蛋白組學二維電泳演示文稿當前1頁，總共23頁。優(yōu)選蛋白組學二維電泳當前2頁，總共23頁。蛋白質染色方法膠內：考馬斯亮藍R-250(CBBR-250)、CBBG-250、銀染、負染、熒光染料染色以及放射性同位素標記等轉移到膜（PVDF、硝酸纖維素膜）上：酰胺黑(AmidoBlack)、麗春紅S(PonceauS)當前3頁，總共23頁。（一）考染（考馬氏亮藍染色）1、考馬氏亮藍與蛋白質反應機理

考馬氏亮藍（Coomassiebrilliantblue）是一類三苯基甲烷衍生物。分為R-250（紅蘭色）、R-350（紅蘭色）、G-250（藍綠色），它們與蛋白質結合生成深藍色復合物，在464-595nm有吸收峰（595nm最大），且在比較寬的范圍內（15-20μg

）掃描峰的面積與蛋白質量成線性關系，因此可在595nm對蛋白質進行定量檢測，而且在一定pH條件下，這種染料-蛋白質復合物被完全解聚。

2、考染機理

膠體內染料和溶液中自由擴散染料間形成平衡后，溶液中少量自由染料穿透凝膠基質，有選擇性地對蛋白質進行染色，而膠體態(tài)的染料排阻在膠外，阻止了背景的生成。膠內蛋白質染色的關鍵是讓蛋白質染色，而膠體不染色。當前4頁，總共23頁。CoommassieBrilliantBlueG-250當前5頁，總共23頁。3、考染程序考染程序至少600多種，主要變換是將以下程序中的醋酸換成三氯乙酸、磷酸或高氯酸，但三氯乙酸易使谷氨酸羧基側鏈不可逆酯化，造成肽譜數(shù)據(jù)復雜化。

（1）固定：凝膠浸泡于50%乙醇+10%冰醋酸水溶液中，至少1h，可過夜。

（2）染色：凝膠浸泡于染色液中至少2h。染色液組成：45%甲醇+10%冰醋酸+0.25%考馬氏亮藍G-250，混均過濾。

（3）脫色：多次更換脫色液，直至背景脫凈，稍稍提高溫度可加快脫色。脫色液組成：25%乙醇+8%冰醋酸。

（4）保存：凝膠脫色后水洗掃描備份，用保鮮膜包裹，一個月內進行質譜鑒定；長時間保存需將蛋白點切下，進一步脫色后貯于-80℃。當前6頁，總共23頁。4、考染特點

（1）可以獲得無背景或低背景的圖譜；

（2）染色過程需24-48h，所需時間較長；

（3）靈敏度不高，為100-10ng，只能檢測10-100ng的蛋白質，低豐度的蛋白質難以顯色。當前7頁，總共23頁。（二）銀染1、原理：堿性銀氨（Ag(NH3)2+）染色法和酸性硝酸銀（AgNO3）染色法。

酸性硝酸銀染色法的原理是一個照相的過程，凝膠在酸性環(huán)境下與硝酸銀溫育，銀離子附與蛋白質表面，然后在堿性環(huán)境下里用福爾馬林還原成金屬銀。

堿性銀氨染色法的原理是用氨水來形成銀氨復合物，銀氨復合物與膠內SDS-蛋白質復合物結合，然后在酸性條件下用福爾馬林將銀氨還原成金屬銀。當前8頁，總共23頁。2、特點（1）酸性銀染染色背景淺、容易控制，對酸性蛋白質的染色靈敏度稍高，堿性銀染靈敏度稍高，但背景深、不容易控制。

（2）相對于考染，靈敏度高，可達200pg。

（3）但由于存在戊二醛的特異性反應，對下一步的酶切肽譜提取存在困難；增敏過程蛋白質被部分提取至膠外。當前9頁，總共23頁。3、程序1.分析型銀染（不能用于質譜鑒定）

(1)水洗膠5min；

(2)40%乙醇，10%乙酸固定1hr；

(3)5%乙醇，5%乙酸固定過夜；

(4)水洗20min兩遍；

(5)5%戊二醛

1hr；

(6)水洗30min四遍；

(7)250mL新鮮配制的銀氨液(1mLNaOH與5mL飽和氨水混合再加10mL20%AgNO3)/膠45min；

(8)水洗3min三遍；

(9)1.5mL1%檸檬酸、125μL37%甲醛/膠顯色；

(10)5%乙酸停顯10min；

(11)水洗10min三遍。當前10頁，總共23頁。2.快速銀染（和質譜鑒定相匹配）當前11頁，總共23頁。（三）負染1、特點

（1）負染能提高SDS膠上蛋白質的回收率，常用有銅染、鋅-咪唑染等。負染色結果在凝膠表面產生半透明背景，而凝膠顯示黑色背景或相應底色，蛋白質以透明形式被檢測出來，而且蛋白質被很好地保存下來。

（2）顯色過程僅需5-15min

（3）蛋白質易從膠上取出，一般用EDTA絡合金屬離子就可轉移出蛋白質。

（4）靈敏度15ng

2、原理（鋅-咪唑染料）

咪唑存在時，自由或弱結合的鋅離子以鋅-咪唑形式沉淀下來，而大部分鋅離子因與蛋白質結合牢固而留在膠上，從而導致半透明背景上的空白區(qū)域，這就是負染過程。當前12頁，總共23頁。人肝癌細胞系MHCC97的部分雙向凝膠電泳鋅染圖譜當前13頁，總共23頁。鋅染程序(1)水洗1min；(2)0.2mol/L咪唑、0.1%SDS溶液10min；(3)0.2mol/L氯化鋅1min；(4)水洗5sec三遍；當前14頁，總共23頁。（四）熒光染色（Cy3和Cy5）1、原理：利用熒光染料對蛋白質進行標記，在光激發(fā)下產生熒光，通過掃描得到圖象。比如用甲基Cy3與甲基Cy5兩種染料分別對兩個不同蛋白樣品進行熒光標記，并在一塊2-DE膠上進行運行，由于兩種染料激發(fā)波長不同，掃描時可得到兩張有差異的圖象，因此可用于差異蛋白質組學研究。

2、特點

（1）靈敏度250pg與銀染相近，但線性范圍高于銀染。

（2）蛋白質被熒光共價修飾，改變了移動性能，降低了溶解性，導致質譜鑒定出現(xiàn)偏差。

（3）不同樣品由于所含蛋白質可被熒光修飾的功能基團數(shù)不一樣，靈敏度變化不一樣。當前15頁，總共23頁。二維電泳熒光檢測RedCy3GreenCy5當前16頁，總共23頁。（五）SYPRORuby熒光染色基于釕的金屬螯合染料檢測靈敏度0.5－1ng染色速度快，15min可完成線性動態(tài)范圍廣需要紫外或激光檢測系統(tǒng)和質譜檢測兼容當前17頁，總共23頁?？偨Y染色方法靈敏度線性范圍與質譜兼容性費用硬件要求考染10ng3++++銀染200pg7+++負染15ng3++++熒光標記250pg104

+++++++++++當前18頁，總共23頁。二維電泳的圖象分析當前19頁，總共23頁。圖象分析對雙向電泳圖譜上的這些蛋白質點進行檢測、定量、比較、分析和歸類主要包括：圖象采集圖象分析：蛋白質點檢測、背景消除、蛋白點匹配、歸一化處理、數(shù)據(jù)輸出數(shù)據(jù)庫的建立當前20頁，總共23頁。圖象采集（imagecollection）透射掃描方式光密度掃描：考染、銀染、負染激光誘導熒光掃描：熒光染色當前21頁，總共23頁。蛋白點檢測（spotdetection）蛋白點定位、點形狀、點豐度參數(shù)設定：最模糊的點、最小的點、最大的點和膠的背景