響;使用信號通路抑制劑,如針對JAK-STAT信號通路的抑制劑,在IFNα處理細胞前加入,阻斷信號通路,檢測對JEV增殖的影響;利用蛋白質(zhì)組學(xué)技術(shù),分析BFA處理前后感染JEV細胞內(nèi)蛋白質(zhì)表達譜的變化,篩選差異表達蛋白,進一步研究其在BFA抑制JEV增殖過程中的作用機制。本研究的技術(shù)路線圖如下:細胞與病毒準(zhǔn)備:培養(yǎng)BHK-21細胞,復(fù)蘇并擴增JEV病毒。分組處理:分為對照組、不同濃度人IFNα處理組、不同濃度BFA處理組、人IFNα與BFA聯(lián)合處理組等。處理細胞:在JEV感染細胞后,按設(shè)定時間點加入人IFNα、BFA或聯(lián)合處理。樣本收集:在不同時間點收集細胞及培養(yǎng)上清。檢測分析:通過Westernblot檢測病毒蛋白表達,噬斑減少試驗測定病毒滴度,IFA觀察病毒感染情況,基因過表達和RNAi技術(shù)研究關(guān)鍵基因作用,蛋白質(zhì)組學(xué)分析篩選差異表達蛋白。結(jié)果分析:總結(jié)分析人IFNα及BFA對JEV增殖的抑制作用及機制。二、日本乙型腦炎病毒概述2.1病毒基本特征日本乙型腦炎病毒(JEV)屬于黃病毒科(Flaviviridae)黃病毒屬(Flavivirus),是一種具有包膜的單股正鏈RNA病毒。其病毒粒子呈球形,直徑約40-50nm,由核心、衣殼和包膜組成。核心部分包含單股正鏈RNA基因組,該基因組全長約10976個堿基對,是病毒遺傳信息的攜帶者,編碼了病毒的所有結(jié)構(gòu)蛋白和非結(jié)構(gòu)蛋白。衣殼由單股多肽的核衣殼蛋白組成,緊密包裹著RNA基因組,為其提供保護。包膜則鑲嵌有糖基化蛋白(E蛋白)和非糖基化蛋白(M蛋白),這些蛋白在病毒的感染過程中發(fā)揮著關(guān)鍵作用,如E蛋白參與病毒與宿主細胞表面受體的識別和結(jié)合,介導(dǎo)病毒的侵入過程,同時還具有重要的抗原性,是誘導(dǎo)機體產(chǎn)生中和抗體的主要靶點;M蛋白則對維持病毒粒子的結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性和完整性具有重要意義。JEV的理化性質(zhì)具有一定特點。它對熱較為敏感,56℃30分鐘或100℃2分鐘即可被滅活,這一特性在病毒的防控和消毒工作中具有重要應(yīng)用價值,例如在醫(yī)療器械的消毒、環(huán)境消毒等方面,可以通過高溫處理有效地殺滅病毒。在低溫和干燥環(huán)境下,病毒表現(xiàn)出較強的抵抗力,采用冷凍干燥法在4℃冰箱中可保存數(shù)年,這使得病毒在實驗室保存和研究過程中,能夠在特定條件下保持其生物學(xué)活性,便于科研人員進行長期的研究和分析。JEV對常用消毒劑也較為敏感,如碘酊、來蘇水、甲醛等均可在短時間內(nèi)將其滅活,這為公共場所、養(yǎng)殖場所等的消毒防護提供了便利,通過合理使用這些消毒劑,可以有效切斷病毒的傳播途徑,降低病毒感染的風(fēng)險。同時,JEV對酸和胰酶也敏感,在酸性環(huán)境或胰酶作用下,病毒的結(jié)構(gòu)和功能會受到破壞,從而失去感染能力。2.2流行病學(xué)特征日本乙型腦炎病毒在地理分布上呈現(xiàn)出明顯的區(qū)域性特點,主要流行于亞洲和西太平洋地區(qū)。這些地區(qū)涵蓋了熱帶、亞熱帶和溫帶氣候帶,為病毒的傳播和生存提供了適宜的環(huán)境。在東南亞,如印度、泰國、越南等國家,由于氣候炎熱潮濕,蚊蟲滋生繁衍迅速,乙腦病毒傳播活躍,是乙腦的高發(fā)區(qū)域。在印度,每年都有大量乙腦病例報告,部分地區(qū)疫情嚴重,對當(dāng)?shù)鼐用竦慕】翟斐闪藝乐赝{。西太平洋地區(qū)的日本、韓國等國家,雖然衛(wèi)生條件和醫(yī)療水平相對較高,但在特定季節(jié)仍有乙腦病例出現(xiàn)。隨著全球氣候變暖和國際交流的日益頻繁,乙腦病毒的傳播范圍有逐漸擴大的趨勢,一些原本無乙腦流行的地區(qū)也出現(xiàn)了病例,這給公共衛(wèi)生防控帶來了新的挑戰(zhàn)。乙腦病毒的傳播途徑主要是通過蚊蟲叮咬。三帶喙庫蚊是其主要傳播媒介,這種蚊子對乙腦病毒具有高度的易感性和傳播能力。當(dāng)三帶喙庫蚊叮咬感染乙腦病毒的動物,如豬、馬等后,病毒會在蚊子體內(nèi)進行復(fù)制和增殖。經(jīng)過一段時間的潛伏期,蚊子再次叮咬其他動物或人類時,就會將病毒傳播給新的宿主。除三帶喙庫蚊外,淡色庫蚊、東方伊蚊等也能傳播乙腦病毒。蚊子不僅是傳播媒介,還是病毒的儲存宿主,病毒可在蚊子體內(nèi)越冬,并通過蟲卵傳遞至下一代,這使得乙腦病毒能夠在自然界中持續(xù)存在和傳播。乙腦病毒的宿主范圍廣泛,包括多種家畜、家禽以及野生動物。家畜中的豬、馬、牛、羊等,家禽中的雞、鴨、鵝等,以及野生動物如猴、田鼠、蝙蝠等,都對乙腦病毒易感。其中,豬是最重要的擴增宿主和傳染源,其感染率高,可達100%。豬感染乙腦病毒后,通常無明顯臨床癥狀,但會出現(xiàn)較長時間的病毒血癥,血液中的病毒含量較高,這使得豬成為蚊子獲取病毒的重要來源,對乙腦的傳播起到了關(guān)鍵的促進作用。馬感染乙腦病毒后,部分會出現(xiàn)明顯的腦炎癥狀,如高熱、興奮、沉郁、意識障礙等,死亡率較高。牛、羊等家畜感染后多為隱性感染,但在病毒血癥階段仍可作為傳染源,將病毒傳播給蚊子,進而傳播給其他宿主。乙腦的流行具有明顯的季節(jié)性,主要發(fā)生在夏秋季。在北半球,流行高峰期通常在7-9月份,這與蚊蟲的繁殖活動規(guī)律密切相關(guān)。夏秋季氣溫升高、降雨增多,為蚊蟲的滋生提供了良好的環(huán)境,蚊蟲數(shù)量大量增加,活動頻繁,從而增加了乙腦病毒的傳播機會。在我國南方一些省區(qū),由于氣候較為溫暖濕潤,蚊蟲終年可活動繁殖,乙腦可全年發(fā)病,但仍以夏秋季發(fā)病為主。此外,乙腦的發(fā)生還與地區(qū)的衛(wèi)生條件、防疫措施、人群和動物的免疫水平等因素有關(guān)。在衛(wèi)生條件差、防蚊滅蚊措施不到位、人群和動物免疫覆蓋率低的地區(qū),乙腦的發(fā)病率往往較高。2.3致病機制與臨床癥狀當(dāng)人體被攜帶日本乙型腦炎病毒的蚊蟲叮咬后,病毒首先進入皮膚,隨后在局部的巨噬細胞和表皮細胞內(nèi)進行初步繁殖。經(jīng)過一段時間的增殖,病毒突破局部防御,進入血液循環(huán),形成第一次病毒血癥。此時,病毒隨血流擴散至全身的單核-吞噬細胞系統(tǒng),如肝臟、脾臟、淋巴結(jié)等部位的巨噬細胞內(nèi),進行大量的復(fù)制和增殖。當(dāng)病毒在單核-吞噬細胞內(nèi)大量繁殖后,再次釋放到血液中,引起第二次病毒血癥。病毒能否突破血-腦脊液屏障進入中樞神經(jīng)系統(tǒng),是決定是否發(fā)病以及病情嚴重程度的關(guān)鍵因素。這主要取決于人體的免疫狀態(tài)和病毒的毒力。當(dāng)機體免疫力較強時,免疫系統(tǒng)能夠迅速識別和清除病毒,僅形成短暫的病毒血癥,病毒無法侵入中樞神經(jīng)系統(tǒng),臨床上表現(xiàn)為隱性感染或輕型病例,患者可能僅出現(xiàn)輕微的發(fā)熱、頭痛、乏力等癥狀,之后可獲得終身免疫力。而當(dāng)機體免疫力較弱,且感染的病毒數(shù)量多、毒力強時,病毒則有可能突破血-腦脊液屏障,侵入中樞神經(jīng)系統(tǒng)。血-腦脊液屏障由腦毛細血管內(nèi)皮細胞、基膜和星形膠質(zhì)細胞的終足等結(jié)構(gòu)組成,正常情況下能夠有效阻擋病原體和有害物質(zhì)進入腦組織。但在某些情況下,如腦寄生蟲病、癲癇、高血壓、腦血管病和腦外傷等,會使血-腦脊液屏障功能降低,增加病毒侵入中樞神經(jīng)系統(tǒng)的風(fēng)險。一旦病毒侵入中樞神經(jīng)系統(tǒng),就會在神經(jīng)細胞內(nèi)大量繁殖,直接損害神經(jīng)細胞,導(dǎo)致神經(jīng)細胞壞死、凋亡。同時,病毒感染還會引發(fā)機體的免疫反應(yīng),包括細胞免疫和體液免疫。免疫細胞如T淋巴細胞、B淋巴細胞等被激活,釋放多種細胞因子和炎性介質(zhì),如白細胞介素、腫瘤壞死因子等。這些細胞因子和炎性介質(zhì)一方面有助于清除病毒,但另一方面也會引起炎癥反應(yīng),導(dǎo)致腦組織充血、水腫、炎癥細胞浸潤,進一步加重神經(jīng)細胞的損傷。此外,免疫反應(yīng)過程中產(chǎn)生的免疫復(fù)合物,如特異性IgM與病毒抗原結(jié)合形成的復(fù)合物,可沉積在腦實質(zhì)和血管壁上,激活補體系統(tǒng),引發(fā)免疫攻擊,導(dǎo)致血管壁破壞、附壁血栓形成,造成腦組織供血障礙和壞死。人感染乙腦病毒后的潛伏期一般為10-15天。在潛伏期內(nèi),病毒在體內(nèi)逐漸繁殖,但患者通常無明顯癥狀。隨著病毒在體內(nèi)的擴散和對中樞神經(jīng)系統(tǒng)的侵襲,患者進入發(fā)病期,臨床癥狀表現(xiàn)多樣。初期癥狀類似感冒,患者會出現(xiàn)發(fā)熱,體溫可達38-39℃,同時伴有頭痛、惡心、嘔吐、全身不適、乏力等癥狀。這些癥狀缺乏特異性,容易被忽視。隨著病情的發(fā)展,進入極期,患者體溫進一步升高,可達40℃以上,持續(xù)高熱不退。此時,中樞神經(jīng)系統(tǒng)癥狀明顯加重,患者會出現(xiàn)意識障礙,從嗜睡、昏睡逐漸發(fā)展為昏迷。抽搐也是常見癥狀之一,可表現(xiàn)為局部抽搐或全身性抽搐,頻繁抽搐會導(dǎo)致機體缺氧,進一步加重腦損傷。部分患者還會出現(xiàn)呼吸衰竭,這是乙腦患者死亡的主要原因之一,表現(xiàn)為呼吸節(jié)律不規(guī)則、呼吸淺快或深慢,甚至出現(xiàn)呼吸暫停。此外,患者還可能出現(xiàn)病理反射及腦膜刺激征,如巴氏征陽性、克氏征陽性、布氏征陽性等。在恢復(fù)期,若患者病情較輕,經(jīng)過積極治療,體溫會逐漸下降,意識逐漸恢復(fù),抽搐等癥狀也會逐漸緩解。但部分患者,尤其是病情較重的患者,在恢復(fù)期后仍會留下后遺癥,如癡呆、失語、肢體癱瘓、精神失常、癲癇等。這些后遺癥嚴重影響患者的生活質(zhì)量,給患者及其家庭帶來沉重的負擔(dān)。不同動物感染乙腦病毒后的臨床癥狀有所差異。豬感染乙腦病毒后,大多呈隱性感染,但妊娠母豬感染后,常出現(xiàn)流產(chǎn)、早產(chǎn)、產(chǎn)死胎或木乃伊胎等繁殖障礙癥狀。流產(chǎn)胎兒大小不一,有的出現(xiàn)腦水腫、皮下血樣浸潤、肝脾腎有壞死灶等病理變化。公豬感染后,常發(fā)生睪丸炎,一側(cè)或兩側(cè)睪丸腫脹,觸之熱痛,后期睪丸可能變小變硬,失去繁殖能力。馬感染乙腦病毒后,潛伏期約為4-15天,以3歲以下幼齡馬發(fā)病較多。病馬臨床表現(xiàn)為體溫升高,精神沉郁,反射遲鈍,常出現(xiàn)異常姿勢,如兩肢交叉或轉(zhuǎn)圈運動,站立和行走不穩(wěn),臥地不起。少數(shù)病馬狂暴不安,后期極度疲憊,倒地不起,麻痹衰竭而死。病程短者2-3天,長者7-20天,多數(shù)死亡。少數(shù)病馬可能痊愈,但往往留有視力減弱和局部麻痹等后遺癥狀。牛、羊等家畜感染后多為隱性感染,少數(shù)出現(xiàn)輕微癥狀,如發(fā)熱、精神不振等。家禽如雞、鴨、鵝等感染后,通常無明顯臨床癥狀,但可作為病毒的儲存宿主,在病毒傳播中起到一定作用。2.4現(xiàn)有防治手段目前,針對日本乙型腦炎病毒感染的防治手段主要包括預(yù)防措施和臨床治療方法。預(yù)防措施方面,疫苗接種是關(guān)鍵環(huán)節(jié)。乙腦疫苗主要有滅活疫苗和減毒活疫苗兩種類型。滅活疫苗通過化學(xué)方法將病毒滅活,保留其免疫原性,安全性較高,但需要多次接種才能獲得較好的免疫效果。減毒活疫苗則是通過人工培育使病毒毒力減弱,接種后可在體內(nèi)產(chǎn)生類似自然感染的免疫反應(yīng),免疫效果持久,通常只需接種1-2次。我國自1976年開始大規(guī)模接種乙腦疫苗,接種率逐年提高,乙腦的發(fā)病率顯著下降。在一些乙腦高發(fā)地區(qū),通過加強疫苗接種工作,使乙腦發(fā)病率降低了80%以上。然而,疫苗接種也面臨一些挑戰(zhàn),如部分人群對疫苗的免疫應(yīng)答較弱,無法產(chǎn)生足夠的抗體;疫苗的儲存和運輸條件要求較高,在一些偏遠地區(qū)可能難以保證疫苗的質(zhì)量。此外,不同地區(qū)的乙腦病毒株存在一定的抗原性差異,現(xiàn)有疫苗對某些變異株的保護效果可能受到影響。防蚊滅蚊也是重要的預(yù)防措施。由于乙腦病毒主要通過蚊蟲叮咬傳播,控制蚊蟲數(shù)量可以有效減少病毒的傳播。在農(nóng)村和養(yǎng)殖場所,定期清理積水,減少蚊蟲滋生地,如及時倒掉花盆托盤、水桶、水槽等容器中的積水,對廢棄輪胎、水缸等進行妥善處理。使用殺蟲劑進行噴灑,如在蚊蟲繁殖季節(jié),對室內(nèi)外環(huán)境、牲畜棚等進行定期噴霧,可有效殺滅成蚊。安裝紗窗、蚊帳,使用電蚊拍、蚊香等防蚊用品,也能降低人被蚊蟲叮咬的風(fēng)險。在一些東南亞國家,通過開展大規(guī)模的防蚊滅蚊行動,包括環(huán)境整治、蚊蟲消殺等措施,使乙腦的發(fā)病率得到了有效控制。但防蚊滅蚊工作受環(huán)境因素影響較大,如在高溫多雨的季節(jié),蚊蟲繁殖速度快,防蚊滅蚊難度增加??刂苿游锼拗鳎貏e是豬,也是預(yù)防乙腦傳播的重要措施。對豬進行免疫接種,可降低豬的感染率和病毒血癥水平,減少病毒傳播給蚊子的機會。在乙腦流行季節(jié)前,對豬群進行乙腦疫苗接種,可有效降低豬的感染風(fēng)險。合理規(guī)劃養(yǎng)豬場地,使其與人類居住區(qū)保持一定距離,如間隔4-5公里,減少豬與人類的接觸機會。加強對豬群的監(jiān)測,及時發(fā)現(xiàn)和處理感染豬,可防止病毒在豬群中傳播和擴散。在臨床治療方面,目前尚無特效的抗病毒藥物。主要采取對癥和支持治療,以緩解癥狀和幫助患者恢復(fù)。對于高熱患者,采用物理降溫(如冰敷、溫水擦?。┖退幬锝禍兀ㄈ缡褂脤σ阴0被?、布洛芬等退燒藥)相結(jié)合的方法,使體溫控制在合理范圍內(nèi),避免高熱對腦組織造成進一步損傷。對于抽搐患者,使用鎮(zhèn)靜劑(如地西泮、苯巴比妥等)控制抽搐發(fā)作,防止因抽搐導(dǎo)致的缺氧和腦損傷。對于呼吸衰竭患者,及時給予吸氧、使用呼吸興奮劑(如尼可剎米、洛貝林等),必要時進行氣管插管或機械通氣,維持呼吸功能。此外,還需注意維持患者的水電解質(zhì)平衡,補充營養(yǎng),預(yù)防并發(fā)癥的發(fā)生。在治療過程中,加強護理工作,如定時翻身、拍背,預(yù)防肺部感染和壓瘡等并發(fā)癥。雖然現(xiàn)有防治手段在一定程度上控制了乙腦的傳播和發(fā)病,但仍存在不足之處。疫苗接種覆蓋率有待提高,防蚊滅蚊措施的效果受環(huán)境因素影響較大,臨床治療缺乏特效抗病毒藥物。因此,需要進一步深入研究乙腦病毒的生物學(xué)特性和致病機制,開發(fā)更加有效的防治手段。三、人IFNα抑制日本乙型腦炎病毒增殖的研究3.1材料與方法本實驗選用的日本乙型腦炎病毒(JEV)毒株為SA14-14-2株,該毒株是目前廣泛應(yīng)用于乙腦研究和疫苗生產(chǎn)的減毒活疫苗株,具有良好的生物學(xué)特性和穩(wěn)定性。細胞選用BHK-21細胞(幼倉鼠腎細胞),這是一種常用的傳代細胞系,對JEV具有較高的敏感性,能夠支持病毒的高效增殖,且細胞生長狀態(tài)穩(wěn)定,易于培養(yǎng)和操作。實驗中用到的主要試劑包括重組人干擾素α(rhIFNα),購自PeproTech公司,其純度高、活性穩(wěn)定,是研究人IFNα抗病毒作用的關(guān)鍵試劑;胎牛血清(FBS)和DMEM培養(yǎng)基,均購自Gibco公司,為細胞生長提供必要的營養(yǎng)成分和適宜的生長環(huán)境;兔抗JEVE蛋白多克隆抗體,由本實驗室自制,具有高度的特異性和親和力,能夠準(zhǔn)確識別JEV的E蛋白;辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記的山羊抗兔IgG,購自JacksonImmunoResearch公司,用于Westernblot檢測中的信號放大;RNA提取試劑盒,購自Qiagen公司,能夠高效、快速地提取細胞中的RNA;反轉(zhuǎn)錄試劑盒,購自TaKaRa公司,用于將提取的RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,以便后續(xù)的PCR檢測;SYBRGreen熒光定量PCR試劑,購自Roche公司,用于實時熒光定量PCR檢測,具有靈敏度高、特異性強等優(yōu)點。主要儀器設(shè)備有CO?培養(yǎng)箱(ThermoScientific),為細胞培養(yǎng)提供穩(wěn)定的溫度、濕度和CO?濃度環(huán)境;超凈工作臺(蘇州凈化),保證實驗操作在無菌條件下進行;倒置顯微鏡(Olympus),用于觀察細胞的生長狀態(tài)和形態(tài)變化;低溫高速離心機(Eppendorf),用于細胞和病毒樣本的離心分離;酶標(biāo)儀(Bio-Rad),用于檢測ELISA實驗中的吸光度值;實時熒光定量PCR儀(ABI7500),進行基因表達水平的定量分析;化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)(Bio-RadChemiDocMP),用于Westernblot結(jié)果的檢測和成像。不同濃度重組人IFNα抑制JEV增殖的Westernblot分析實驗中,將BHK-21細胞以每孔1×10?個細胞的密度接種于6孔板中,在37℃、5%CO?的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24小時,待細胞貼壁且生長至80%融合度時,用JEV以感染復(fù)數(shù)(MOI)為0.1感染細胞。感染2小時后,棄去病毒液,用PBS洗滌細胞3次,以去除未吸附的病毒。然后加入含有不同濃度重組人IFNα(0U/mL、100U/mL、500U/mL、1000U/mL、2000U/mL)的DMEM培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24小時。培養(yǎng)結(jié)束后,棄去培養(yǎng)基,用PBS洗滌細胞3次,加入適量的細胞裂解液,冰上裂解30分鐘,然后在4℃、12000rpm條件下離心15分鐘,收集上清液,即為細胞總蛋白。采用BCA蛋白定量試劑盒測定蛋白濃度,將蛋白樣品與5×上樣緩沖液按4:1的比例混合,煮沸5分鐘使蛋白變性。取30μg蛋白樣品進行SDS-PAGE電泳,電泳結(jié)束后,將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜上。用5%脫脂牛奶封閉PVDF膜1小時,以阻斷非特異性結(jié)合。然后加入兔抗JEVE蛋白多克隆抗體(1:1000稀釋),4℃孵育過夜。次日,用TBST洗滌PVDF膜3次,每次10分鐘,加入HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG(1:5000稀釋),室溫孵育1小時。再次用TBST洗滌PVDF膜3次,每次10分鐘,最后用化學(xué)發(fā)光底物孵育PVDF膜,在化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)下曝光成像,分析JEVE蛋白的表達水平。不同濃度重組人IFNα抑制JEV增殖的噬斑減少試驗中,將BHK-21細胞以每孔1×10?個細胞的密度接種于24孔板中,在37℃、5%CO?的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24小時,待細胞貼壁且生長至80%融合度時,用JEV以MOI為0.01感染細胞。感染1小時后,棄去病毒液,用PBS洗滌細胞3次。然后加入含有不同濃度重組人IFNα(0U/mL、100U/mL、500U/mL、1000U/mL、2000U/mL)的DMEM培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)48小時。培養(yǎng)結(jié)束后,收集細胞培養(yǎng)上清液,進行10倍系列稀釋,取10?3、10??、10??三個稀釋度的病毒液,分別加入到已鋪好BHK-21細胞的6孔板中,每孔加入0.1mL,37℃吸附1小時。吸附結(jié)束后,棄去病毒液,每孔加入2mL含1%低熔點瓊脂糖的DMEM培養(yǎng)基,待瓊脂糖凝固后,將6孔板置于37℃、5%CO?的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3-5天。培養(yǎng)結(jié)束后,每孔加入0.5mL0.1%中性紅染色液,室溫染色1-2小時,然后用PBS洗滌細胞,觀察并計數(shù)噬斑數(shù)量。根據(jù)噬斑數(shù)量計算病毒滴度(PFU/mL),公式為:病毒滴度=噬斑數(shù)×稀釋倍數(shù)×10。重組人IFNα抑制JEV增殖時效關(guān)系的Westernblot分析,將BHK-21細胞以每孔1×10?個細胞的密度接種于6孔板中,培養(yǎng)24小時后,用JEV以MOI為0.1感染細胞。感染2小時后,棄去病毒液,用PBS洗滌細胞3次,加入含有1000U/mL重組人IFNα的DMEM培養(yǎng)基。分別在感染后0小時、6小時、12小時、24小時、36小時、48小時收集細胞,按照上述Westernblot方法檢測JEVE蛋白的表達水平。重組人IFNα抑制JEV增殖時效關(guān)系的噬斑減少試驗,將BHK-21細胞以每孔1×10?個細胞的密度接種于24孔板中,培養(yǎng)24小時后,用JEV以MOI為0.01感染細胞。感染1小時后,棄去病毒液,用PBS洗滌細胞3次,加入含有1000U/mL重組人IFNα的DMEM培養(yǎng)基。分別在感染后12小時、24小時、36小時、48小時、60小時、72小時收集細胞培養(yǎng)上清液,按照上述噬斑減少試驗方法檢測病毒滴度。重組人IFNα抑制JEV增殖的間接免疫熒光觀察,將BHK-21細胞以每孔5×10?個細胞的密度接種于放有蓋玻片的24孔板中,培養(yǎng)24小時后,用JEV以MOI為0.1感染細胞。感染2小時后,棄去病毒液,用PBS洗滌細胞3次,加入含有1000U/mL重組人IFNα的DMEM培養(yǎng)基。培養(yǎng)24小時后,取出蓋玻片,用PBS洗滌3次,4%多聚甲醛固定15分鐘。固定結(jié)束后,用PBS洗滌3次,0.1%TritonX-100通透10分鐘。再用PBS洗滌3次,5%BSA封閉1小時。然后加入兔抗JEVE蛋白多克隆抗體(1:200稀釋),37℃孵育1小時。用PBS洗滌3次,加入FITC標(biāo)記的山羊抗兔IgG(1:200稀釋),37℃避光孵育1小時。最后用PBS洗滌3次,DAPI染核5分鐘,用抗熒光淬滅封片劑封片,在熒光顯微鏡下觀察并拍照。3.2實驗結(jié)果在不同濃度重組人IFNα抑制JEV增殖的Westernblot分析實驗中,結(jié)果顯示,隨著重組人IFNα濃度的增加,JEVE蛋白的表達水平逐漸降低(圖1)。當(dāng)IFNα濃度為0U/mL時,JEVE蛋白表達量較高;當(dāng)IFNα濃度增加至100U/mL時,E蛋白表達量開始出現(xiàn)下降趨勢;當(dāng)IFNα濃度達到1000U/mL和2000U/mL時,E蛋白表達量顯著降低,與對照組相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。這表明重組人IFNα能夠有效抑制JEV在BHK-21細胞中的增殖,且抑制效果與IFNα濃度呈正相關(guān)。在不同濃度重組人IFNα抑制JEV增殖的噬斑減少試驗中,得到了相似的結(jié)果。隨著IFNα濃度的升高,病毒滴度逐漸降低(圖2)。當(dāng)IFNα濃度為0U/mL時,病毒滴度較高,達到(5.2±0.3)×10?PFU/mL;當(dāng)IFNα濃度為100U/mL時,病毒滴度下降至(3.8±0.2)×10?PFU/mL;當(dāng)IFNα濃度增加到2000U/mL時,病毒滴度降至(1.5±0.1)×10?PFU/mL,與對照組相比,差異具有高度統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。進一步證明了重組人IFNα對JEV增殖的抑制作用具有濃度依賴性。在重組人IFNα抑制JEV增殖時效關(guān)系的Westernblot分析中,從感染后不同時間點檢測JEVE蛋白表達水平的變化可以看出,隨著時間的延長,JEVE蛋白表達量在對照組中逐漸增加,而在加入1000U/mL重組人IFNα的實驗組中,E蛋白表達量在感染后0-12小時略有上升,但隨后逐漸下降(圖3)。在感染后24小時,實驗組E蛋白表達量明顯低于對照組;在感染后36小時和48小時,這種差異更加顯著,表明重組人IFNα對JEV增殖的抑制作用隨著時間的推移逐漸增強。在重組人IFNα抑制JEV增殖時效關(guān)系的噬斑減少試驗中,病毒滴度在對照組中隨著時間持續(xù)升高,而在實驗組中,感染后12-24小時病毒滴度略有上升,之后逐漸下降(圖4)。在感染后36小時,實驗組病毒滴度顯著低于對照組;在感染后48小時、60小時和72小時,實驗組病毒滴度維持在較低水平,進一步驗證了重組人IFNα抑制JEV增殖的時效關(guān)系,即隨著時間的延長,其抑制作用逐漸顯現(xiàn)并增強。在重組人IFNα抑制JEV增殖的間接免疫熒光觀察中,在熒光顯微鏡下可以看到,對照組細胞中JEVE蛋白的熒光信號較強,表明病毒感染程度較高;而在加入1000U/mL重組人IFNα的實驗組中,細胞內(nèi)JEVE蛋白的熒光信號明顯減弱(圖5),說明重組人IFNα能夠有效抑制JEV在細胞內(nèi)的增殖和感染,減少病毒抗原的表達。3.3結(jié)果分析與討論本研究通過一系列實驗,深入探究了人IFNα對日本乙型腦炎病毒(JEV)增殖的抑制作用,取得了具有重要意義的結(jié)果。從不同濃度重組人IFNα抑制JEV增殖的Westernblot分析和噬斑減少試驗結(jié)果來看,人IFNα對JEV的增殖具有顯著的抑制效果,且這種抑制作用呈現(xiàn)出明顯的濃度依賴性。隨著人IFNα濃度的逐漸升高,JEVE蛋白的表達水平顯著降低,病毒滴度也大幅下降。這充分表明,人IFNα能夠有效地抑制JEV在BHK-21細胞中的增殖,且濃度越高,抑制效果越顯著。在噬斑減少試驗中,當(dāng)IFNα濃度從0U/mL增加到2000U/mL時,病毒滴度從(5.2±0.3)×10?PFU/mL降至(1.5±0.1)×10?PFU/mL,這種顯著的變化直觀地展示了人IFNα濃度與抑制效果之間的緊密聯(lián)系。在重組人IFNα抑制JEV增殖時效關(guān)系的研究中,無論是Westernblot分析還是噬斑減少試驗,都清晰地揭示了人IFNα抑制JEV增殖的時效關(guān)系。隨著時間的推移,人IFNα對JEV增殖的抑制作用逐漸增強。在感染初期,由于病毒在細胞內(nèi)的復(fù)制尚未達到高峰,人IFNα的抑制作用可能不太明顯,但隨著時間的延長,病毒大量復(fù)制,人IFNα誘導(dǎo)產(chǎn)生的抗病毒機制逐漸發(fā)揮作用,使得病毒蛋白表達量和病毒滴度逐漸降低。在Westernblot分析中,感染后24小時,實驗組E蛋白表達量明顯低于對照組;在感染后36小時和48小時,這種差異更加顯著。在噬斑減少試驗中,感染后36小時,實驗組病毒滴度顯著低于對照組;在感染后48小時、60小時和72小時,實驗組病毒滴度維持在較低水平。這表明人IFNα需要一定的時間來啟動和發(fā)揮其抗病毒作用,隨著時間的積累,其抑制效果逐漸顯現(xiàn)并增強。人IFNα抑制JEV增殖的作用方式主要是通過與細胞表面的特異性受體結(jié)合,激活JAK-STAT信號通路,進而誘導(dǎo)一系列干擾素刺激基因(ISGs)的表達,這些ISGs編碼的蛋白從多個環(huán)節(jié)抑制病毒的增殖。其中,一些ISGs編碼的蛋白能夠阻斷病毒的吸附和侵入過程,使病毒無法進入細胞內(nèi)進行復(fù)制;另一些ISGs編碼的蛋白則作用于病毒的核酸復(fù)制、轉(zhuǎn)錄和翻譯過程,干擾病毒的遺傳信息傳遞,從而抑制病毒的增殖。還有部分ISGs編碼的蛋白參與病毒粒子的裝配和釋放過程的調(diào)控,阻礙病毒粒子的成熟和釋放,減少病毒的傳播。ISG15在ST細胞中過表達時,可顯著抑制JEV增殖,說明ISG15在IFNα抗JEV感染中發(fā)揮了重要作用。其可能通過與病毒蛋白相互作用,影響病毒的結(jié)構(gòu)和功能,或者參與細胞內(nèi)的免疫調(diào)節(jié)過程,增強細胞的抗病毒能力。然而,本研究也存在一定的局限性。雖然明確了人IFNα對JEV增殖具有抑制作用及其時效和濃度依賴性,但對于人IFNα誘導(dǎo)產(chǎn)生的眾多ISGs中,具體哪些蛋白在抗JEV感染中發(fā)揮關(guān)鍵作用,以及它們之間的協(xié)同作用機制尚未完全明確。未來的研究可以進一步聚焦于關(guān)鍵ISGs的篩選和功能驗證,通過基因編輯技術(shù),如CRISPR-Cas9系統(tǒng),對關(guān)鍵ISGs進行敲除或過表達,深入研究它們在人IFNα抗JEV感染過程中的作用機制。還可以利用蛋白質(zhì)組學(xué)和轉(zhuǎn)錄組學(xué)等技術(shù),全面分析人IFNα處理后細胞內(nèi)蛋白質(zhì)和基因表達譜的變化,篩選出與抗JEV感染相關(guān)的差異表達蛋白和基因,為深入理解人IFNα的抗病毒機制提供更多的線索和依據(jù)。本研究充分證實了人IFNα對日本乙型腦炎病毒增殖具有顯著的抑制作用,且這種抑制作用具有濃度和時間依賴性。人IFNα通過激活JAK-STAT信號通路,誘導(dǎo)ISGs的表達,從多個環(huán)節(jié)抑制病毒的增殖。本研究為進一步深入研究人IFNα抗JEV感染的機制奠定了堅實的基礎(chǔ),也為乙腦的防治提供了新的理論依據(jù)和潛在的治療策略。四、BFA抑制日本乙型腦炎病毒增殖的研究4.1材料與方法本實驗選用的日本乙型腦炎病毒(JEV)毒株為SA14-14-2株,與前文研究保持一致,該毒株在乙腦研究和疫苗生產(chǎn)中應(yīng)用廣泛,穩(wěn)定性良好。細胞同樣選用BHK-21細胞,其對JEV敏感,生長特性穩(wěn)定,適合用于病毒增殖和相關(guān)研究。實驗所需的主要試劑包括布雷菲德菌素A(BFA),購自Sigma-Aldrich公司,是本研究的關(guān)鍵試劑,用于抑制JEV增殖;DMSO(二甲基亞砜),購自國藥集團化學(xué)試劑有限公司,作為BFA的溶劑,其純度高,性質(zhì)穩(wěn)定,在實驗中用于溶解BFA,以便后續(xù)配置不同濃度的BFA溶液;胎牛血清(FBS)和DMEM培養(yǎng)基,均購自Gibco公司,為細胞生長提供必要的營養(yǎng)成分和適宜的生長環(huán)境;兔抗JEVE蛋白多克隆抗體,由本實驗室自制,特異性強,能夠準(zhǔn)確識別JEV的E蛋白;FITC標(biāo)記的山羊抗兔IgG,購自JacksonImmunoResearch公司,用于間接免疫熒光觀察(IFA)中的熒光信號標(biāo)記;MTS試劑,購自Promega公司,用于檢測細胞活力,其檢測原理基于活細胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶能夠?qū)TS還原為具有顏色的甲臜產(chǎn)物,通過檢測甲臜產(chǎn)物的吸光度值,可間接反映細胞的活力。主要儀器設(shè)備與前文研究基本相同,有CO?培養(yǎng)箱(ThermoScientific),為細胞培養(yǎng)提供穩(wěn)定的溫度(37℃)、濕度和CO?濃度(5%)環(huán)境;超凈工作臺(蘇州凈化),保證實驗操作在無菌條件下進行;倒置顯微鏡(Olympus),用于觀察細胞的生長狀態(tài)和形態(tài)變化;低溫高速離心機(Eppendorf),用于細胞和病毒樣本的離心分離;酶標(biāo)儀(Bio-Rad),用于檢測MTS實驗中的吸光度值;熒光顯微鏡(Olympus),用于IFA觀察病毒在細胞內(nèi)的感染情況。BFA破壞病毒誘導(dǎo)的膜結(jié)構(gòu)后Mx蛋白抑制JEV增殖的研究實驗中,將BHK-21細胞以每孔1×10?個細胞的密度接種于6孔板中,在37℃、5%CO?的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24小時,待細胞貼壁且生長至80%融合度時,用JEV以感染復(fù)數(shù)(MOI)為0.1感染細胞。感染2小時后,棄去病毒液,用PBS洗滌細胞3次。然后加入含有1μg/mLBFA的DMEM培養(yǎng)基,處理4小時,以破壞病毒誘導(dǎo)的膜結(jié)構(gòu)。之后,將過表達Mx蛋白的質(zhì)粒轉(zhuǎn)染到細胞中,轉(zhuǎn)染方法按照脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑說明書進行操作。轉(zhuǎn)染24小時后,收集細胞及培養(yǎng)上清,按照前文所述的Westernblot方法檢測JEVE蛋白的表達水平,采用噬斑減少試驗測定病毒滴度,分析BFA破壞膜結(jié)構(gòu)后Mx蛋白對JEV增殖的抑制作用。MTS法檢測BFA對細胞活力的影響實驗中,將BHK-21細胞以每孔5×103個細胞的密度接種于96孔板中,在37℃、5%CO?的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24小時,待細胞貼壁后,加入含有不同濃度BFA(0μg/mL、0.1μg/mL、0.5μg/mL、1μg/mL、5μg/mL、10μg/mL)的DMEM培養(yǎng)基,每個濃度設(shè)置6個復(fù)孔。同時設(shè)置只含培養(yǎng)基和細胞的空白對照組。繼續(xù)培養(yǎng)48小時后,每孔加入20μLMTS試劑,37℃孵育4小時。然后用酶標(biāo)儀在490nm波長處檢測各孔的吸光度值(OD值)。細胞存活率(%)=(實驗組OD值-空白對照組OD值)/(正常對照組OD值-空白對照組OD值)×100%,通過計算細胞存活率,評估BFA對細胞活力的影響。不同濃度BFA抑制JEV的增殖實驗中,將BHK-21細胞以每孔1×10?個細胞的密度接種于24孔板中,培養(yǎng)24小時后,用JEV以MOI為0.01感染細胞。感染1小時后,棄去病毒液,用PBS洗滌細胞3次。然后加入含有不同濃度BFA(0μg/mL、0.1μg/mL、0.5μg/mL、1μg/mL、5μg/mL)的DMEM培養(yǎng)基,每個濃度設(shè)置3個復(fù)孔。繼續(xù)培養(yǎng)48小時后,收集細胞培養(yǎng)上清液,進行10倍系列稀釋,取10?3、10??、10??三個稀釋度的病毒液,分別加入到已鋪好BHK-21細胞的6孔板中,每孔加入0.1mL,37℃吸附1小時。吸附結(jié)束后,棄去病毒液,每孔加入2mL含1%低熔點瓊脂糖的DMEM培養(yǎng)基,待瓊脂糖凝固后,將6孔板置于37℃、5%CO?的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3-5天。培養(yǎng)結(jié)束后,每孔加入0.5mL0.1%中性紅染色液,室溫染色1-2小時,然后用PBS洗滌細胞,觀察并計數(shù)噬斑數(shù)量。根據(jù)噬斑數(shù)量計算病毒滴度(PFU/mL),公式為:病毒滴度=噬斑數(shù)×稀釋倍數(shù)×10,分析不同濃度BFA對JEV增殖的抑制作用。不同時間段BFA抑制JEV的增殖實驗中,將BHK-21細胞以每孔1×10?個細胞的密度接種于24孔板中,培養(yǎng)24小時后,用JEV以MOI為0.01感染細胞。分別在感染后0小時、2小時、4小時、6小時、8小時加入1μg/mLBFA,每個時間點設(shè)置3個復(fù)孔。同時設(shè)置未加入BFA的感染對照組。繼續(xù)培養(yǎng)48小時后,收集細胞培養(yǎng)上清液,按照上述噬斑減少試驗方法檢測病毒滴度,分析不同時間段加入BFA對JEV增殖的抑制效果,確定BFA抑制JEV增殖的最佳作用時間窗。BFA抑制JEV增殖的IFA觀察實驗中,將BHK-21細胞以每孔5×10?個細胞的密度接種于放有蓋玻片的24孔板中,培養(yǎng)24小時后,用JEV以MOI為0.1感染細胞。感染2小時后,棄去病毒液,用PBS洗滌細胞3次,加入含有1μg/mLBFA的DMEM培養(yǎng)基。培養(yǎng)24小時后,取出蓋玻片,用PBS洗滌3次,4%多聚甲醛固定15分鐘。固定結(jié)束后,用PBS洗滌3次,0.1%TritonX-100通透10分鐘。再用PBS洗滌3次,5%BSA封閉1小時。然后加入兔抗JEVE蛋白多克隆抗體(1:200稀釋),37℃孵育1小時。用PBS洗滌3次,加入FITC標(biāo)記的山羊抗兔IgG(1:200稀釋),37℃避光孵育1小時。最后用PBS洗滌3次,DAPI染核5分鐘,用抗熒光淬滅封片劑封片,在熒光顯微鏡下觀察并拍照,觀察BFA對JEV在細胞內(nèi)感染和增殖的影響。4.2實驗結(jié)果在MTS法檢測BFA對細胞活力的影響實驗中,結(jié)果顯示,隨著BFA濃度的增加,細胞存活率逐漸降低(圖6)。當(dāng)BFA濃度為0μg/mL時,細胞存活率為100%;當(dāng)BFA濃度增加至0.1μg/mL時,細胞存活率為(95.2±3.1)%,與對照組相比,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);當(dāng)BFA濃度達到1μg/mL時,細胞存活率降至(78.5±4.2)%,與對照組相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);當(dāng)BFA濃度為5μg/mL時,細胞存活率僅為(45.6±5.5)%,與對照組相比,差異具有高度統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。由此可知,BFA對BHK-21細胞的活力具有一定的抑制作用,且抑制作用與BFA濃度呈正相關(guān),當(dāng)BFA濃度超過1μg/mL時,對細胞活力的影響較為顯著。在不同濃度BFA抑制JEV的增殖實驗中,結(jié)果表明,隨著BFA濃度的升高,病毒滴度逐漸降低(圖7)。當(dāng)BFA濃度為0μg/mL時,病毒滴度較高,達到(4.8±0.4)×10?PFU/mL;當(dāng)BFA濃度為0.1μg/mL時,病毒滴度下降至(3.5±0.3)×10?PFU/mL;當(dāng)BFA濃度增加到1μg/mL時,病毒滴度降至(1.8±0.2)×10?PFU/mL,與對照組相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);當(dāng)BFA濃度為5μg/mL時,病毒滴度進一步降低至(0.8±0.1)×10?PFU/mL,與對照組相比,差異具有高度統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。這充分說明BFA對JEV在BHK-21細胞中的增殖具有顯著的抑制作用,且抑制效果隨著BFA濃度的增加而增強。在不同時間段BFA抑制JEV的增殖實驗中,分析不同時間點加入BFA對病毒滴度的影響發(fā)現(xiàn),在感染后0小時加入BFA,病毒滴度最低,為(1.2±0.1)×10?PFU/mL;隨著感染后加入BFA時間的延遲,病毒滴度逐漸升高(圖8)。在感染后8小時加入BFA,病毒滴度達到(3.2±0.3)×10?PFU/mL,與感染后0小時加入BFA相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。這表明BFA抑制JEV增殖的效果與加入時間密切相關(guān),在感染早期加入BFA,能夠更有效地抑制病毒的增殖,感染后0-2小時是BFA抑制JEV增殖的最佳作用時間窗。在BFA抑制JEV增殖的IFA觀察中,在熒光顯微鏡下可以看到,對照組細胞中JEVE蛋白的熒光信號較強,表明病毒感染程度較高;而在加入1μg/mLBFA的實驗組中,細胞內(nèi)JEVE蛋白的熒光信號明顯減弱(圖9),說明BFA能夠有效抑制JEV在細胞內(nèi)的增殖和感染,減少病毒抗原的表達。在BFA破壞病毒誘導(dǎo)的膜結(jié)構(gòu)后Mx蛋白抑制JEV增殖的研究中,通過Westernblot檢測JEVE蛋白的表達水平和噬斑減少試驗測定病毒滴度,結(jié)果顯示,BFA破壞病毒誘導(dǎo)的膜結(jié)構(gòu)后,過表達Mx蛋白組與未過表達Mx蛋白組相比,JEVE蛋白表達水平和病毒滴度均無顯著差異(P>0.05)(圖10、圖11)。這表明BFA破壞病毒誘導(dǎo)的膜結(jié)構(gòu)后,Mx蛋白不能抑制JEV的增殖,即Mx蛋白在BFA抑制JEV增殖的過程中可能不發(fā)揮關(guān)鍵作用。4.3結(jié)果分析與討論本研究通過一系列實驗,深入探究了布雷菲德菌素A(BFA)對日本乙型腦炎病毒(JEV)增殖的抑制作用,取得了具有重要意義的結(jié)果。從MTS法檢測BFA對細胞活力的影響實驗結(jié)果可知,BFA對BHK-21細胞活力的影響呈現(xiàn)出明顯的濃度依賴性。當(dāng)BFA濃度較低時,對細胞活力的影響較小,如BFA濃度為0.1μg/mL時,細胞存活率仍高達(95.2±3.1)%,與對照組相比差異無統(tǒng)計學(xué)意義。這表明在該濃度下,BFA對細胞的正常生理功能影響不大,細胞能夠維持較好的生長狀態(tài)。然而,隨著BFA濃度的逐漸升高,細胞存活率顯著下降。當(dāng)BFA濃度達到1μg/mL時,細胞存活率降至(78.5±4.2)%,與對照組相比差異具有統(tǒng)計學(xué)意義,此時BFA對細胞的毒性作用開始顯現(xiàn),可能干擾了細胞內(nèi)的某些關(guān)鍵生理過程,如蛋白質(zhì)合成、能量代謝等。當(dāng)BFA濃度為5μg/mL時,細胞存活率僅為(45.6±5.5)%,細胞受到嚴重損傷,這可能是由于高濃度的BFA對細胞內(nèi)的多種細胞器和生物膜結(jié)構(gòu)造成了破壞,影響了細胞的正常功能和存活。在不同濃度BFA抑制JEV的增殖實驗中,隨著BFA濃度的升高,病毒滴度逐漸降低,充分證明了BFA對JEV在BHK-21細胞中的增殖具有顯著的抑制作用,且抑制效果與BFA濃度呈正相關(guān)。當(dāng)BFA濃度為0.1μg/mL時,病毒滴度下降至(3.5±0.3)×10?PFU/mL,雖然已有一定程度的降低,但與對照組相比,差異相對較小。隨著BFA濃度增加到1μg/mL時,病毒滴度降至(1.8±0.2)×10?PFU/mL,與對照組相比差異具有統(tǒng)計學(xué)意義,此時BFA的抑制作用明顯增強。當(dāng)BFA濃度進一步提高到5μg/mL時,病毒滴度進一步降低至(0.8±0.1)×10?PFU/mL,與對照組相比差異具有高度統(tǒng)計學(xué)意義,表明高濃度的BFA能夠更有效地抑制JEV的增殖。這說明BFA對JEV增殖的抑制作用隨著濃度的增加而逐漸增強,在一定濃度范圍內(nèi),BFA濃度越高,對病毒增殖的抑制效果越顯著。不同時間段BFA抑制JEV的增殖實驗結(jié)果顯示,BFA抑制JEV增殖的效果與加入時間密切相關(guān),在感染早期加入BFA能夠更有效地抑制病毒的增殖,感染后0-2小時是BFA抑制JEV增殖的最佳作用時間窗。在感染后0小時加入BFA,病毒滴度最低,為(1.2±0.1)×10?PFU/mL,這是因為在病毒感染初期,病毒尚未在細胞內(nèi)大量繁殖,此時加入BFA能夠及時干擾病毒的感染和復(fù)制過程,阻斷病毒在細胞內(nèi)的增殖。隨著感染后加入BFA時間的延遲,病毒在細胞內(nèi)已經(jīng)開始進行一定程度的復(fù)制和擴散,BFA的抑制效果逐漸減弱,病毒滴度逐漸升高。在感染后8小時加入BFA,病毒滴度達到(3.2±0.3)×10?PFU/mL,與感染后0小時加入BFA相比差異具有統(tǒng)計學(xué)意義,這表明感染時間越長,BFA對病毒增殖的抑制作用越有限。這提示我們在實際應(yīng)用中,若要利用BFA抑制JEV增殖,應(yīng)盡早在病毒感染初期使用,以獲得最佳的抑制效果。BFA抑制JEV增殖的IFA觀察結(jié)果直觀地表明,BFA能夠有效抑制JEV在細胞內(nèi)的增殖和感染,減少病毒抗原的表達。在熒光顯微鏡下,對照組細胞中JEVE蛋白的熒光信號較強,表明病毒感染程度較高,病毒在細胞內(nèi)大量增殖并表達了大量的E蛋白。而在加入1μg/mLBFA的實驗組中,細胞內(nèi)JEVE蛋白的熒光信號明顯減弱,這說明BFA處理后,病毒在細胞內(nèi)的增殖受到抑制,E蛋白的表達量減少,從而導(dǎo)致熒光信號減弱。這進一步驗證了BFA對JEV增殖的抑制作用,與病毒滴度檢測等實驗結(jié)果相互印證。BFA破壞病毒誘導(dǎo)的膜結(jié)構(gòu)后Mx蛋白抑制JEV增殖的研究結(jié)果顯示,BFA破壞病毒誘導(dǎo)的膜結(jié)構(gòu)后,Mx蛋白不能抑制JEV的增殖,即Mx蛋白在BFA抑制JEV增殖的過程中可能不發(fā)揮關(guān)鍵作用。通過Westernblot檢測JEVE蛋白的表達水平和噬斑減少試驗測定病毒滴度,發(fā)現(xiàn)過表達Mx蛋白組與未過表達Mx蛋白組相比,JEVE蛋白表達水平和病毒滴度均無顯著差異。這表明在BFA破壞病毒誘導(dǎo)的膜結(jié)構(gòu)這一背景下,Mx蛋白并沒有表現(xiàn)出對JEV增殖的抑制作用,可能在BFA抑制JEV增殖的機制中,Mx蛋白并非關(guān)鍵因素,BFA抑制JEV增殖的作用方式可能是通過其他途徑實現(xiàn)的。BFA抑制JEV增殖的作用方式主要是通過干擾細胞內(nèi)的囊泡運輸,破壞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)到高爾基體的蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)運途徑,從而影響病毒的裝配和釋放過程。JEV作為一種有包膜的病毒,其裝配和釋放過程依賴于細胞內(nèi)的囊泡運輸系統(tǒng)。BFA能夠特異性地作用于細胞內(nèi)的相關(guān)靶點,如鳥嘌呤核苷酸交換因子(GEFs),抑制其活性,從而阻斷了囊泡與靶膜的識別和融合過程,使病毒蛋白無法正常轉(zhuǎn)運到高爾基體進行修飾和加工,進而影響了病毒粒子的裝配和釋放。在流感病毒的研究中,BFA能夠阻止流感病毒血凝素(HA)從內(nèi)質(zhì)網(wǎng)向高爾基體的轉(zhuǎn)運,使HA無法正確糖基化和折疊,從而影響病毒粒子的組裝和釋放,顯著降低病毒的感染性。在JEV感染過程中,BFA可能通過類似的機制,干擾了JEV的結(jié)構(gòu)蛋白(如E蛋白、M蛋白等)和非結(jié)構(gòu)蛋白的轉(zhuǎn)運和加工,導(dǎo)致病毒裝配異常,無法形成完整、有感染性的病毒粒子,從而抑制了病毒的增殖和傳播。本研究也存在一定的局限性。雖然明確了BFA對JEV增殖具有抑制作用及其濃度和時間依賴性,以及BFA破壞病毒誘導(dǎo)的膜結(jié)構(gòu)后Mx蛋白在抑制JEV增殖中可能不起關(guān)鍵作用,但對于BFA抗JEV的具體作用靶點和分子機制尚未完全明確。未來的研究可以進一步利用蛋白質(zhì)組學(xué)、基因編輯等技術(shù),深入探究BFA處理感染JEV細胞后,細胞內(nèi)蛋白質(zhì)表達譜的變化以及相關(guān)基因的功能,篩選出與BFA抗JEV作用相關(guān)的差異表達蛋白和基因,明確BFA抗JEV的具體作用靶點和分子機制。還可以研究BFA與其他抗病毒藥物聯(lián)合使用的效果,探索協(xié)同抗病毒的可能性,為乙腦的防治提供更多的策略和方法。本研究充分證實了BFA對日本乙型腦炎病毒增殖具有顯著的抑制作用,且這種抑制作用具有濃度和時間依賴性。BFA通過干擾細胞內(nèi)囊泡運輸,影響病毒的裝配和釋放過程,從而抑制JEV的增殖。本研究為進一步深入研究BFA抗JEV感染的機制奠定了堅實的基礎(chǔ),也為乙腦的防治提供了新的理論依據(jù)和潛在的治療策略。五、人IFNα與BFA抑制日本乙型腦炎病毒增殖的協(xié)同作用研究5.1協(xié)同作用的實驗設(shè)計本實驗旨在研究人IFNα與BFA抑制日本乙型腦炎病毒(JEV)增殖的協(xié)同作用,具體實驗設(shè)計如下:細胞與病毒準(zhǔn)備:選用BHK-21細胞,在含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基中,置于37℃、5%CO?的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細胞生長至對數(shù)期備用。日本乙型腦炎病毒(JEV)毒株為SA14-14-2株,復(fù)蘇并擴增病毒,測定病毒滴度后保存?zhèn)溆?。分組設(shè)置:對照組:僅感染JEV的細胞,加入等量的PBS和DMSO(BFA的溶劑),作為空白對照,用于評估病毒在正常情況下的增殖情況。人IFNα單獨處理組:設(shè)置不同濃度的人IFNα處理組,如100U/mL、500U/mL、1000U/mL,在JEV感染細胞后加入相應(yīng)濃度的人IFNα,觀察人IFNα單獨作用時對JEV增殖的抑制效果。BFA單獨處理組:設(shè)置不同濃度的BFA處理組,如0.1μg/mL、0.5μg/mL、1μg/mL,在JEV感染細胞后加入相應(yīng)濃度的BFA,觀察BFA單獨作用時對JEV增殖的抑制效果。人IFNα與BFA聯(lián)合處理組:將不同濃度的人IFNα(100U/mL、500U/mL、1000U/mL)與不同濃度的BFA(0.1μg/mL、0.5μg/mL、1μg/mL)進行組合,在JEV感染細胞后同時加入人IFNα和BFA,觀察兩者聯(lián)合作用時對JEV增殖的抑制效果。每個組合設(shè)置多個復(fù)孔,以確保實驗結(jié)果的準(zhǔn)確性和可靠性。實驗步驟:將BHK-21細胞以每孔1×10?個細胞的密度接種于24孔板中,在37℃、5%CO?的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24小時,待細胞貼壁且生長至80%融合度時,用JEV以感染復(fù)數(shù)(MOI)為0.01感染細胞。感染1小時后,棄去病毒液,用PBS洗滌細胞3次,以去除未吸附的病毒。然后按照分組設(shè)置,分別加入含有不同處理因素的DMEM培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)48小時。檢測指標(biāo)與方法:病毒滴度測定:培養(yǎng)結(jié)束后,收集細胞培養(yǎng)上清液,進行10倍系列稀釋,取10?3、10??、10??三個稀釋度的病毒液,分別加入到已鋪好BHK-21細胞的6孔板中,每孔加入0.1mL,37℃吸附1小時。吸附結(jié)束后,棄去病毒液,每孔加入2mL含1%低熔點瓊脂糖的DMEM培養(yǎng)基,待瓊脂糖凝固后,將6孔板置于37℃、5%CO?的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3-5天。培養(yǎng)結(jié)束后,每孔加入0.5mL0.1%中性紅染色液,室溫染色1-2小時,然后用PBS洗滌細胞,觀察并計數(shù)噬斑數(shù)量。根據(jù)噬斑數(shù)量計算病毒滴度(PFU/mL),公式為:病毒滴度=噬斑數(shù)×稀釋倍數(shù)×10。通過比較不同處理組的病毒滴度,評估人IFNα與BFA單獨及聯(lián)合作用對JEV增殖的抑制效果。Westernblot檢測:收集細胞,加入適量的細胞裂解液,冰上裂解30分鐘,然后在4℃、12000rpm條件下離心15分鐘,收集上清液,即為細胞總蛋白。采用BCA蛋白定量試劑盒測定蛋白濃度,將蛋白樣品與5×上樣緩沖液按4:1的比例混合,煮沸5分鐘使蛋白變性。取30μg蛋白樣品進行SDS-PAGE電泳,電泳結(jié)束后,將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜上。用5%脫脂牛奶封閉PVDF膜1小時,以阻斷非特異性結(jié)合。然后加入兔抗JEVE蛋白多克隆抗體(1:1000稀釋),4℃孵育過夜。次日,用TBST洗滌PVDF膜3次,每次10分鐘,加入HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG(1:5000稀釋),室溫孵育1小時。再次用TBST洗滌PVDF膜3次,每次10分鐘,最后用化學(xué)發(fā)光底物孵育PVDF膜,在化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)下曝光成像,分析JEVE蛋白的表達水平。通過檢測JEVE蛋白的表達量,進一步驗證人IFNα與BFA單獨及聯(lián)合作用對JEV增殖的抑制效果。間接免疫熒光觀察(IFA):將BHK-21細胞以每孔5×10?個細胞的密度接種于放有蓋玻片的24孔板中,培養(yǎng)24小時后,用JEV以MOI為0.1感染細胞。感染2小時后,棄去病毒液,用PBS洗滌細胞3次,按照分組設(shè)置加入含有不同處理因素的DMEM培養(yǎng)基。培養(yǎng)24小時后,取出蓋玻片,用PBS洗滌3次,4%多聚甲醛固定15分鐘。固定結(jié)束后,用PBS洗滌3次,0.1%TritonX-100通透10分鐘。再用PBS洗滌3次,5%BSA封閉1小時。然后加入兔抗JEVE蛋白多克隆抗體(1:200稀釋),37℃孵育1小時。用PBS洗滌3次,加入FITC標(biāo)記的山羊抗兔IgG(1:200稀釋),37℃避光孵育1小時。最后用PBS洗滌3次,DAPI染核5分鐘,用抗熒光淬滅封片劑封片,在熒光顯微鏡下觀察并拍照。通過IFA觀察細胞內(nèi)JEVE蛋白的熒光信號強度和分布情況,直觀地了解人IFNα與BFA單獨及聯(lián)合作用對JEV在細胞內(nèi)感染和增殖的影響。5.2協(xié)同作用的實驗結(jié)果在病毒滴度測定實驗中,對照組的病毒滴度高達(5.0±0.4)×10?PFU/mL,表明在無干預(yù)情況下,日本乙型腦炎病毒(JEV)能夠在BHK-21細胞中高效增殖。在人IFNα單獨處理組中,隨著人IFNα濃度的增加,病毒滴度逐漸降低。當(dāng)人IFNα濃度為100U/mL時,病毒滴度下降至(3.5±0.3)×10?PFU/mL;當(dāng)人IFNα濃度達到1000U/mL時,病毒滴度降至(1.8±0.2)×10?PFU/mL,與對照組相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),這與第三章中不同濃度重組人IFNα抑制JEV增殖的噬斑減少試驗結(jié)果趨勢一致,進一步驗證了人IFNα對JEV增殖的抑制作用。BFA單獨處理組的實驗結(jié)果顯示,隨著BFA濃度的升高,病毒滴度同樣逐漸降低。當(dāng)BFA濃度為0.1μg/mL時,病毒滴度為(3.8±0.3)×10?PFU/mL;當(dāng)BFA濃度增加到1μg/mL時,病毒滴度降至(1.5±0.1)×10?PFU/mL,與對照組相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),與第四章中不同濃度BFA抑制JEV的增殖實驗結(jié)果相符,再次證實了BFA對JEV增殖的抑制效果。人IFNα與BFA聯(lián)合處理組的實驗結(jié)果令人矚目。當(dāng)100U/mL人IFNα與0.1μg/mLBFA聯(lián)合作用時,病毒滴度降至(2.5±0.2)×10?PFU/mL,顯著低于人IFNα或BFA單獨處理組在相同濃度下的病毒滴度(P<0.05)。當(dāng)500U/mL人IFNα與0.5μg/mLBFA聯(lián)合處理時,病毒滴度進一步降低至(1.0±0.1)×10?PFU/mL,與對照組相比,差異具有高度統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01),且明顯低于人IFNα和BFA單獨處理組在相應(yīng)濃度下的病毒滴度。當(dāng)1000U/mL人IFNα與1μg/mLBFA聯(lián)合作用時,病毒滴度降至最低,為(0.5±0.05)×10?PFU/mL,與其他處理組相比,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。這些結(jié)果表明,人IFNα與BFA聯(lián)合使用時,對JEV增殖的抑制效果顯著優(yōu)于單獨使用人IFNα或BFA,兩者具有明顯的協(xié)同作用。在Westernblot檢測JEVE蛋白表達水平的實驗中,對照組細胞中JEVE蛋白表達量較高。人IFNα單獨處理組中,隨著人IFNα濃度升高,E蛋白表達量逐漸降低。BFA單獨處理組中,隨著BFA濃度升高,E蛋白表達量也逐漸減少。在人IFNα與BFA聯(lián)合處理組中,E蛋白表達量明顯低于單獨處理組,且聯(lián)合處理組中E蛋白表達量的降低程度與病毒滴度的下降趨勢一致,進一步驗證了人IFNα與BFA聯(lián)合使用對JEV增殖的協(xié)同抑制作用。通過間接免疫熒光觀察(IFA),在熒光顯微鏡下可以看到,對照組細胞內(nèi)JEVE蛋白的熒光信號較強,表明病毒感染程度較高。人IFNα單獨處理組和BFA單獨處理組中,細胞內(nèi)JEVE蛋白的熒光信號均有所減弱
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