實驗二十反芻動物腮腺分泌的觀察

[目的]觀察反芻動物唾液分泌特征及其飼喂的影響。

[原理]反芻動物的腮腺是連續(xù)性分泌唾液，液體呈堿性，含較多的尿素，分泌量很大，在進食和反芻時分泌加強；頜下腺與舌下腺僅在進食時分泌。唾液腺的分泌主要受植物性神經(jīng)支配，擬膽堿藥物（如：毛果云香堿）及膽堿能受體阻斷劑（如：阿托品）對唾液分泌分別具有促進和抑制作用。

[實驗對象]山羊

[實驗材料]消毒醫(yī)藥塑料管（內(nèi)徑1mm，外徑2mm），手術器械及其手術輔助材料和藥品，固定架，計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀，計滴器，刻度試管，青草，干草，精料。

[實驗方法及步驟]

1．實驗準備—山羊腮腺瘺管的制備

①山羊腮腺的局部解剖特點：腮腺呈三角形，位于下頜支和寰椎翼之間。上部為部分顳肌，外面為腮腺筋膜，皮肌和腮耳肌等覆蓋，頸靜脈斜著經(jīng)過它的中部，頜外靜脈橫過它的下緣，頸動脈的終部在它的內(nèi)面。腮腺導管在頜外靜脈上約2-3cm處離開腺體，橫過胸頭肌腱的外面前行，過翼內(nèi)肌內(nèi)面，繞過下頜角的血管切跡，向上至第3上臼齒處對側(cè)頰粘膜開口于腔內(nèi)。

②手術操作過程：動物側(cè)臥固定，剃去頰部的毛，用0.3%普魯卡因局部浸潤麻醉；然后由咬肌前端向內(nèi)眼角方向切開皮膚約2-3cm，分開創(chuàng)口，在顏面靜脈后方找出腮腺導管，仔細分離，注意切勿損傷腮腺神經(jīng)。在腮腺導管下方穿三條絲線，縱行切開導管壁約5mm，分別于管的兩端插入準備好的大小適合的塑料細管（該塑料管的前段事先扎有絲線），用兩邊的兩條絲線分別結(jié)扎插入腮腺導管內(nèi)的兩條塑料細管，再用中間的絲線扎緊兩條塑料細管及腮腺導管，然后將塑料管上的絲線與這些絲線再分別結(jié)扎，這樣可防止滑脫。兩條塑料細管外端之間，再套上一較粗的塑料管和橡皮管形成體外吻合。這時唾液將由近腺體的細管流出，經(jīng)吻合管和遠端導管流入口腔?？p合皮膚，待創(chuàng)口愈合后，即可進行實驗。

2．儀器的連接

將計滴器插入計算機生物采集系統(tǒng)或生理記錄儀輸入端，進行測定；也可利用秒表直接計滴。

3．實驗項目

①將裝有腮腺瘺管的動物站立在固定架上，拆開體外吻合管，裝置好計滴器，觀察唾液流出10-15min，記錄3-5min內(nèi)唾液分泌的滴數(shù)和份量。

②給動物分別喂以青草、干草、混合飼料、水，觀察和記錄唾液分泌的變化情況。

③以1%醋酸溶液1-2滴注入羊口腔內(nèi)，觀察對唾液分泌的影響。

④如實驗羊裝有瘤胃瘺管，經(jīng)瘺管向瘤胃內(nèi)注入3%醋酸10mL，對唾液分泌有何影響？

⑤待唾液分泌恢復至正常水平時，皮下注射0.1%毛果蕓香堿0.5-1.0mL，持續(xù)觀察約30min，唾液分泌是否顯著增加？

⑥唾液分泌恢復至原水平時，給動物皮下注射1%阿托品1mL，唾液分泌是否顯著減少。

[注意事項]實驗前做好腮腺瘺管的制備及護理工作。實驗中應保持周圍環(huán)境的安靜，減少對動物的驚擾。每個測定項目完成后都應等待動物唾液分泌有所恢復，記錄同期對照水平，然后再進行新的實驗測定。[思考題]為什么反芻動物的腮腺分泌是連續(xù)的，而單胃動物的腮腺分泌是間斷的？反芻動物的腮腺分泌活動會受到哪些因素的影響？實驗二十一反芻活動的觀察

[目的]觀察反芻的發(fā)生與抑制，了解其產(chǎn)生的機理。

[原理]反芻為一復雜的反射動作，飼料的粗糙部分機械刺激網(wǎng)胃、瘤胃前庭與食管溝的粘膜，引起反芻；而飼料充滿瓣胃與皺胃，則刺激壓力感受器而抑制反芻。

[實驗對象]羊或牛

[實驗材料]咀嚼描記器，計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀，呼吸換能器，連有橡皮管的氣球，瘤胃瘺管，手術器械。

[實驗方法及步驟]

1．實驗準備—瘤胃瘺管手術操作

實驗動物瘤胃瘺管手術:羊全身麻醉后，右側(cè)臥固定在手術臺上；牛腰椎旁傳導麻醉，站立手術。按外科手術要求常規(guī)處理術部，然后無菌手術操作，在左肋部肌窩處沿最后肋骨平行切開皮膚長約5-6厘米；切斷皮下肌、結(jié)締組織和斜腹肌，分離縱腹肌，切開腹膜。以左手提起瘤胃壁，與皮膚作4-6處臨時縫合，并在胃壁漿膜層作兩道荷包縫合線。在縫合線正中進行切口。安置裝有塞子的瘤胃瘺管和墊片，收緊第一道荷包線后，重新進行術部消毒，再收緊第二道荷包縫合線，拆去臨時縫合線。進行切口的關閉縫合，創(chuàng)口分兩層縫合，內(nèi)層包括腹膜與斜肌層，連續(xù)縫合，外層以紐扣狀或結(jié)節(jié)縫合皮膚與皮下肌層。

創(chuàng)口邊緣涂以碘酊與凡士林。術后一周拆線，即可進行實驗。

2．實驗裝置

令動物站立在固定架上，啟開瘺管塞；將橡皮球經(jīng)瘺管納入瘤胃，吹入適量氣體，通過呼吸換能器與計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀連接；安裝好咀嚼描記器，借空氣傳導裝置，能記錄頰部運動，即可開始實驗。

3．實驗項目

①記錄瘤胃運動曲線，并進行分析。

②用右手經(jīng)瘺孔向前下方觸摸網(wǎng)胃粘膜，觀察有否出現(xiàn)反芻？記錄反芻情況，注意食團的咀嚼次數(shù)。如果用羊做實驗，瘺管較小不能用手伸入，可用一根硬橡皮管，通過瘺管向網(wǎng)胃和瘤胃前庭方向連續(xù)刺激，可以引起反芻反應。

③待動物靜止后，刺激食管溝粘膜，動物有何反應？

④正在反芻期間，吹脹放置在瓣胃內(nèi)的氣球，能否抑制反芻？

[注意事項]在瘤胃瘺管安裝手術前，應禁食24h；手術過程中，應嚴格按照無菌手術規(guī)程進行，正確選擇瘤胃瘺管的安裝部位。應檢查氣球與橡皮管是否漏氣。實驗環(huán)境保持安靜，避免各種外界因素對動物的驚擾。[思考題]反芻對瘤胃消化有何生理學作用？周期性反芻是如何發(fā)生的？哪些因素會影響反芻活動？實驗二十二反芻動物咀嚼與瘤胃運動的描記

[目的]觀察反芻動物的咀嚼與瘤胃運動情況，同時掌握其記錄方法。

[原理]反芻動物的瘤胃體積很大，占據(jù)腹腔左側(cè)的極大部分，當瘤胃運動時，瘤胃內(nèi)發(fā)生壓力變化，可用裝有瘤胃瘺管的動物將氣球經(jīng)瘺管放入瘤胃內(nèi)，通過呼吸換能器與計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀連接進行描記；也可利用張力換能器與瘤胃上皮直接連接，通過計算機生物信號采集系統(tǒng)或二道生理記錄儀將運動的情況描記出來。

在動物頰部籠頭上安置一咀嚼描記器，借空氣傳導裝置，能記錄頰部運動。

[實驗對象]裝有瘤胃瘺管的羊或牛

[實驗材料]固定架，瘤胃運動描記裝置，咀嚼描記器，橡皮管，計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀。

[實驗方法及步驟]

1．實驗準備

①方法1：將實驗羊或牛保定于固定架上，啟開瘺管塞；將橡皮球經(jīng)瘺管塞入瘤胃，以便于吹氣；橡皮管聯(lián)接呼吸換能器，通過計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀記錄。

②方法2：活體瘤胃運動直接測定裝置及安裝方法

將實驗羊或牛保定于固定架上，松開瘤胃瘺管，以繩系住推入瘤胃內(nèi)，用手輕拉瘤胃壁背囊處上皮翻至瘺口，在其上縫合一針結(jié)扎固定縫線的一端，瘤胃壁復位后將線的另一端穿過瘤胃瘺管，通過0.1kgf/cm2張力換能器聯(lián)接至計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀輸入端，將瘺管復位并固定張力換能器于瘺管支架上，即可進行活體瘤胃運動測定。

測定參數(shù)建議為，時間常數(shù)：DC、濾波：1K、靈敏度：0.1mv/cm、走紙速度：25mm/min、標記：10S?？捎?00g砝碼校正肌肉張力，即：將50g砝碼懸掛于0.1kgf/cm2張力換能器上，儀器所顯示的電壓相等于100g瘤胃平滑肌收縮力。

③在動物頰部籠頭上安置一咀嚼描記器，借空氣傳導裝置，能記錄頰部運動，然后開始實驗。

2．觀察項目

①記錄正常瘤胃運動10分鐘，觀察蠕動次數(shù)，分布情況及收縮強度。

②喂以干草5分鐘，觀察瘤胃運動有何變化？

③靜止時喂以清水，有否影響瘤胃運動。

④反芻時瘤胃運動情況。

[注意事項]

1．采用方法1時，應檢查橡皮球及橡皮管等是否漏氣。

2．采用方法2時，應調(diào)整好張力換能器前負荷，調(diào)整好二道生理記錄儀各參數(shù)。

3．咀嚼描記器應與所測定部位的皮膚密切接觸，但也不宜太緊，以免動物有不舒服感而影響實驗的正常進行。

[思考題]瘤胃運動是怎樣進行的？對瘤胃消化有何生理學意義？哪些因素會影響瘤胃運動？咀嚼與瘤胃運動有何相關聯(lián)系？實驗二十三瘤胃內(nèi)容物在顯微鏡下的觀察

[目的]了解飼料在瘤胃內(nèi)的變化及纖毛蟲的活動情況

[原理]飼料在瘤胃微生物的作用下發(fā)生很大的變化。瘤胃微生物包括纖毛蟲和細菌，它們將纖維素、淀粉及糖類發(fā)酵并產(chǎn)生揮發(fā)性脂肪酸等，同時分解植物性蛋白質(zhì)合成自身的蛋白質(zhì)。

[實驗對象]?；蜓?/p>

[實驗材料]顯微鏡，載玻片，蓋玻片，玻皿，注射器，滴管，甘油碘溶液。

[實驗方法及步驟]

1．從瘤胃瘺管或用食管導管抽取瘤胃內(nèi)容物約100g，放入玻皿內(nèi)，觀察其色澤、氣味等性狀。

2．用滴管吸取瘤胃內(nèi)容物少許，滴一滴在載玻片上，覆以蓋玻片，先以低倍顯微鏡下檢查，繼而改用中倍鏡觀察。

3．找出淀粉顆粒及殘缺纖維片，注意觀察纖毛蟲的運動。

4．加一滴甘油碘溶液于載玻片，觀察經(jīng)染色后的變化，注意纖毛蟲體內(nèi)及飼料的淀粉顆粒呈藍黑色。

附甘油碘溶液配置：

福爾馬林生理鹽水2份，盧哥（Lugol）氏碘液5份（碘片1g、碘化鉀2g、蒸餾水300ml），30%甘油3份，混合而成。

[注意事項]

纖毛蟲對溫度很敏感，觀察纖毛蟲活動應在適宜的室溫或保溫條件下進行。

[思考題]

1．瘤胃內(nèi)纖毛蟲主要分為哪幾類？各有何形態(tài)學特征？

2．瘤胃纖毛蟲對瘤胃消化起哪些作用？實驗二十五豬胃液的分泌

[目的]觀察胃液分泌情況及了解其神經(jīng)體液調(diào)節(jié)。

[原理]胃液分泌受神經(jīng)及體液因素調(diào)節(jié)，進食及食物對胃壁的機械刺激，通過神經(jīng)反射，以及食物與胃黏膜作用產(chǎn)生激素—促胃液素興奮胃腺的分泌活動。

[實驗對象]豬

[材料與設備]手術器械，胃瘺管（大小型各一），計滴器，計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀，固定架，量筒，氣球，橡皮管，酸度計或廣泛pH試紙，飼料，組織胺。

[實驗方法及步驟]

1．實驗準備—隔離小胃的手術操作

要獲得純粹胃液，可以制備隔離小胃。裝置豬隔離小胃的方法有多種，海氏小胃與大胃完全分離，大小胃之間僅保持血液聯(lián)系而不存在神經(jīng)聯(lián)系，雖能從小胃獲得純粹胃液，但并不能反映大胃內(nèi)消化活動的情況。經(jīng)典的巴氏小胃，大小胃之間基本上保持血液和神經(jīng)的聯(lián)系，不過手術復雜。下面介紹一個簡單易做，效果頗好的改良巴氏小胃方法。

按照常規(guī)將豬麻醉仰臥保定并切開腹腔后，拽出豬胃一半于腹腔外，在胃體部欲制備隔離小胃的部位，用兩把胃鉗平行夾住胃壁，中間相距約1.5-2.0cm。在兩胃鉗中間切開一側(cè)胃壁及對側(cè)胃壁的黏膜，沿黏膜切口稍作剝離，然后先縫合小胃兩側(cè)的黏膜切口，取下小胃的胃鉗。再縫合大胃兩側(cè)的黏膜切口，取下大胃的胃鉗，于是便形成了互不相通的兩胃。拽一小塊大網(wǎng)膜夾在大小胃之間，然后再縫合切開的胃壁肌層（包括漿膜）。在大小胃分別安置瘺管，并通過腹壁固定。術后第二天大小胃的瘺管可在體外接橋，在不進行實驗時小胃分泌的胃液經(jīng)體外可流入大胃，以維持大胃內(nèi)的正常消化和機能健康。實驗時打開接橋，可收集小胃分泌的純粹胃液，進行各種研究分析。用這種方法制備的隔離小胃，只有黏膜與大胃完全隔開，而保留大部分的肌肉和漿膜正常聯(lián)接，大小胃的神經(jīng)聯(lián)系基本上未受影響，因此，小胃的活動能較真實地反映大胃內(nèi)消化活動的情況。

2．儀器連接

觀察胃液分泌時，可將計滴器與計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀輸入端相聯(lián)。

3．實驗項目

①胃液的自動性分泌：動物靜立于固定架上，打開接橋并塞上大胃瘺管塞子；用量筒（或刻度管）收集小胃流出的胃液，每5min計量一次，并測定胃液酸度，連續(xù)進行約20min。

②飼喂的影響：以飼料逗引，胃液分泌有無變化？喂料歷時5-10min，觀察胃液分泌量與性狀的變化，并持續(xù)觀察1-2h。

③待胃液分泌基本恢復正常水平時，打開大胃瘺管塞子，放入連有橡皮管的氣球，吹脹氣球（注入500-1000ml空氣），對大胃壁進行壓力刺激，觀察小胃分泌有無變化？

④待胃液分泌正常后，靜脈（或皮下）注射組織胺0.1mg，觀察經(jīng)過多少時間后，胃液分泌顯著增多。

[注意事項]

1．選擇健康的豬，體重一般在30-40斤為宜。

2．術前禁食18-24h。

3．術后小胃瘺管不要用塞子（大胃瘺管須塞?。屍鋬?nèi)容物流出，第二天檢查是否有血塊堵塞，護理后與大胃瘺管作體外接橋，精心護理，每天拆開接橋清洗一次，以防堵塞。

4．因大小胃瘺管的管徑不同，接橋套管可用相應直徑的大小管配之，以耐酸橡皮管為宜。

[思考題]單胃胃腺能分泌哪幾種消化液？各有何生理作用特點？影響胃酸分泌的因素有哪些？說明其分泌的原理。組織胺、氨甲酰膽堿、阿托品對胃液分泌有什么影響？試說明其作用機制。實驗二十六胃腸運動的直接觀察

[目的]觀察動物在麻醉狀態(tài)下胃腸的運動情況及其影響因素。

[原理]胃腸肌肉屬于平滑肌，所以胃腸道具有平滑肌運動的特性，由于胃腸道平滑肌結(jié)構(gòu)不同，因此胃運動呈蠕動及緊張性收縮；而腸運動的主要方式為蠕動、分節(jié)運動及擺動。在有機體中，其運動主要受神經(jīng)系統(tǒng)支配（受迷走神經(jīng)和內(nèi)臟神經(jīng)調(diào)節(jié)）。化學性刺激也影響胃腸道運動。

[實驗對象]兔

[材料與設備]手術臺，戊巴比妥鈉，手術器械，注射器，生理多用儀或生理電刺激器，保護電極，絲線，生理鹽水，電爐。

[實驗方法及步驟]

1．實驗操作

以戊巴比妥鈉溶液靜脈注射，使家兔麻醉。將動物仰臥固定于手術臺上，剪去頸部與腹部被毛；然后自頸部中間將皮膚縱行切開，細心分開肌肉組織，在氣管一側(cè)找到頸動脈。與頸動脈平行共有三條神經(jīng)（迷走神經(jīng)、減壓神經(jīng)、交感神經(jīng)），三者都很細，其中最粗一條即為迷走神經(jīng)。小心地將迷走神經(jīng)分離，并于其下穿一提線，以備隨時刺激之用。

另從腹部中線剖開腹腔，并將腹腔中臟器推至右側(cè)，然后在左側(cè)腎上腺附近找出內(nèi)臟神經(jīng)，其下亦穿一提線。

手術完畢后，將兔體腹部創(chuàng)口兩側(cè)皮膚用四把止血鉗拉起，形成皮兜，敞開腹腔，充滿37℃生理鹽水，以便于觀察。

2．實驗項目

（1）胃腸的正常運動情況：胃腸有無運動？各有何種運動（用文字或圖記下）？頻率如何？

（2）神經(jīng)因素的影響：

①刺激一側(cè)迷走神經(jīng)離中斷，胃腸運動有何變化？

②刺激內(nèi)臟神經(jīng)，胃腸運動有何變化？

③切斷內(nèi)臟神經(jīng)，胃腸運動有何變化？

（3）機械性因素的影響（腸肌反射）：以鑷子輕夾腸的任何一處，觀察有何現(xiàn)象發(fā)生？

[注意事項]在實驗前2-3h時將動物喂飽則效果較好。實驗過程中盡量減少對胃腸平滑肌的機械損傷，保持應有的興奮性。[思考題]內(nèi)臟大神經(jīng)在腹腔中的解剖位置有何特征？小腸運動主要有哪幾種形式？胃腸運動受哪些因素影響？實驗二十七離體腸段運動的描記

[目的]觀察在離體情況下腸的運動情況以及某些因素對腸運動的影響。

[原理]腸平滑肌具有自動性節(jié)律性收縮的特性，并且受腸壁內(nèi)神經(jīng)從與外來植物性神經(jīng)的支配。離體腸段雖然失去外來神經(jīng)的支配，但在適宜的條件下，仍能保持平滑肌收縮的特性及腸壁神經(jīng)叢的作用。離體腸段運動的裝置，還可以用來研究各種化學因素對平滑肌的影響。

[實驗對象]兔

[實驗材料]離體器官測定儀、張力換能器，計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀，絲線、0.1%腎上腺素、0.01%乙酰膽堿、臺氏生理鹽溶液、手術器械。

[實驗方法及步驟]

1．實驗準備取一只兔子，以手抓住后腿使頭下垂，用木棒猛擊后腦部致死。然后沿著腹白線迅速剖開腹腔，取出全部小腸放入冷的臺氏液中，以降低代謝和氧耗量，充分洗去腸內(nèi)容物，切取3-4cm的腸段（十二指腸或空腸），用縫針在腸壁之兩端各穿上一條絲線，一端固定于平滑肌肌槽的通氣管上，另一端通過張力換能器與計算機生物信號采集系統(tǒng)輸入端連接。

平滑肌肌槽內(nèi)臺氏液的溫度為38-39℃，并不斷地通氣至臺氏溶液中。離體腸段的運動有時不立即開始，可能要經(jīng)過10-30min才開始運動。

2．儀器連接將離體器官測定儀上的張力換能器與計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀的輸入端相聯(lián)。

3．實驗項目

①記錄離體腸段自動性收縮5min。

②溫度對腸運動的影響：逐漸降低臺氏液的溫度至30℃，觀察腸段運動有否改變？

③溫度恢復正常水平后，加入0.1%腎上腺素數(shù)滴于平滑肌肌槽內(nèi)，觀察對腸段運動的影響。然后用臺氏溶液（38-39℃）沖洗。

④待腸段運動恢復至原來情況時，加0.01%乙酰膽堿數(shù)滴，這時腸平滑肌有何反應？

[注意事項]實驗兔先禁食24h，在實驗前一小時喂給飼料，可提高小腸平滑肌興奮性。敲擊實驗兔延髓致死后，應立即剖開腹腔取出十二指腸腸段，放入冷的臺氏液中，以降低代謝和氧耗量，然后取兩段小腸放入離體器官測定儀中，維持39℃，適度充氧，可保持小腸較好的興奮性。3、應使用新鮮的臺氏液進行小腸體外實驗。

[思考題]離體小腸的運動有何特點？影響小腸運動的因素有哪些？實驗二十八膽汁和胰液的分泌

[目的]觀察膽汁和胰液的分泌，了解膽汁和胰液分泌的神經(jīng)體液因素調(diào)節(jié)原理。

[原理]動物的胰液和膽汁分泌都受神經(jīng)體液因素的調(diào)節(jié)。促進分泌的神經(jīng)纖維主要存在于迷走神經(jīng)內(nèi)，內(nèi)臟神經(jīng)也含有少量這類纖維。在小腸黏膜內(nèi)產(chǎn)生的促胰液素，膽囊收縮素-促胰酶素，促胃液素是促進膽汁和胰液分泌的主要體液因素。在正常情況下，狗的膽汁連續(xù)不斷地由肝臟生成，不過僅在進食等條件下胰液和膽汁才輸入十二指腸。而豬、牛、羊等動物的胰液和膽汁不斷生成和輸入十二指腸內(nèi)。

[實驗對象]兔或狗或豬

[實驗材料]乙醚，氯醛糖（或戊巴比妥鈉，氨基甲酸乙酯），手術臺，手術器械，促胰液素，0.4%鹽酸，阿托品，量筒，塑料插管，計滴器，計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀。

[實驗方法與步驟]

1．手術操作

如用兔實驗，可用戊巴比妥鈉或氨基甲酸乙酯靜脈注射麻醉。剖開腹腔找出十二指腸后，在距幽門約30—40cm處提起小腸對著光線可以找到胰導管。在胰導管和十二指腸處細心分離胰導管約0.6—0.8cm，于其下穿以絲線；在靠近十二指腸端剪一小孔，插入充滿生理鹽水的醫(yī)用塑料管，結(jié)扎絲線。然后在十二指腸起始部找出總膽管，也同樣插入塑料管用絲線結(jié)扎，固定后可進行實驗。

狗用氯醛糖和乙醚（或戊巴比妥鈉）麻醉以后，仰臥固定于手術臺上，剪去其頸部被毛，然后切開頸部皮膚，分離肌肉組織，找出并切開氣管，裝上氣管套管。找出兩側(cè)迷走交感神經(jīng)干，穿以生理鹽水浸濕的絲線，以備以后切斷和刺激迷走神經(jīng)用。頸部手術完畢后，以溫濕紗布覆蓋。

在狗的后肢大腿內(nèi)側(cè)面，切開皮膚，找出股靜脈，插入塑料管，連以輸液裝置。最后于狗的腹部中線切開皮膚，剖開腹腔后，翻開網(wǎng)膜，找出十二指腸，其旁即為胰腺。在胰尾部之上1—3cm處，細心分離（注意此處血管較多，易出血），找出胰導管，于其下穿過絲線后，剪破之，插入充滿生理鹽水的塑料管，用線縛結(jié)。此外，找出總膽管，也插入塑料管，并將兩套管游離端引置于腹外，接以電動計滴器，以備記錄之用。作完腹部手術后，應以止血鉗夾攏創(chuàng)口皮膚，上覆溫熱濕紗布，以避免實驗動物大量散熱，引起不良后果。

如用豬作為實驗動物，切開頸部皮膚，沿氣管兩側(cè)找出最粗的神經(jīng)即為迷走神經(jīng)。引出胰導管的手術也有改變：使豬左側(cè)臥，剪去右側(cè)腹部被毛，在倒數(shù)第三肋骨處，切開皮膚，分離肌肉。將倒數(shù)第三肋骨下端用骨剪切除一段，長約3cm。然后剖開腹膜，找出十二指腸。在胰尾與十二指腸相連處，就可找到胰導管。插管的方法與狗相同?？偰懝芫o靠幽門處，也以同樣方法插入塑料管。

2．儀器連接

將計滴器與計算機生物信號采集系統(tǒng)或生理記錄儀輸入端相連，或使用秒表直接計數(shù)。

3．實驗項目

（1）胰液和膽汁的自動分泌：記數(shù)胰液和膽汁在不予刺激情況下每分鐘分泌滴數(shù)，連續(xù)5—10min，并計算其每分鐘平均滴數(shù)。

（2）體液性（或化學性）因素影響下的分泌：

①注射稀鹽酸的影響：向十二指腸內(nèi)注射30—50mL（兔為20mL）0.4%鹽酸（37℃），在5—10min內(nèi)有無反應？以后記數(shù)每分鐘胰液和膽汁的滴數(shù)，直至恢復正常為止（約經(jīng)10—20min）。

②注射毛果蕓香堿的影響：在股靜脈注入0.1%毛果蕓香堿（匹魯卡品）1-2mL（兔0.5-1mL皮下注射），胰液