1、實(shí)驗(yàn) 1 植物組織滲透勢的測定質(zhì)壁別離法一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康挠^察植物組織在不同濃度溶液中細(xì)胞質(zhì)壁別離的產(chǎn)生過程及其用于測定植 物組織滲透勢的方法。二、實(shí)驗(yàn)原理當(dāng)植物組織細(xì)胞內(nèi)的汁液與其周圍的某種溶液處于滲透平衡狀態(tài)， 植物細(xì)胞 內(nèi)的壓力勢為零時(shí)， 細(xì)胞汁液的滲透勢就等于該溶液的滲透勢。 該溶液的濃度稱 為等滲濃度。當(dāng)用一系列梯度濃度溶液觀察細(xì)胞質(zhì)壁別離現(xiàn)象時(shí)， 細(xì)胞的等滲濃度將介于 剛剛引起初始質(zhì)壁別離的濃度和尚不能引起質(zhì)壁別離的濃度之間的溶液濃度。 代 入公式即可計(jì)算出滲透勢。三、實(shí)驗(yàn)儀器、試劑、材料等顯微鏡；載玻片及蓋玻片；鑷子；刀片 配成梯度濃度的蔗糖溶液各 50ml。稱蔗糖用蒸餾水配成100m

2、l，其濃度為1m0le/L母液。再配制成以下各種 濃度：:吸母液25ml+水25ml:吸母液22.5ml+水:吸母液20.0ml+水:吸母液17.5ml+水:吸母液15.0ml+水:吸母液12.5ml+水:吸母液10.0ml+水:吸母液7.5ml+水:吸母液5.0ml+水四、實(shí)驗(yàn)方法將帶有色素的植物組織葉片 ，一般選用有色素的洋蔥鱗片的外表皮、紫 鴨跖草、苔蘚、紅甘藍(lán)或黑藻、絲狀藻等水生植物，也可用蠶豆、玉米、小麥等 作物葉的表皮。 撕取下表皮， 迅速分別投入各種濃度的蔗糖溶液中， 使其完全浸 入， 510分鐘后，從開始依次取出表皮薄片放在滴有同樣溶液的載玻片上，蓋 上蓋玻片， 于低倍顯微鏡下

3、觀察， 如果所有細(xì)胞都產(chǎn)生質(zhì)壁別離的現(xiàn)象， 那么取低 濃度溶液中的制片作同樣觀察， 并記錄質(zhì)壁別離的相對程度。 實(shí)驗(yàn)中必須確定一 個(gè)引起半數(shù)以上細(xì)胞原生質(zhì)剛剛從細(xì)胞壁的角隅上別離的濃度， 和不引起質(zhì)壁別 離的最高濃度。在找到上述濃度極限時(shí)，用新的溶液和新鮮的葉片重復(fù)進(jìn)行幾次，直至有把 握確定為止。在此條件下，細(xì)胞的滲透勢與兩個(gè)極限溶液濃度之平均值的滲透勢 相等。將結(jié)果記錄下表。測出引起質(zhì)壁別離剛開始的蔗糖溶液最低濃度和不能引起質(zhì)壁別離的最高 濃度平均值之后，可按以下公式計(jì)算在常壓下該組織細(xì)胞質(zhì)液的滲透勢。s RTiCs為細(xì)胞滲透勢。R為氣體常數(shù)=0.083 X05/L Pa /mol KT為絕

4、對溫度，單位K，即273C +t，t為實(shí)驗(yàn)濕度。I為解離系數(shù)，蔗糖為1。C為等滲溶液的濃度，單位為 mol/L。那么:s X 105x (273C +t) X 1 X C實(shí)驗(yàn)人時(shí)間材料名稱實(shí)驗(yàn)時(shí)室溫C蔗糖摩爾濃度mol/L滲透勢Pa質(zhì)壁別離的相對程度以圖表示五、實(shí)驗(yàn)作業(yè):1、表達(dá)細(xì)胞滲透作用的原理。2、測定并計(jì)算不同植物組織的滲透勢實(shí)驗(yàn) 2 植物組織水勢的測定小液流法一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?了解植物組織中水分狀況的另一種表示方法及用于測定的方法和它們的優(yōu)缺點(diǎn)。二、實(shí)驗(yàn)原理 將植物組織分別放在一系列濃度遞增的溶液中，當(dāng)找到某一濃度的溶液與 植物組織之間水分保持動(dòng)態(tài)平衡時(shí)， 那么可認(rèn)為此植物組織的水勢等于該

5、溶液的水 勢。因溶液的濃度是的，可以根據(jù)公式算出其滲透壓，取其負(fù)值，為溶液的 滲透勢書即代表植物的水勢wwaterpotential。»w=書齊一 P= CRT大氣壓三、實(shí)驗(yàn)儀器、試劑、材料等一材料：小白菜或其它作物葉片二儀器設(shè)備： 1.帶塞青霉素小瓶 12 個(gè)；2.帶有橡皮管的注射針頭； 3. 鑷子； 4.打孔器 5.培養(yǎng)皿。三試劑：、蔗糖溶液； 2.甲烯藍(lán)粉末。四、實(shí)驗(yàn)方法1、取枯燥潔凈的青霉素瓶 6個(gè)為甲組，各瓶中分別參加蔗糖溶液約 4ml約為青霉素瓶的2/3處，另取6個(gè)枯燥潔凈的青霉素瓶為乙組，各瓶中 分別參加蔗糖溶液 1ml 和微量甲烯藍(lán)粉末著色，上述各瓶加標(biāo)簽注明濃度。2

6、、取待測樣品的功能葉數(shù)片， 用打孔器打取小圓片約 50 片，放至培養(yǎng)皿中，混合均勻。用鑷子分別夾入 5 8個(gè)小圓片到盛有不同濃度的甲烯藍(lán)蔗糖溶液的 青霉素瓶中乙組 。蓋上瓶塞，并使葉圓片全部浸沒于溶液中。放置約3060min，為加速水分平衡，應(yīng)經(jīng)常搖動(dòng)小瓶。3、經(jīng)一定時(shí)間后，用注射針頭吸取乙組各瓶藍(lán)色糖液少許，將針頭插入對 應(yīng)濃度甲組青霉素瓶溶液中部， 小心地放出少量液流， 觀察藍(lán)色液流的升降動(dòng)向。每次測定均要用待測濃度的甲烯藍(lán)蔗糖溶液清洗幾次注射針頭 。如此方法檢 查各瓶中液流的升降動(dòng)向。 假設(shè)液流上升， 說明浸過小圓片的蔗糖溶液濃度變小即植物組織失水；說明葉片組織的水勢高于該濃度糖溶液的滲

7、透勢；如果藍(lán) 色液流下降那么說明葉片組織的水勢低于該糖溶液的滲透勢， 假設(shè)藍(lán)色液流靜止不 動(dòng)，那么說明葉片組織的水勢等于該糖溶液的滲透勢， 此糖溶液的濃度即為葉片組 織的等滲濃度4 、將求得的等滲濃度值代入如下公式：tw=書圧一。式中：植物組織的水勢單位：Mpa書圧溶液 的滲透勢C =等滲濃度mol/L只=氣體常數(shù)丁=絕對溫度 匚解離系數(shù)蔗 糖=1, CaCI2=1 大氣壓=。五、實(shí)驗(yàn)作業(yè) 用小液流法測定植物組織的水勢與用質(zhì)壁別離法測定植物細(xì)胞的滲透勢都 是以外界溶液的濃度算出的溶質(zhì)勢，它們之間的區(qū)別何在？實(shí)驗(yàn) 3 蒸騰速率的測定快速稱重法一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康膶W(xué)會(huì)用快速稱重法測定植物的蒸騰速率，加深對

8、植物水分代謝的認(rèn)識。二、實(shí)驗(yàn)原理植物蒸騰失水，重量減輕。因此，用稱重法測得一定面積或一定重量的蒸騰 器官在一定時(shí)間里的失水量，即可測得其蒸騰速率。三、實(shí)驗(yàn)儀器、試劑、材料等精度為10mg的扭力天平1架枝剪1把；剪刀1把；鉛筆1支；線1根； 坐標(biāo)方格紙1張；標(biāo)簽1個(gè)；尺子1把；各種樹木的帶葉枝條。四、實(shí)驗(yàn)方法1、 將扭力天平放在被測樹木附近的平穩(wěn)處，調(diào)平，然后在被測植株上選一重 約10g左右且有代表性的枝條，在其基部掛上標(biāo)簽，并縛一細(xì)線。在綁線處 上方12cm處將、枝條剪下，立即稱重記為 W1，精確至0.001g，并在讀 數(shù)時(shí)準(zhǔn)確計(jì)時(shí)t1。2、迅速將枝條用線懸掛原處，使其在原環(huán)境中蒸騰，約15m

9、in后，取下枝條， 第二次稱重記為 W,精確至0.001g，并準(zhǔn)確計(jì)時(shí)t2。兩次所稱重量只 差即是這段時(shí)間內(nèi)枝條蒸騰部位的鮮重。3、求算葉面積或蒸騰部位的鮮重。1用稱紙法求算葉面積 用尺量出坐標(biāo)紙邊長，算出全紙面積，稱出全 紙重，精度同上。摘下葉子，平攤在坐標(biāo)紙上，在坐標(biāo)紙上用鉛筆繪出葉子輪廓， 剪下葉形，稱重，精度同上。按下式計(jì)算葉面積S：Scm2=剪下的葉形紙重gx全紙面積cm2全紙重g2求算蒸騰部位的鮮重 剪下枝條上的葉片和嫩梢，稱枝重 W3，精 度同上，W減去W即為蒸騰局部的鮮重：蒸騰部位的鮮重=W1-W24、計(jì)算蒸騰速率。蒸騰速率g/ m2 h1= W2)(g)10000 60S(c

10、m ) (t2 t1)(min)或：蒸騰速率mg/(g min)阿 W4)(mg)(W1 W3)(g) (t2 tj(min)五、實(shí)驗(yàn)作業(yè)計(jì)算所測植物的蒸騰強(qiáng)度實(shí)驗(yàn) 4 單鹽毒害及離子間拮抗現(xiàn)象一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?通過簡單試驗(yàn)說明培養(yǎng)液中各種離子平衡各種離子及其濃度的重要性。二、實(shí)驗(yàn)原理 離子間的拮抗現(xiàn)象的本質(zhì)是復(fù)雜的， 它可能反映不同離子對原生質(zhì)親水膠粒 的穩(wěn)定度、 原生質(zhì)膜的透性， 以及對各類酶活性調(diào)節(jié)等方面的相互制約作用， 從 而維持機(jī)體的正常生理狀態(tài)。三、實(shí)驗(yàn)儀器、試劑、材料等 燒杯；紗布；石蠟；2； 所用藥品均需用 AR四、實(shí)驗(yàn)方法實(shí)驗(yàn)前 34 天選擇飽滿的小麥種子 100粒浸種，在室溫下

11、萌發(fā)，待根長 1cm 時(shí)即可用作材料。取 4 個(gè)小燒杯，依次分別倒人不列鹽溶液： 1L KCI20.06 molL CaCl2 30.12 molL NaCI40.12 mol/L NaCI 100 ml + 0.06 mol/L CaCl2 1 ml 十/ L KCI 2.2 ml 小 燒杯用涂石蠟的紗布蓋上。 挑選大小相等及根系發(fā)育一致的小麥幼苗 10株或 20 株，小心種植在紗布蓋的孔眼里，使根系接觸到溶液，在室溫下培育 23 星期 后，即可看出在單鹽溶液中，小麥幼苗生長，特別是它們的根部出現(xiàn)畸形。五、實(shí)驗(yàn)作業(yè)比擬小麥在不同鹽溶液中的生長情況并加以解釋。實(shí)驗(yàn) 5 葉綠體色素的提取和別離紙

12、層析法、實(shí)驗(yàn)?zāi)康牧私馊~綠體色素提取別離的原理以及它們在光合作用中的意義。二、實(shí)驗(yàn)原理葉綠體色素是植物吸收太陽光能進(jìn)行光合作用的重要物質(zhì)， 主要由葉綠素 a、 葉綠素b、胡蘿卜素和葉黃素組成。從植物葉片中提取和別離色素是對其認(rèn)識和 了解的前提。利用葉綠體色素能溶于有機(jī)溶劑的特性，可用丙酮提取。別離色素的方法有多種， 紙層析是其中最簡便的一種。 當(dāng)溶劑不斷地從層析 濾紙上流過時(shí)， 由于混合物中各成分在兩相 即流動(dòng)相和固定相 間具有不同的 分配系數(shù)，它們的移動(dòng)速度不同，使樣品中的混合物得到別離。三、實(shí)驗(yàn)儀器、試劑、材料等大試管臺(tái)天平研缽量筒燒懷漏斗軟木層新華濾紙丙酮四氯化碳無水硫酸鈉碳酸鈣石英砂四、

13、實(shí)驗(yàn)方法1、稱取新鮮葉子2 g,放入研缽中加丙酮5ml，少許碳酸鈣和石英砂，研磨 成勻漿，再加丙酮5 ml，然后以漏斗過濾之，即為色素提取液。2、取準(zhǔn)備好的濾紙條2X 2 cm，將其一端剪去兩側(cè)，中間留一長約，寬 約的窄條。3、用毛細(xì)管取葉綠素溶液點(diǎn)于窄條的上方，注意一次所點(diǎn)溶液不可過多。 如色素過淡，用電吹風(fēng)吹干后再點(diǎn) 1 一 2 次。4、在大試管中參加四氯化碳 35ml 及少許無水硫酸鈉。 然后將濾紙條固定 于軟木塞上，插入試管內(nèi)，使窄端浸入溶劑中色素點(diǎn)要略高于液面，濾紙條邊 緣不可碰圖到試管壁 ，蓋緊軟木塞，直立于陰暗處進(jìn)行層析。5、經(jīng)過一 1 小時(shí)后，觀察別離后色素帶的分布。最上端橙黃

14、色為胡蘿卜素， 其次黃色為葉黃素，再下面藍(lán)綠色為葉綠素 a,最后的黃綠色為葉綠素bo五、實(shí)驗(yàn)作業(yè)提取葉綠素時(shí)為什么要加少量的碳酸鈣，加多了會(huì)出現(xiàn)什么問題？實(shí)驗(yàn) 6 光合速率的測定改良半葉法一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康墓夂纤俾适且豁?xiàng)重要的生理指標(biāo)，對研究植物的生命活動(dòng)、分析環(huán)境條件與 植物生長發(fā)育一級產(chǎn)量的關(guān)系，均具有重要的意義。此法所用設(shè)備簡單，操作方 便，數(shù)據(jù)比擬穩(wěn)定，適于田間應(yīng)用。學(xué)會(huì)用改良半葉法測定植物的光合速率。二、實(shí)驗(yàn)原理對稱葉片的兩側(cè)處在相同的條件下，光合速率應(yīng)根本相同?？上葴y出一側(cè)葉 片一定葉面積的干重，使另一側(cè)在光下進(jìn)行光合作用并阻止光合產(chǎn)物向外運(yùn)輸。 一定時(shí)間后，再測出該側(cè)葉片相同葉面積的干

15、重。 根據(jù)兩者重量之差、所用時(shí)間 和葉面積，即可求得葉片的光合速率。三、實(shí)驗(yàn)儀器、試劑、材料等分析天平；烘箱公用；打孔器1付；墊板1塊；鑷子1把；稱量瓶2個(gè); 標(biāo)簽牌假設(shè)干；脫脂棉簽1個(gè)；三氯甲烷；各種闊葉樹的葉片均可。四、實(shí)驗(yàn)方法1、選擇植物上有代表性的葉片假設(shè)干，掛上標(biāo)簽。2、按順序在選好的葉片基部葉脈會(huì)聚處背腹面及葉柄上端的周圍涂三氯甲 烷，使韌皮部的細(xì)胞中毒，以防止光喝產(chǎn)物外運(yùn)。3、在涂藥葉中脈的一側(cè)，避開較粗的側(cè)脈，用打孔器取小圓片假設(shè)干片， 其/、總面積以3050cm2為宜，置于稱量瓶中。從開始取第一篇小圓片時(shí)起計(jì)時(shí)。4、將稱量瓶置于8090C的烘箱中烘至恒重，然后在分析天平上稱重

16、，其 干重記為W1。5、自計(jì)時(shí)起46h后，按先前順序在葉的兩一側(cè)對稱部位， 用同一付打孔器 取相同數(shù)目的小圓片。計(jì)時(shí)方法與第一次取圓片相同。烘干，稱重，其干重記為 W2。&計(jì)算凈光合速率mg有機(jī)物/ dm2 h=W1mg W2mg 100光合時(shí)間h次所取圓片總面積cm2五、實(shí)驗(yàn)作業(yè)計(jì)算所測植物的凈光合速率。實(shí)驗(yàn) 7 植物呼吸強(qiáng)度的測定 小籃子法 一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康氖煜y定呼吸強(qiáng)度的方法。二、實(shí)驗(yàn)原理利用BaOH2溶液吸收呼吸過程中釋放的 CO2,實(shí)驗(yàn)結(jié)束后，用草酸溶液 滴定殘留的 BaOH 2，從空白和樣品兩者消耗草酸溶液之差，即可計(jì)算出呼 吸過程中釋放的CO2量。三、實(shí)驗(yàn)儀器、試劑、材料等

17、廣口瓶；溫度計(jì)；酸式滴定管；枯燥管；尼龍網(wǎng)制小籃；0.05 mol/L Ba OH 2；指示劑： 0.1%麝香草酚酞酒精溶液。1/44 mol/L草酸溶液：準(zhǔn)確稱取重結(jié)晶的草酸 H2C2O4 2H2，溶于蒸餾水， 配成1 000ml，每ml溶液相當(dāng)于1mg的CO2。四、實(shí)驗(yàn)方法1、取 500ml 廣口瓶一個(gè)，裝配一只三孔橡皮塞，一孔插入盛堿石灰的枯燥 管，以吸收空氣中的CO2，保證進(jìn)入呼吸瓶的空氣無 CO2, 一孔插入溫度計(jì)，另 一孔直徑約 1cm 左右供滴定用，滴定前用小橡皮塞塞緊。瓶塞下面掛一尼龍網(wǎng) 制小籃，用以盛實(shí)驗(yàn)材料。2、稱取萌發(fā)的小麥或水稻種子15g,裝于小籃內(nèi)，將小籃掛在廣口瓶內(nèi)

18、，同時(shí)加OH2溶液25ml于廣口瓶內(nèi)，立即塞緊瓶塞，并用熔化的石蠟密封瓶口， 防止漏氣。每 10 分鐘左右，輕輕地?fù)u動(dòng)廣口瓶，破壞溶液外表的BaCO3 薄膜，以利對CO2的吸收。3、1 小時(shí)后，小心翻開瓶塞，迅速取出小籃，參加 2滴指示劑，立即重新塞 緊瓶塞。然后拔出小橡皮塞，將滴定管插入小孔中，用 1/44 mol/L的草酸滴定, 直到藍(lán)綠色轉(zhuǎn)變成無色為止。記錄滴定所耗用的草酸溶液的 ml 數(shù)。4、另取用沸水煮死的種子為材料，作同樣測定，以此作為對照。5、計(jì)算。五、實(shí)驗(yàn)作業(yè)比擬不同類型種子的呼吸強(qiáng)度實(shí)驗(yàn) 8 植物體內(nèi)有機(jī)物運(yùn)輸途徑環(huán)割法一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康?熟悉植物體有機(jī)物運(yùn)輸?shù)耐緩?。二、實(shí)驗(yàn)原理

19、 韌皮部的篩管是植物體內(nèi)有機(jī)物質(zhì)運(yùn)輸?shù)耐ǖ溃h(huán)割試驗(yàn)即可以證明這一 點(diǎn)。在木本植物的枝條或樹干上，用刀環(huán)形剝?nèi)ヒ粚訕淦ぃ钸_(dá)形成層，從而阻 斷了割環(huán)上下方有機(jī)物的交換，在割環(huán)的上方聚集著從葉片運(yùn)率的大量有機(jī)物， 引趄樹皮組織生長加強(qiáng)，而形成愈傷組織或瘤狀物。三、實(shí)驗(yàn)儀器、試劑、材料等解剖刀四、實(shí)驗(yàn)方法1、夏季，在幼齡楊樹或其他木本植物上選定尚未發(fā)生分枝的旺長枝條，于其中1 2枝進(jìn)行環(huán)狀剝皮，使剝環(huán)寬度在3cm左右。環(huán)割后，每星期觀察一次 枝條變化，并與生長情況相似的對照枝條進(jìn)行比擬， 特別注意觀察以下幾個(gè)方面； 1 剝環(huán)上部葉片是否萎蔫？2枝條頂端生長速度有何改變？ 3剝環(huán)上下切口愈傷組織生長

20、情況。4剝環(huán)上下部休眠芽萌發(fā)情況。2、 另選一相似枝條進(jìn)行雙環(huán)割，再剝環(huán)相距 40-50cm,同樣觀察以上各項(xiàng)。3、秋季要將以上處理的枝條剪下連同對照枝條，風(fēng)于保存作教學(xué)材料五、實(shí)驗(yàn)作業(yè)表達(dá)植物體中有機(jī)物從葉運(yùn)到根的途徑。實(shí)驗(yàn)9 IAA的生物鑒定小麥芽鞘切段伸長法一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康氖煜どL素含量的生物測定方法。二、實(shí)驗(yàn)原理將小麥胚芽鞘的延長局部切成段，漂浮在含有生長素IAA的溶液中，這些切段可以繼續(xù)伸長，在一定濃度范圍內(nèi)，芽鞘切段的伸長與生長素濃度的對數(shù)成 正比，因而可通過測定切段伸觀多少來測定生長素的含量。三、實(shí)驗(yàn)儀器、試劑、材料等25°C暗室；濾紙；旋轉(zhuǎn)器；分析天平；小瓷缸；大瓷缸；培

21、養(yǎng)皿；銀試管； 移液管；青霉素瓶；刀片；小鑷子；尼龍網(wǎng)；刻度尺；半對數(shù)座標(biāo)紙；飽和漂白 粉溶液；小麥品種，揚(yáng)麥1號最好用中農(nóng)28；100 ppmIAA母液：稱10 mg IAA 溶于少量無水酒精中，再用水稀釋至 100ml。此溶液在冰箱中可保存一個(gè)月。緩沖液：稱取K2HPO4, 1.7 94g,檸檬酸，蔗糖AR20g溶于1000ml重蒸 餾水中，pH為。四、實(shí)驗(yàn)方法1、挑選大小均勻的小麥種子必須用前一二年的種子，因當(dāng)年新收的種子 發(fā)芽不整齊，用飽和漂白粉溶液滅菌30分鐘后，用自來水沖冼半天，放在盛腫 濕潤濾紙的培養(yǎng)皿中，腹溝朝下，在 25oC黑暗條件下萌發(fā)24小時(shí)。2、當(dāng)?shù)谝慌吒霈F(xiàn)后，移于用

22、尼龍網(wǎng)覆蓋的小瓷缸中， 胚根插入尼龍網(wǎng)眼。 小瓷缸放入盛水的大瓷缸中，以保持濕度或在小瓷缸上罩上燒杯保濕。3 、繼續(xù)在25 °C黑暗下培養(yǎng)，約40小時(shí)后，當(dāng)胚芽鞘長達(dá)3cm左右時(shí)，選取幼苗作為生物鑒定材料，因這樣大小的芽鞘對IAA最敏感。4 、切去芽鞘尖端3mm取下面5mn切段作試驗(yàn)。5 、將5mm切段漂浮在重蒸餾水中浸洗23小時(shí)，除去初段中內(nèi)源激素。6 、配制0.001、0.01、0.1、1.0、10 PPm的IAA的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液配在具 塞試管中。吸取 100ppmlAA1ml + 9ml 緩沖液 ppm IAA吸取 10PPmIAA1ml + 9ml 緩沖液 1PPm IAA吸取

23、 1PPmIAA1ml + 9ml 緩沖液 0.1PPm IAA吸取 0.1PPmlAAml + 9ml 緩沖液 001 PPm IAA吸取 0.01 PPm IAA1ml + 9ml 緩沖液 0.O01 PPm IAA7、在具塞青霉素瓶中分別吸入上述IAA系列標(biāo)準(zhǔn)溶液0. 001、0. 01、1.0、10PPm IAA 2ml，另外吸取2ml緩沖浪作為對照。8、切段浸泡后，用濾紙將切段外表水分吸干，在上述盛有不同濃度生長素的青霉素瓶中，分別放入芽鞘切段 10段最好放11 12段，以便挑選加塞， 每一濃度重復(fù)3次。將青霉素瓶置于旋轉(zhuǎn)器上旋轉(zhuǎn)速度為16r/min丨在25 C暗室中旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)。9、上

24、述操作均需在暗室中綠光下進(jìn)行。10、旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)20小時(shí)后取出芽鞘切段，在濾紙上吸干，測量芽鞘切段的長 度。11、在半對數(shù)坐標(biāo)紙上，以芽鞘切段增長%* 1.0PPm范圍內(nèi)，切段的伸長與 生長素濃度的對數(shù)成正比，如需鑒定某一植物提取液中生長素含量， 必須與標(biāo)準(zhǔn) 的IAA作對照。處理長度對照長度彳,“ 、 100%原來長度*芽鞘切段增長%五、實(shí)驗(yàn)作業(yè)1、 采取小麥芽鞘切段伸長法測定生長素含量時(shí)，為什么要將芽鞘尖端3mm切去而取下面的5mm乍實(shí)驗(yàn)？2、為什么要用緩沖液了配制IAA的系列標(biāo)準(zhǔn)溶液？實(shí)驗(yàn)10生長調(diào)節(jié)劑在插條生根上的應(yīng)用 一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康牧私馍L調(diào)節(jié)劑對植物插條生根的影響。二、實(shí)驗(yàn)原理生長素類的生長調(diào)節(jié)劑和ABT生根粉對根原始體的形成有促進(jìn)作用。因此對 不易插根生條的植物常用一定濃度的這類藥品處理插條，使其易于生根成活。三、實(shí)驗(yàn)儀器、試劑、材料等100mL燒杯4個(gè)；培養(yǎng)皿1個(gè)；鐘罩1個(gè)；枝剪2把；沙床公用；玻璃 棒 1 支；