FBXW7α質(zhì)粒構(gòu)建、真核表達(dá)及其對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移的多維度解析_第1頁
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FBXW7α質(zhì)粒構(gòu)建、真核表達(dá)及其對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移的多維度解析一、引言1.1研究背景膽管癌是一種起源于膽管上皮細(xì)胞的惡性腫瘤,在全球范圍內(nèi),其發(fā)病率呈現(xiàn)出逐漸上升的趨勢。尤其是在亞洲地區(qū),膽管癌的發(fā)病情況更為顯著。大部分膽管癌患者在首次診斷時(shí),腫瘤往往已經(jīng)處于無法切除或者轉(zhuǎn)移的狀態(tài),這使得治療難度大幅增加。由于膽管癌早期癥狀隱匿,缺乏特異性,多數(shù)患者確診時(shí)已處于中晚期,失去了手術(shù)根治的最佳時(shí)機(jī)。據(jù)統(tǒng)計(jì),膽管癌患者的5年生存率不足5%,術(shù)后5年復(fù)發(fā)率大于60%,嚴(yán)重威脅著患者的生命健康,給患者家庭和社會(huì)帶來了沉重的負(fù)擔(dān)。在腫瘤研究領(lǐng)域,F(xiàn)BXW7基因逐漸成為關(guān)注的焦點(diǎn)。FBXW7基因編碼的蛋白質(zhì)屬于F-box蛋白家族成員,是Skp1-Cull-Fbox(SCF)泛素化連接酶復(fù)合體中的識(shí)別亞基,在人體各大組織細(xì)胞中均有表達(dá)。它通過泛素化降解多種轉(zhuǎn)錄活性因子及癌蛋白,參與細(xì)胞周期調(diào)控、基因轉(zhuǎn)錄、細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、損傷DNA修復(fù)、細(xì)胞凋亡等多個(gè)關(guān)鍵生物學(xué)過程。一旦FBXW7基因發(fā)生突變或缺失,正常的細(xì)胞生理功能就會(huì)被破壞,進(jìn)而導(dǎo)致腫瘤的發(fā)生和發(fā)展,增加患者不良預(yù)后的風(fēng)險(xiǎn),因此被視為一種重要的腫瘤抑制基因及潛在的腫瘤治療靶點(diǎn)。FBXW7基因經(jīng)過選擇性拼接,會(huì)產(chǎn)生3種蛋白亞型,分別為FBXW7α、FBXW7β和FBXW7γ,它們?cè)诩?xì)胞內(nèi)的定位和功能各有差異。FBXW7α主要定位于細(xì)胞核內(nèi),在細(xì)胞周期調(diào)控、細(xì)胞增殖與分化等過程中發(fā)揮著獨(dú)特的作用,與腫瘤的發(fā)生發(fā)展關(guān)系密切。已有研究表明,F(xiàn)BXW7α在多種惡性腫瘤中表達(dá)異常,通過對(duì)相關(guān)癌蛋白的降解,影響腫瘤細(xì)胞的生物學(xué)行為。然而,F(xiàn)BXW7α在膽管癌中的具體作用機(jī)制,尤其是其對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移能力的影響,尚未完全明確。深入研究FBXW7α在膽管癌中的作用及機(jī)制,對(duì)于揭示膽管癌的發(fā)病機(jī)制、尋找有效的治療靶點(diǎn)具有重要的理論和實(shí)踐意義。1.2研究目的和意義本研究旨在構(gòu)建FBXW7α質(zhì)粒,并實(shí)現(xiàn)其在膽管癌細(xì)胞中的真核表達(dá),進(jìn)而深入探究FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移能力的影響及其潛在分子機(jī)制。通過基因工程技術(shù)構(gòu)建FBXW7α過表達(dá)或敲低的質(zhì)粒,將其轉(zhuǎn)染至膽管癌細(xì)胞系中,利用細(xì)胞生物學(xué)和分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)方法,檢測細(xì)胞遷移能力的變化,如劃痕實(shí)驗(yàn)、Transwell遷移實(shí)驗(yàn)等。同時(shí),通過蛋白質(zhì)免疫印跡、實(shí)時(shí)熒光定量PCR等技術(shù),分析與細(xì)胞遷移相關(guān)的信號(hào)通路和分子標(biāo)志物的表達(dá)變化,以揭示FBXW7α調(diào)控膽管癌細(xì)胞遷移的分子機(jī)制。膽管癌的高轉(zhuǎn)移性是導(dǎo)致患者預(yù)后不良的主要原因之一,目前針對(duì)膽管癌轉(zhuǎn)移的治療手段十分有限。本研究通過對(duì)FBXW7α的深入研究,有望揭示其在膽管癌轉(zhuǎn)移過程中的關(guān)鍵作用,為膽管癌的治療提供新的潛在靶點(diǎn)和治療策略。若能證實(shí)FBXW7α可有效抑制膽管癌細(xì)胞的遷移,那么就可以通過研發(fā)相關(guān)藥物或基因治療方法,來提高膽管癌患者的生存率和生活質(zhì)量。此外,對(duì)FBXW7α作用機(jī)制的研究,也有助于進(jìn)一步理解膽管癌的發(fā)病機(jī)制,豐富腫瘤轉(zhuǎn)移的理論體系,為其他惡性腫瘤的研究提供借鑒和參考。二、FBXW7α的生物學(xué)基礎(chǔ)2.1FBXW7基因概述FBXW7基因,又稱F框/WD40域蛋白7基因(F-boxandWD-40domainprotein7)或hCDC4,在人體細(xì)胞的生理活動(dòng)中扮演著極為重要的角色。從基因結(jié)構(gòu)上看,F(xiàn)BXW7基因在人類染色體中定位于4q31,由1個(gè)特異性的外顯子和10個(gè)共有的外顯子組成。這種獨(dú)特的外顯子組成方式,使得FBXW7基因能夠通過選擇性拼接,產(chǎn)生3種不同的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物,即FBXW7α、FBXW7β和FBXW7γ,它們各自編碼不同的蛋白亞型。FBXW7蛋白屬于F-box蛋白家族成員,是Skp1-Cull-Fbox(SCF)泛素化連接酶復(fù)合體中的關(guān)鍵識(shí)別亞基。它包含了若干蛋白質(zhì)相互作用的保守結(jié)構(gòu)域,這些結(jié)構(gòu)域?qū)τ贔BXW7蛋白行使其生物學(xué)功能至關(guān)重要。其N末端包含8個(gè)WD40的重復(fù)序列,這些重復(fù)序列構(gòu)成了底物結(jié)合域,是FBXW7與底物直接相互作用的關(guān)鍵位點(diǎn)。研究表明,F(xiàn)BXW7通過其WD40重復(fù)序列與靶蛋白上的CDC4磷酸-降解決定子(CDPs)的磷酸化氨基酸相互作用,從而介導(dǎo)FBXW7與靶蛋白的特異性結(jié)合。FBXW7的另外一個(gè)重要結(jié)構(gòu)域是D結(jié)構(gòu)域,D結(jié)構(gòu)域可促進(jìn)FBXW7二聚化。盡管D結(jié)構(gòu)域?qū)Φ孜镒R(shí)別本身并不起直接作用,但泛素識(shí)別結(jié)合底物的過程卻高度依賴于FBXW7的二聚化。在細(xì)胞內(nèi),F(xiàn)BXW7存在單體和二聚體兩種作用方式,不同的底物需要不同形式的FBXW7來進(jìn)行降解。某些底物如cyclinE和c-myc可以被FBXW7單體高效降解,而對(duì)于另一些底物,由于其CDP與FBXW7的親和力較弱,則需要FBXW7二聚體才能實(shí)現(xiàn)有效降解。FBXW7基因在人體各大組織細(xì)胞中均有表達(dá),通過泛素蛋白酶體降解途徑,特異性地識(shí)別并降解多種重要的癌蛋白和轉(zhuǎn)錄活性因子,從而參與細(xì)胞周期調(diào)控、基因轉(zhuǎn)錄、細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、損傷DNA修復(fù)、細(xì)胞凋亡等多個(gè)關(guān)鍵生物學(xué)過程。在細(xì)胞周期調(diào)控方面,F(xiàn)BXW7能夠降解細(xì)胞周期蛋白cyclinE,從而對(duì)細(xì)胞周期的進(jìn)程進(jìn)行精確調(diào)控。當(dāng)細(xì)胞進(jìn)入S期時(shí),cyclinE的表達(dá)水平會(huì)升高,它與CDK2結(jié)合形成復(fù)合物,促進(jìn)細(xì)胞周期的進(jìn)展。而FBXW7可以識(shí)別并結(jié)合cyclinE,通過泛素化修飾將其標(biāo)記,然后被蛋白酶體降解,從而防止cyclinE的過度積累,確保細(xì)胞周期的正常進(jìn)行。在基因轉(zhuǎn)錄過程中,F(xiàn)BXW7也發(fā)揮著重要作用。它可以降解一些轉(zhuǎn)錄因子,如c-myc和c-jun,這些轉(zhuǎn)錄因子在細(xì)胞增殖、分化和凋亡等過程中起著關(guān)鍵的調(diào)控作用。當(dāng)c-myc和c-jun等轉(zhuǎn)錄因子被FBXW7降解后,相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄過程也會(huì)受到影響,進(jìn)而調(diào)節(jié)細(xì)胞的生物學(xué)行為。在細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路中,F(xiàn)BXW7參與Notch信號(hào)通路的調(diào)控。Notch信號(hào)通路在細(xì)胞的命運(yùn)決定、增殖和分化等過程中至關(guān)重要,F(xiàn)BXW7通過降解Notch信號(hào)通路中的關(guān)鍵蛋白,維持信號(hào)通路的平衡,確保細(xì)胞正常的生理功能。FBXW7基因的突變或缺失與多種腫瘤的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān),被廣泛認(rèn)為是一種重要的腫瘤抑制基因。據(jù)統(tǒng)計(jì),F(xiàn)BXW7在6%-8%的腫瘤中存在突變,這些突變會(huì)導(dǎo)致相應(yīng)的底物蛋白表達(dá)增加,從而打破細(xì)胞內(nèi)正常的生理平衡,促進(jìn)腫瘤的發(fā)生。在卵巢癌、乳腺癌和結(jié)直腸癌等多種惡性腫瘤中,均發(fā)現(xiàn)了FBXW7基因的突變和缺失,這些突變使得與癌細(xì)胞增殖相關(guān)的基因如cyclinE、c-myc、c-jun及Notch等無法被正常降解,進(jìn)而在細(xì)胞內(nèi)大量積累,推動(dòng)癌細(xì)胞的異常增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移,增加患者不良預(yù)后的風(fēng)險(xiǎn)。2.2FBXW7α亞型的特點(diǎn)FBXW7α作為FBXW7基因的重要蛋白亞型之一,具有獨(dú)特的結(jié)構(gòu)特點(diǎn)和生物學(xué)功能。從結(jié)構(gòu)上看,F(xiàn)BXW7α包含了多個(gè)保守的結(jié)構(gòu)域,這些結(jié)構(gòu)域?qū)τ谄浒l(fā)揮正常的生物學(xué)功能至關(guān)重要。它含有F-box基序,該基序是F-box蛋白家族的標(biāo)志性結(jié)構(gòu),長度約為40-60個(gè)氨基酸殘基,具有高度保守的序列特征。F-box基序在FBXW7α中起著關(guān)鍵作用,它能夠與Skp1蛋白特異性結(jié)合,從而募集SCF泛素化連接酶復(fù)合體的其他組分,使FBXW7α能夠參與到泛素化降解途徑中。除了F-box基序外,F(xiàn)BXW7α還含有WD40重復(fù)序列,這些重復(fù)序列構(gòu)成了底物結(jié)合域,由大約40-60個(gè)氨基酸組成,通常以β-折疊片的形式存在,形成一個(gè)具有特定空間結(jié)構(gòu)的區(qū)域。研究表明,F(xiàn)BXW7α的WD40重復(fù)序列能夠與靶蛋白上的CDC4磷酸-降解決定子(CDPs)的磷酸化氨基酸相互作用,這種相互作用具有高度的特異性和親和力,使得FBXW7α能夠準(zhǔn)確地識(shí)別并結(jié)合靶蛋白,為后續(xù)的泛素化降解過程奠定基礎(chǔ)。FBXW7α主要定位于細(xì)胞核內(nèi),這一獨(dú)特的亞細(xì)胞定位與其功能密切相關(guān)。細(xì)胞核是細(xì)胞遺傳物質(zhì)的儲(chǔ)存和復(fù)制中心,也是基因轉(zhuǎn)錄的主要場所。FBXW7α在細(xì)胞核內(nèi)能夠直接作用于一些關(guān)鍵的轉(zhuǎn)錄因子和癌蛋白,通過泛素化降解這些蛋白,調(diào)控基因的轉(zhuǎn)錄和表達(dá),進(jìn)而影響細(xì)胞的增殖、分化和凋亡等生物學(xué)過程。在細(xì)胞周期調(diào)控過程中,F(xiàn)BXW7α可以識(shí)別并降解細(xì)胞周期蛋白cyclinE,cyclinE在細(xì)胞周期的G1/S期轉(zhuǎn)換中起著關(guān)鍵作用,它與CDK2結(jié)合形成復(fù)合物,促進(jìn)細(xì)胞進(jìn)入S期進(jìn)行DNA復(fù)制。當(dāng)FBXW7α正常表達(dá)時(shí),它能夠及時(shí)降解cyclinE,防止其過度積累,從而維持細(xì)胞周期的正常進(jìn)程。如果FBXW7α表達(dá)異常或功能缺失,cyclinE就會(huì)在細(xì)胞內(nèi)大量積累,導(dǎo)致細(xì)胞周期紊亂,細(xì)胞可能會(huì)異常增殖,進(jìn)而增加腫瘤發(fā)生的風(fēng)險(xiǎn)。FBXW7α還參與調(diào)控Notch信號(hào)通路,Notch信號(hào)通路在細(xì)胞的命運(yùn)決定、增殖和分化等過程中發(fā)揮著重要作用。在正常情況下,F(xiàn)BXW7α能夠識(shí)別并降解Notch信號(hào)通路中的關(guān)鍵蛋白,如Notch受體及其下游的效應(yīng)分子,從而維持Notch信號(hào)通路的平衡和穩(wěn)定。當(dāng)FBXW7α發(fā)生突變或缺失時(shí),Notch信號(hào)通路可能會(huì)異常激活,導(dǎo)致細(xì)胞分化異常,促進(jìn)腫瘤的發(fā)生和發(fā)展。在一些神經(jīng)膠質(zhì)瘤中,F(xiàn)BXW7α的表達(dá)降低,使得Notch信號(hào)通路過度激活,腫瘤細(xì)胞呈現(xiàn)出更強(qiáng)的增殖和侵襲能力。與其他兩種亞型FBXW7β和FBXW7γ相比,F(xiàn)BXW7α在細(xì)胞定位和功能上存在明顯差異。FBXW7β主要定位于細(xì)胞質(zhì)中,在細(xì)胞內(nèi)的一些代謝過程和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑中發(fā)揮作用。FBXW7γ則主要分布在核仁中,參與核糖體的生物合成和RNA的加工等過程。這些不同的定位和功能分工,使得FBXW7的三種亞型在細(xì)胞內(nèi)形成了一個(gè)復(fù)雜而精細(xì)的調(diào)控網(wǎng)絡(luò),共同維持細(xì)胞的正常生理功能。在細(xì)胞增殖過程中,F(xiàn)BXW7α主要通過調(diào)控細(xì)胞核內(nèi)的關(guān)鍵蛋白來影響細(xì)胞周期的進(jìn)程,而FBXW7β可能在細(xì)胞質(zhì)中參與一些信號(hào)分子的代謝和傳遞,間接影響細(xì)胞的增殖活動(dòng)。FBXW7γ則在核仁中通過調(diào)節(jié)核糖體的合成,為細(xì)胞的增殖提供必要的蛋白質(zhì)合成機(jī)器。三、FBXW7α質(zhì)粒構(gòu)建3.1實(shí)驗(yàn)材料與方法3.1.1實(shí)驗(yàn)材料本研究使用的載體為pCDH-CMV-MCS-EF1-copGFP,購自SystemBiosciences公司。該載體具有CMV啟動(dòng)子,能高效驅(qū)動(dòng)目的基因在真核細(xì)胞中表達(dá);同時(shí)攜帶EF1啟動(dòng)子調(diào)控的copGFP報(bào)告基因,便于直觀地監(jiān)測轉(zhuǎn)染效率和篩選陽性克隆。載體中含有多個(gè)獨(dú)特的限制性酶切位點(diǎn),如EcoRI、BamHI、XhoI等,方便進(jìn)行目的基因的插入。實(shí)驗(yàn)中使用的工具酶包括限制性內(nèi)切酶EcoRI和XhoI,均購自NewEnglandBiolabs(NEB)公司。這兩種酶具有高度的特異性,能識(shí)別特定的DNA序列并進(jìn)行切割。EcoRI識(shí)別的序列為5'-GAATTC-3',XhoI識(shí)別的序列為5'-CTCGAG-3',在合適的反應(yīng)條件下,能精確地切割載體和目的基因,產(chǎn)生互補(bǔ)的粘性末端,便于后續(xù)的連接反應(yīng)。T4DNA連接酶同樣購自NEB公司,它能夠催化DNA片段的5'-磷酸基團(tuán)與3'-羥基之間形成磷酸二酯鍵,從而將具有互補(bǔ)粘性末端的載體和目的基因連接起來,構(gòu)建重組質(zhì)粒。實(shí)驗(yàn)選用的菌株為大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,購自天根生化科技(北京)有限公司。DH5α菌株是一種常用于基因克隆和質(zhì)粒擴(kuò)增的大腸桿菌菌株,其基因型為F-φ80lacZΔM15Δ(lacZYA-argF)U169recA1endA1hsdR17(rK-mK+)phoAsupE44λ-thi-1gyrA96relA1,具有多種有利于基因操作的特性。它缺乏核酸內(nèi)切酶I(endA1),能保證質(zhì)粒DNA的穩(wěn)定性和純度;同時(shí)recA1基因突變使其重組酶活性降低,減少了外源DNA的重組和突變,有利于重組質(zhì)粒的保存和擴(kuò)增。3.1.2引物設(shè)計(jì)與合成根據(jù)NCBI數(shù)據(jù)庫中FBXW7α基因的mRNA序列(登錄號(hào):NM_014419.4),使用PrimerPremier5.0軟件進(jìn)行引物設(shè)計(jì)。引物設(shè)計(jì)遵循以下原則:引物長度一般在18-30個(gè)堿基之間,本研究設(shè)計(jì)的引物長度為22個(gè)堿基,既能保證引物與模板的特異性結(jié)合,又不會(huì)因過長導(dǎo)致合成成本增加和擴(kuò)增效率降低;GC含量控制在40%-60%,本實(shí)驗(yàn)中上下游引物的GC含量分別為50%和54.5%,有助于維持引物與模板結(jié)合的穩(wěn)定性;引物的退火溫度(Tm值)在55-65℃之間,上下游引物的Tm值分別為58.5℃和59.9℃,兩者相差不超過5℃,以確保在同一退火溫度下都能與模板有效結(jié)合。為便于后續(xù)的酶切和連接反應(yīng),在引物的5'端分別引入EcoRI和XhoI的酶切位點(diǎn),同時(shí)在酶切位點(diǎn)后添加了3個(gè)保護(hù)堿基,以提高酶切效率。具體引物序列如下:上游引物5'-CCGGAATTCATGAGCCAGCAGCAGCAG-3',下游引物5'-CCGCTCGAGTCACAGTCCAGGTGCTG-3'。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,合成后經(jīng)PAGE純化,以確保引物的純度和質(zhì)量。在后續(xù)的PCR實(shí)驗(yàn)中,這對(duì)引物將特異性地結(jié)合到FBXW7α基因的兩端,引導(dǎo)DNA聚合酶對(duì)目的基因進(jìn)行擴(kuò)增,為構(gòu)建FBXW7α質(zhì)粒提供所需的目的基因片段。3.1.3目的基因獲取以人肝癌細(xì)胞系HepG2的cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增獲取FBXW7α目的基因。PCR反應(yīng)體系總體積為50μl,包括:10×PCR緩沖液5μl,dNTPs(2.5mMeach)4μl,上下游引物(10μMeach)各1μl,cDNA模板1μl,TaqDNA聚合酶(5U/μl)0.5μl,ddH?O37.5μl。PCR反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性5min;95℃變性30s,58℃退火30s,72℃延伸1min,共進(jìn)行35個(gè)循環(huán);最后72℃延伸10min。預(yù)變性步驟可使模板DNA的雙鏈充分解離,為后續(xù)引物的結(jié)合提供單鏈模板。變性階段使DNA雙鏈解旋,退火階段引物與模板特異性結(jié)合,延伸階段在TaqDNA聚合酶的作用下,以dNTPs為原料,沿著模板鏈合成新的DNA鏈。PCR反應(yīng)結(jié)束后,取5μlPCR產(chǎn)物進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。在電泳過程中,DNA分子在電場的作用下向正極移動(dòng),根據(jù)分子大小不同在凝膠中形成不同的條帶。通過與DNAMarker對(duì)比,可以判斷PCR產(chǎn)物的大小是否與預(yù)期的FBXW7α基因片段大小相符。若條帶位置正確且清晰明亮,說明PCR擴(kuò)增成功,獲得了目的基因片段。影響目的基因獲取質(zhì)量的因素眾多,模板的質(zhì)量和濃度至關(guān)重要。若模板cDNA存在降解或雜質(zhì)污染,可能導(dǎo)致擴(kuò)增失敗或出現(xiàn)非特異性條帶。模板濃度過高可能引發(fā)非特異性擴(kuò)增,過低則會(huì)使擴(kuò)增產(chǎn)物量不足。引物的特異性和質(zhì)量也會(huì)影響擴(kuò)增結(jié)果,若引物與模板結(jié)合不特異,會(huì)產(chǎn)生非特異性擴(kuò)增產(chǎn)物。此外,PCR反應(yīng)條件如退火溫度、延伸時(shí)間等也需嚴(yán)格優(yōu)化,退火溫度過高或過低都會(huì)影響引物與模板的結(jié)合效率,延伸時(shí)間過短可能導(dǎo)致擴(kuò)增不完全,過長則可能增加非特異性擴(kuò)增的風(fēng)險(xiǎn)。3.1.4酶切與連接反應(yīng)將PCR擴(kuò)增得到的FBXW7α目的基因片段和pCDH-CMV-MCS-EF1-copGFP載體分別進(jìn)行雙酶切。酶切反應(yīng)體系總體積為20μl,包括:10×Buffer2μl,質(zhì)粒DNA或PCR產(chǎn)物500ng,EcoRI和XhoI各1μl(10U/μl),ddH?O補(bǔ)足至20μl。37℃水浴酶切3h,使限制性內(nèi)切酶充分作用,在特定的DNA序列處切割,產(chǎn)生互補(bǔ)的粘性末端。酶切結(jié)束后,進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳,使用凝膠回收試劑盒(購自Qiagen公司)回收酶切后的目的基因片段和載體片段?;厥者^程利用硅膠膜特異性吸附DNA的原理,通過洗滌去除雜質(zhì),最后用洗脫緩沖液將純化的DNA洗脫下來,以獲得高純度的酶切產(chǎn)物,用于后續(xù)的連接反應(yīng)。連接反應(yīng)使用T4DNA連接酶,反應(yīng)體系總體積為10μl,包括:10×T4DNA連接酶緩沖液1μl,酶切后的載體片段100ng,酶切后的目的基因片段300ng,T4DNA連接酶1μl(5U/μl),ddH?O補(bǔ)足至10μl。16℃連接過夜,T4DNA連接酶能夠催化載體和目的基因片段的粘性末端形成磷酸二酯鍵,從而將兩者連接起來,構(gòu)建成重組質(zhì)粒。為確保連接的準(zhǔn)確性,在連接反應(yīng)中嚴(yán)格控制載體和目的基因的比例,避免載體自身環(huán)化或多個(gè)目的基因串聯(lián)插入的情況發(fā)生。同時(shí),在酶切和連接過程中,保持反應(yīng)體系的無菌和低溫操作,防止核酸酶的污染和酶活性的降低,以提高連接反應(yīng)的成功率。3.1.5轉(zhuǎn)化與篩選陽性克隆將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞中。取5μl連接產(chǎn)物加入到50μlDH5α感受態(tài)細(xì)胞中,輕輕混勻,冰浴30min,使連接產(chǎn)物充分吸附在感受態(tài)細(xì)胞表面。然后42℃熱激90s,迅速將細(xì)胞置于冰上冷卻2min,熱激過程可使細(xì)胞膜的通透性發(fā)生改變,促使連接產(chǎn)物進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)。隨后加入400μl不含抗生素的LB培養(yǎng)基,37℃振蕩培養(yǎng)45min,使細(xì)胞復(fù)蘇并表達(dá)抗生素抗性基因。將轉(zhuǎn)化后的菌液均勻涂布在含有氨芐青霉素(100μg/ml)的LB固體培養(yǎng)基平板上,37℃倒置培養(yǎng)過夜。由于pCDH-CMV-MCS-EF1-copGFP載體攜帶氨芐青霉素抗性基因,只有成功轉(zhuǎn)入重組質(zhì)粒的細(xì)菌才能在含有氨芐青霉素的平板上生長形成菌落,從而實(shí)現(xiàn)初步篩選。從平板上隨機(jī)挑取單菌落,接種到含有氨芐青霉素的LB液體培養(yǎng)基中,37℃振蕩培養(yǎng)過夜。使用質(zhì)粒小提試劑盒(購自天根生化科技(北京)有限公司)提取質(zhì)粒,對(duì)提取的質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切鑒定。酶切體系和條件與構(gòu)建重組質(zhì)粒時(shí)相同,酶切產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳分析,若出現(xiàn)與預(yù)期大小相符的載體片段和目的基因片段條帶,初步判斷為陽性克隆。進(jìn)一步將陽性克隆送測序公司(生工生物工程(上海)股份有限公司)進(jìn)行測序驗(yàn)證,將測序結(jié)果與FBXW7α基因的原始序列進(jìn)行比對(duì),若完全一致,則確定為含有正確重組質(zhì)粒的陽性克隆,可用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。3.2實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析3.2.1酶切鑒定結(jié)果對(duì)從大腸桿菌DH5α中提取的重組質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切鑒定,使用的限制性內(nèi)切酶為EcoRI和XhoI。酶切產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳分析,結(jié)果如圖1所示。M為DNAMarker,1、2、3為酶切后的重組質(zhì)粒樣品。從圖中可以清晰地看到,三條泳道均出現(xiàn)了兩條特異性條帶,其中一條條帶大小約為7000bp,與pCDH-CMV-MCS-EF1-copGFP載體的大小相符;另一條條帶大小約為1500bp,與預(yù)期的FBXW7α基因片段大小一致。這表明成功構(gòu)建的重組質(zhì)粒中,F(xiàn)BXW7α基因已正確插入到pCDH-CMV-MCS-EF1-copGFP載體中,酶切鑒定結(jié)果初步證實(shí)了重組質(zhì)粒構(gòu)建的正確性?!敬颂幉迦雸D1:重組質(zhì)粒雙酶切鑒定電泳圖】3.2.2測序結(jié)果分析將酶切鑒定為陽性的重組質(zhì)粒送測序公司進(jìn)行測序。測序結(jié)果與NCBI數(shù)據(jù)庫中FBXW7α基因的mRNA序列(登錄號(hào):NM_014419.4)進(jìn)行比對(duì),結(jié)果顯示,所測序列與目標(biāo)序列完全一致,堿基匹配率達(dá)到100%,無堿基突變、缺失或插入等情況。這進(jìn)一步確鑿地證明了構(gòu)建的重組質(zhì)粒中FBXW7α基因序列的準(zhǔn)確性,成功獲得了含有正確FBXW7α基因的重組質(zhì)粒,為后續(xù)在膽管癌細(xì)胞中的真核表達(dá)及功能研究奠定了堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)。通過測序驗(yàn)證,排除了在構(gòu)建過程中可能出現(xiàn)的基因錯(cuò)誤拼接或突變等問題,確保了實(shí)驗(yàn)結(jié)果的可靠性和研究的科學(xué)性。四、FBXW7α的真核表達(dá)4.1真核表達(dá)系統(tǒng)的選擇真核表達(dá)系統(tǒng)在現(xiàn)代生物學(xué)研究中占據(jù)著至關(guān)重要的地位,其種類繁多,各有特點(diǎn)。常見的真核表達(dá)系統(tǒng)主要包括酵母表達(dá)系統(tǒng)、桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)、哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)、轉(zhuǎn)基因植物表達(dá)系統(tǒng)以及杜氏鹽藻生物反應(yīng)器等。不同的表達(dá)系統(tǒng)在表達(dá)效率、蛋白修飾、生產(chǎn)成本等方面存在顯著差異,因此在進(jìn)行FBXW7α的真核表達(dá)時(shí),需要根據(jù)具體的研究目的和需求,謹(jǐn)慎選擇合適的表達(dá)系統(tǒng)。酵母表達(dá)系統(tǒng)是目前應(yīng)用最為廣泛的真核表達(dá)系統(tǒng)之一,其中甲醇酵母基因表達(dá)系統(tǒng)發(fā)展尤為迅速。甲醇酵母主要有H.polymorpha、CandidaBodinii、PichiaPastoris三種,而PichiaPastoris的應(yīng)用最為普遍。酵母表達(dá)系統(tǒng)具有諸多優(yōu)勢,它長期應(yīng)用于釀酒和食品工業(yè),安全性高,不會(huì)產(chǎn)生毒素。作為真核生物,酵母能夠?qū)Ρ磉_(dá)產(chǎn)物進(jìn)行一定程度的加工修飾,這對(duì)于保持生物產(chǎn)品的活性和穩(wěn)定性具有重要意義。在酵母中,外源基因能夠分泌表達(dá),表達(dá)產(chǎn)物分泌至胞外不僅有利于后續(xù)的純化工作,還能避免產(chǎn)物在胞內(nèi)大量蓄積對(duì)細(xì)胞造成不利影響。此外,酵母的遺傳背景清晰,便于進(jìn)行遺傳操作,并且擁有較為完善的表達(dá)控制系統(tǒng),如PMA1和PDR5等強(qiáng)啟動(dòng)子可以介導(dǎo)目的蛋白高水平表達(dá),表達(dá)蛋白的豐度可達(dá)到膜蛋白的10%。同時(shí),采用誘導(dǎo)表達(dá)啟動(dòng)子,如GAL1-10(半乳糖誘導(dǎo))、PH05(胞外無機(jī)磷誘導(dǎo))和HSE(37℃溫度誘導(dǎo)),可以在時(shí)間上嚴(yán)格控制目的蛋白的表達(dá)。酵母生長繁殖迅速,培養(yǎng)周期短,工藝簡單,生產(chǎn)成本低,既具備原核表達(dá)系統(tǒng)生長迅速、操作簡單、價(jià)格便宜的優(yōu)點(diǎn),又具有類似哺乳動(dòng)物細(xì)胞的翻譯后修飾過程,特別適用于大量生產(chǎn)真核重組蛋白。然而,甲醇酵母表達(dá)系統(tǒng)也存在一些局限性,利用PAXOI表達(dá)外源蛋白時(shí),通常需要較長時(shí)間才能達(dá)到峰值水平,且甲醇具有高毒性和高危險(xiǎn)性,在實(shí)驗(yàn)操作過程中存在一定風(fēng)險(xiǎn),也不適用于食品等蛋白的生產(chǎn)。桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)是國內(nèi)外備受推崇的真核表達(dá)系統(tǒng),該系統(tǒng)通常采用苜蓿銀紋夜蛾桿狀病毒(AcNPV)作為表達(dá)載體。在AcNPV感染昆蟲細(xì)胞的后期,核多角體基因可編碼產(chǎn)生多角體蛋白,該蛋白包裹病毒顆粒形成包涵體。核多角體基因啟動(dòng)子具有極強(qiáng)的啟動(dòng)蛋白表達(dá)能力,常被用于構(gòu)建桿狀病毒傳遞質(zhì)粒??寺∪胪庠椿虻膫鬟f質(zhì)粒與野生型AcNPV共轉(zhuǎn)染昆蟲細(xì)胞后可發(fā)生同源重組,重組后多角體基因被破壞,感染細(xì)胞中不能形成包涵體,借此可挑選出含重組桿狀病毒的昆蟲細(xì)胞。此系統(tǒng)具有真核表達(dá)系統(tǒng)的翻譯后加工功能,如二硫鍵的形成、糖基化及磷酸化等,能使重組蛋白在結(jié)構(gòu)和功能上更接近天然蛋白,最高表達(dá)量可達(dá)昆蟲細(xì)胞蛋白總量的50%,還可表達(dá)非常大的外源性基因(~200kD),并且具有在同一個(gè)感染昆蟲細(xì)胞內(nèi)同時(shí)表達(dá)多個(gè)外源基因的能力,對(duì)脊椎動(dòng)物安全。不過,該系統(tǒng)也存在一些缺點(diǎn),載體構(gòu)建時(shí)間長,一般需要4-6周,且重組效率較低。昆蟲細(xì)胞不能表達(dá)帶有完整N聯(lián)聚糖的真核糖蛋白,在病毒感染晚期,大量外源蛋白的表達(dá)會(huì)導(dǎo)致昆蟲細(xì)胞裂解,胞質(zhì)內(nèi)物質(zhì)釋放與目的蛋白混合,增加了蛋白純化的難度,水解酶的釋放還可能降解重組蛋白。哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)與其他真核表達(dá)體系相比,其表達(dá)的蛋白與天然蛋白的結(jié)構(gòu)、糖基化類型和方式幾乎相同,且能正確組裝成多亞基蛋白,這使得表達(dá)產(chǎn)物在生物學(xué)活性和功能上與天然蛋白高度相似,對(duì)于研究FBXW7α的生物學(xué)功能和作用機(jī)制具有重要意義。在研究FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移的影響時(shí),需要其表達(dá)產(chǎn)物具有天然的結(jié)構(gòu)和功能,哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)能夠更好地滿足這一要求。然而,哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)的成本較高,培養(yǎng)條件較為苛刻,需要嚴(yán)格控制溫度、濕度、CO?濃度等環(huán)境因素,且細(xì)胞生長速度相對(duì)較慢,大規(guī)模培養(yǎng)存在一定困難。此外,將外源基因?qū)氩溉閯?dòng)物細(xì)胞內(nèi)的方法相對(duì)復(fù)雜,主要有化學(xué)法、電穿孔法、基因槍法和哺乳動(dòng)物病毒載體系統(tǒng)等,每種方法都有其優(yōu)缺點(diǎn)和適用范圍,需要根據(jù)具體情況進(jìn)行選擇和優(yōu)化。轉(zhuǎn)基因植物表達(dá)系統(tǒng)是將外源性或內(nèi)源性基因?qū)胫参矬w內(nèi),使植物遺傳性狀改變而產(chǎn)生的植物體。轉(zhuǎn)基因植物作為生物反應(yīng)器已在藥物蛋白的生產(chǎn)中得到廣泛應(yīng)用,成功表達(dá)了人的細(xì)胞因子、表皮生長因子、促紅細(xì)胞生成素、干擾素、生長激素、單克隆抗體等藥用蛋白質(zhì)和多肽。煙草、馬鈴薯、大豆、香蕉、萵苣、羽扇豆等作為生物反應(yīng)器生產(chǎn)口服疫苗,也受到了廣泛關(guān)注。該系統(tǒng)具有成本低、易于大規(guī)模生產(chǎn)等優(yōu)點(diǎn),在重組藥物的多種表達(dá)體系中,轉(zhuǎn)基因植物是最經(jīng)濟(jì)的,同一種重組蛋白在植物中的生產(chǎn)成本是微生物發(fā)酵體系的2%-10%,是哺乳動(dòng)物細(xì)胞生產(chǎn)的0.1%。但轉(zhuǎn)基因植物表達(dá)系統(tǒng)也面臨一些問題,如表達(dá)水平較低,蛋白的翻譯后修飾可能與哺乳動(dòng)物細(xì)胞存在差異,且可能受到植物自身代謝途徑的影響,導(dǎo)致表達(dá)產(chǎn)物的質(zhì)量和穩(wěn)定性存在一定波動(dòng)。杜氏鹽藻生物反應(yīng)器是一種新型的真核生物反應(yīng)器,杜氏鹽藻是一種單細(xì)胞真核藻類,沒有細(xì)胞壁,原生質(zhì)外僅有一層糖蛋白和神經(jīng)氨酸組成的外膜,具有一個(gè)杯狀、大型的葉綠體,體積約占細(xì)胞的一半。鹽藻極其耐鹽,能在0.05-5mol/l氯化鈉的極端環(huán)境中生存,屬于光合自養(yǎng)生物,能利用簡單的培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng),富含β胡蘿卜素、甘油、蛋白質(zhì)等。該系統(tǒng)除了具有轉(zhuǎn)錄和翻譯后的加工能力外,還具有經(jīng)濟(jì)廉價(jià)、簡單有效、安全可靠等特點(diǎn),能在高鹽條件下培養(yǎng),不會(huì)污染其他微生物。不過,目前對(duì)杜氏鹽藻生物反應(yīng)器的研究和應(yīng)用相對(duì)較少,技術(shù)還不夠成熟,在表達(dá)效率和產(chǎn)物純化等方面可能還存在一些需要解決的問題。綜合考慮本研究的目的是探究FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移的影響,需要表達(dá)具有天然結(jié)構(gòu)和功能的FBXW7α蛋白,以確保實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性和可靠性。哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)能夠滿足這一要求,雖然其成本較高,但在研究FBXW7α的生物學(xué)功能方面具有不可替代的優(yōu)勢。因此,本研究選擇哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)進(jìn)行FBXW7α的真核表達(dá)。4.2轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)4.2.1細(xì)胞培養(yǎng)與準(zhǔn)備本研究選用人膽管癌細(xì)胞株QBC939和RBE,這兩種細(xì)胞株在膽管癌研究中應(yīng)用廣泛,具有典型的膽管癌細(xì)胞生物學(xué)特性。QBC939細(xì)胞株具有較強(qiáng)的增殖和遷移能力,在體外培養(yǎng)條件下,能夠快速生長并形成緊密的細(xì)胞單層;RBE細(xì)胞株則對(duì)化療藥物具有一定的耐受性,其生物學(xué)行為較為復(fù)雜,常被用于研究膽管癌的耐藥機(jī)制和腫瘤轉(zhuǎn)移相關(guān)的生物學(xué)過程。將細(xì)胞置于含10%胎牛血清(FBS)的RPMI-1640培養(yǎng)基中培養(yǎng),該培養(yǎng)基為細(xì)胞提供了生長所需的各種營養(yǎng)成分,包括氨基酸、維生素、糖類等,而胎牛血清則含有豐富的生長因子、激素和其他營養(yǎng)物質(zhì),能夠促進(jìn)細(xì)胞的生長和增殖。在37℃、5%CO?的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),37℃是人體細(xì)胞的最適生長溫度,5%CO?能夠維持培養(yǎng)基的pH值穩(wěn)定,為細(xì)胞生長提供適宜的環(huán)境。細(xì)胞狀態(tài)對(duì)轉(zhuǎn)染效率有著至關(guān)重要的影響。處于對(duì)數(shù)生長期的細(xì)胞,代謝活躍,細(xì)胞膜的流動(dòng)性和通透性較好,更易于攝取外源DNA。在對(duì)數(shù)生長期,細(xì)胞內(nèi)的各種細(xì)胞器和生物分子都處于活躍的合成和代謝狀態(tài),細(xì)胞表面的受體和轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白數(shù)量較多,能夠更有效地與轉(zhuǎn)染試劑和外源DNA相互作用。此時(shí),細(xì)胞的增殖能力旺盛,對(duì)外源基因的整合和表達(dá)也更為有利。若細(xì)胞處于生長停滯期或衰老期,其代謝活性降低,細(xì)胞膜的功能也會(huì)受到影響,導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率顯著下降。在生長停滯期,細(xì)胞內(nèi)的一些信號(hào)通路會(huì)被抑制,細(xì)胞對(duì)外部刺激的響應(yīng)能力減弱,難以攝取外源DNA。衰老的細(xì)胞,其細(xì)胞膜的結(jié)構(gòu)和功能發(fā)生改變,變得僵硬且通透性降低,使得轉(zhuǎn)染試劑和外源DNA難以進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)。因此,在進(jìn)行轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)前,需要通過顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài),確保細(xì)胞呈飽滿、透亮的狀態(tài),且細(xì)胞密度達(dá)到70%-80%,處于對(duì)數(shù)生長期,以保證轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)的順利進(jìn)行。通過臺(tái)盼藍(lán)染色法檢測細(xì)胞活力,確保細(xì)胞活力在90%以上,只有活力高的細(xì)胞才能更好地接受外源基因并進(jìn)行表達(dá),從而提高轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)的成功率。4.2.2轉(zhuǎn)染操作采用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine3000(購自Invitrogen公司)將FBXW7α質(zhì)粒轉(zhuǎn)染到膽管癌細(xì)胞中。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑具有操作簡便、轉(zhuǎn)染效率高、細(xì)胞毒性低等優(yōu)點(diǎn),其原理是利用脂質(zhì)體與細(xì)胞膜的相似性,將質(zhì)粒DNA包裹在脂質(zhì)體內(nèi)部,通過脂質(zhì)體與細(xì)胞膜的融合,將質(zhì)粒DNA導(dǎo)入細(xì)胞內(nèi)。在轉(zhuǎn)染前6h,將處于對(duì)數(shù)生長期的膽管癌細(xì)胞以適當(dāng)密度接種于6孔板中,每孔接種細(xì)胞數(shù)量為1×10?個(gè),使細(xì)胞在轉(zhuǎn)染時(shí)達(dá)到約70%的融合度。合適的細(xì)胞密度和融合度能夠保證細(xì)胞在轉(zhuǎn)染過程中處于良好的生長狀態(tài),有利于提高轉(zhuǎn)染效率。若細(xì)胞密度過低,細(xì)胞之間的相互作用減少,會(huì)影響轉(zhuǎn)染試劑與細(xì)胞的接觸和結(jié)合;若細(xì)胞密度過高,細(xì)胞會(huì)因營養(yǎng)物質(zhì)競爭和代謝產(chǎn)物積累而生長受到抑制,也不利于轉(zhuǎn)染。按照Lipofectamine3000試劑說明書進(jìn)行操作。首先,在無菌離心管中,將1μgFBXW7α質(zhì)粒與250μlOpti-MEM培養(yǎng)基輕輕混勻,Opti-MEM培養(yǎng)基是一種低血清培養(yǎng)基,能夠減少血清對(duì)轉(zhuǎn)染過程的干擾,保證轉(zhuǎn)染試劑與質(zhì)粒DNA的有效結(jié)合。同時(shí),在另一離心管中,將3μlLipofectamine3000試劑與250μlOpti-MEM培養(yǎng)基混合均勻,室溫孵育5min,使轉(zhuǎn)染試劑充分活化。然后,將兩者輕柔混合,室溫孵育20min,形成穩(wěn)定的DNA-脂質(zhì)體復(fù)合物。在孵育過程中,DNA與脂質(zhì)體之間會(huì)通過靜電相互作用和疏水作用形成穩(wěn)定的復(fù)合物,這種復(fù)合物能夠有效地保護(hù)DNA不被核酸酶降解,并促進(jìn)其進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)。將形成的復(fù)合物逐滴加入到6孔板中,輕輕搖勻,使復(fù)合物均勻分布在細(xì)胞表面。將6孔板放回37℃、5%CO?培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。轉(zhuǎn)染后4-6h更換為含10%FBS的RPMI-1640完全培養(yǎng)基,為細(xì)胞提供充足的營養(yǎng),促進(jìn)細(xì)胞的生長和恢復(fù)。在轉(zhuǎn)染過程中,嚴(yán)格控制質(zhì)粒DNA和轉(zhuǎn)染試劑的用量比例,以及轉(zhuǎn)染時(shí)間和溫度等條件,避免因操作不當(dāng)導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率降低或細(xì)胞毒性增加。4.3表達(dá)檢測4.3.1Westernblot檢測Westernblot檢測是一種廣泛應(yīng)用于蛋白質(zhì)分析的技術(shù),其原理基于“抗原-抗體”特異性結(jié)合。在本研究中,利用該技術(shù)檢測FBXW7α蛋白在膽管癌細(xì)胞中的表達(dá)水平。首先,進(jìn)行蛋白樣品的準(zhǔn)備。在轉(zhuǎn)染后的48h,收集膽管癌細(xì)胞。由于此時(shí)轉(zhuǎn)染的FBXW7α質(zhì)粒在細(xì)胞內(nèi)經(jīng)過轉(zhuǎn)錄和翻譯過程,蛋白表達(dá)量通??蛇_(dá)到較高水平,便于后續(xù)檢測。棄去培養(yǎng)基,用預(yù)冷的PBS緩沖液漂洗細(xì)胞三次,以去除細(xì)胞表面殘留的培養(yǎng)基和雜質(zhì),保證后續(xù)裂解細(xì)胞時(shí)蛋白樣品的純度。吸凈PBS后,按照0.1ml/10?cells的比例加入適量的RIPA裂解液,其中含有1%的蛋白酶抑制劑,能夠有效抑制各種蛋白酶的水解作用,防止蛋白降解,確保蛋白產(chǎn)量和完整性。用細(xì)胞刮刮下細(xì)胞后轉(zhuǎn)入到離心管中,將離心管放在冰上30min,使細(xì)胞充分裂解,釋放出細(xì)胞內(nèi)的蛋白質(zhì)。然后,在4℃條件下,10000rpm離心5min,將上清轉(zhuǎn)移至一個(gè)新的離心管中,此時(shí)蛋白存在于上清液中,若暫時(shí)不進(jìn)行后續(xù)檢測,可將上清液于-80℃保存。接下來,對(duì)提取的蛋白樣品進(jìn)行定量。采用BCA法測定蛋白濃度,該方法的原理是利用雙縮脲反應(yīng),在堿性條件下,蛋白質(zhì)中的肽鍵與銅離子(Cu2?)反應(yīng),生成可溶性的絡(luò)合物,絡(luò)合物的形成量與蛋白質(zhì)濃度成正比,通過測定絡(luò)合物在特定波長下的吸光度,即可推算出蛋白質(zhì)濃度。具體操作如下:根據(jù)樣品數(shù)量的多少,將BCA試劑的A和B液按A:B=50:1的比例配制適量的BCA工作液。把蛋白標(biāo)準(zhǔn)品粉末加入1.5ml離心管,加入超純水充分溶解后配制成20mg/ml的蛋白標(biāo)準(zhǔn)溶液,將其于-20℃保存,實(shí)驗(yàn)時(shí)取適量的蛋白標(biāo)準(zhǔn)品稀釋成0.5mg/ml。將蛋白標(biāo)準(zhǔn)品按0、1、2、4、8、12、16、20μl以及適量體積的蛋白樣品加到96孔板中,用標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液補(bǔ)足各孔體積至20μl,此時(shí)標(biāo)準(zhǔn)品濃度分別為0、0.025、0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5mg/ml。最后向各孔加入200μlBCA工作液,在37℃恒溫箱放置20-30分鐘,在A???nm處用酶標(biāo)儀測定吸光度(OD值)。在excel中處理所得數(shù)據(jù),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線公式及待測蛋白樣品的OD值計(jì)算待測樣品的蛋白濃度。完成蛋白定量后,進(jìn)行SDS-PAGE電泳。根據(jù)目的蛋白FBXW7α的分子量大小,選擇合適濃度的分離膠和濃縮膠。FBXW7α的分子量約為70kDa,通常選擇10%的分離膠和5%的濃縮膠,這樣的凝膠濃度能夠有效分離目的蛋白。安裝電泳裝置,將玻璃板固定于灌膠支架上,先配制分離膠,緩慢倒入玻璃板的夾層中,倒入高度約占玻璃板高度的2/3即可,在分離膠液面上緩緩加入一層水飽和異丁醇(厚約1cm),以隔絕空氣,促進(jìn)凝膠聚合。讓凝膠在室溫聚合30min,聚合后,可見在頂層異丁醇與凝膠的界面間有一清晰的折光線,此時(shí)表明分離膠聚合完成。傾去頂層的異丁醇,并以1×Tris-HClpH8.8緩沖液沖洗凝膠的頂部表面,盡量用吸水紙吸干。接著配制濃縮膠,將濃縮膠倒入玻璃夾層中直至頂部,選擇合適的梳子插入濃縮膠中,室溫放置30min,使其聚合。蛋白樣品與SDS-PAGE上樣緩沖液按1:1或1:2的比例混合均勻,100°C加熱5min,使蛋白充分變性,破壞其空間結(jié)構(gòu),使蛋白分子帶上負(fù)電荷,以便在電場中向正極移動(dòng)。小心拔去梳子,以1×SDS電泳緩沖液沖洗加樣孔,并以此緩沖液充滿之。將玻璃板固定于電泳裝置中,并在裝置的上槽和下槽中加滿1×SDS電泳緩沖液。用50μl注射器將蛋白質(zhì)樣品等體積加入到樣品孔中,小心加樣使樣品在孔的底部成一薄層,對(duì)照孔加入蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn)樣品,如有空置的加樣孔,須加等體積的空白1×SDS加樣緩沖液,以防相鄰泳道樣品的擴(kuò)散。連接電源,設(shè)置合適的電壓和電流,一般先在80V的電壓下電泳,使樣品在濃縮膠中濃縮成一條窄帶,當(dāng)溴酚藍(lán)染料進(jìn)入分離膠后,將電壓提高到120V,待溴酚藍(lán)染料電泳到達(dá)凝膠底部為止,關(guān)閉電源并撤去連接的導(dǎo)線,棄去電泳緩沖液。取出玻璃板,將其用吸水紙吸干,并做好標(biāo)記,以便識(shí)別加樣順序。小心撬起上面的玻璃板,使凝膠暴露出來,小心從下面的玻璃平板上移出凝膠,在凝膠的一角切去一小塊以便在染色及干膠后仍能認(rèn)出加樣次序。隨后進(jìn)行轉(zhuǎn)膜操作,將電泳分離后的蛋白質(zhì)從凝膠轉(zhuǎn)移到固相載體上。準(zhǔn)備與膠大小相同的硝酸纖維素膜(NC膜)和六張濾紙,在電轉(zhuǎn)儀上,依次放置已經(jīng)在轉(zhuǎn)移平衡液中平衡過的(順序由下至上)3層濾紙、NC膜、電泳凝膠、3層濾紙,注意將凝膠面與負(fù)極相連,NC膜與正極相連,室溫、220V轉(zhuǎn)移1h,使蛋白質(zhì)從凝膠轉(zhuǎn)移到NC膜上。轉(zhuǎn)膜結(jié)束后,將硝酸纖維素膜放入1×TBST中清洗3次,每次5分鐘,在搖床上輕輕搖動(dòng),以去除膜上殘留的雜質(zhì)。接著進(jìn)行封閉,將轉(zhuǎn)膜完畢的NC膜立即放到5%脫脂牛奶中封閉2h,封閉液中的脫脂牛奶含有豐富的蛋白質(zhì),可以封閉NC膜上的非特異性結(jié)合位點(diǎn),減少后續(xù)實(shí)驗(yàn)中的非特異性背景。一抗孵育時(shí),將一抗用TBST按1:200(根據(jù)實(shí)驗(yàn)實(shí)際情況進(jìn)行調(diào)整)稀釋,將硝酸纖維素膜放入其中,37℃孵育1.5小時(shí)或4℃過夜,在搖床上輕輕搖動(dòng),使一抗與目的蛋白FBXW7α充分結(jié)合。孵育結(jié)束后,將硝酸纖維素膜放入1×TBST中清洗3次,每次5分鐘,以去除未結(jié)合的一抗。二抗孵育時(shí),將二抗用TBST按1:1000(根據(jù)實(shí)驗(yàn)實(shí)際情況進(jìn)行調(diào)整)稀釋,將硝酸纖維素膜放入其中,37℃孵育1小時(shí),在搖床上輕輕搖動(dòng),使二抗與一抗充分結(jié)合。孵育結(jié)束后,用1×TBST清洗2次,每次5分鐘,以去除未結(jié)合的二抗。最后進(jìn)行顯色,采用ECL發(fā)光顯色法,在暗室中,將ECL發(fā)光液均勻滴加在NC膜上,反應(yīng)一段時(shí)間后,放入X光片曝光,顯影、定影后,即可得到蛋白條帶。結(jié)果顯示,在轉(zhuǎn)染了FBXW7α質(zhì)粒的膽管癌細(xì)胞中,能夠檢測到明顯的FBXW7α蛋白條帶,而在未轉(zhuǎn)染或轉(zhuǎn)染空質(zhì)粒的對(duì)照組細(xì)胞中,F(xiàn)BXW7α蛋白條帶較弱或幾乎不可見。通過ImageJ軟件對(duì)條帶進(jìn)行灰度分析,計(jì)算出FBXW7α蛋白在不同組細(xì)胞中的相對(duì)表達(dá)量。結(jié)果表明,轉(zhuǎn)染FBXW7α質(zhì)粒的細(xì)胞中FBXW7α蛋白的表達(dá)水平顯著高于對(duì)照組(P<0.05),這充分說明成功構(gòu)建的FBXW7α質(zhì)粒在膽管癌細(xì)胞中實(shí)現(xiàn)了高效表達(dá),為后續(xù)研究FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移能力的影響提供了有力的實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。4.3.2免疫熒光檢測免疫熒光檢測是一種利用熒光標(biāo)記的抗體來檢測細(xì)胞內(nèi)特定蛋白質(zhì)的技術(shù),該技術(shù)不僅可以檢測蛋白質(zhì)的表達(dá)水平,還能直觀地觀察蛋白質(zhì)在細(xì)胞內(nèi)的定位情況,對(duì)于深入研究蛋白質(zhì)的生物學(xué)功能具有重要意義。在本研究中,利用免疫熒光技術(shù)檢測FBXW7α蛋白在膽管癌細(xì)胞內(nèi)的定位和表達(dá)情況。首先,在轉(zhuǎn)染后的48h,將膽管癌細(xì)胞接種于預(yù)先放置有蓋玻片的24孔板中,每孔接種細(xì)胞數(shù)量為5×10?個(gè),使細(xì)胞在培養(yǎng)過程中能夠均勻地貼附在蓋玻片上。將24孔板置于37℃、5%CO?培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細(xì)胞貼壁后,用預(yù)冷的PBS緩沖液輕輕漂洗細(xì)胞3次,每次5分鐘,以去除細(xì)胞表面殘留的培養(yǎng)基和雜質(zhì)。然后,加入4%多聚甲醛固定細(xì)胞,室溫下固定15-20分鐘,多聚甲醛能夠使細(xì)胞內(nèi)的蛋白質(zhì)交聯(lián),保持細(xì)胞的形態(tài)和結(jié)構(gòu),便于后續(xù)抗體的結(jié)合。固定結(jié)束后,再次用PBS緩沖液漂洗細(xì)胞3次,每次5分鐘。接著進(jìn)行細(xì)胞通透處理,加入0.1%TritonX-100,室溫孵育10-15分鐘,TritonX-100是一種非離子型表面活性劑,能夠增加細(xì)胞膜的通透性,使抗體能夠進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)與目的蛋白結(jié)合。通透處理后,用PBS緩沖液漂洗細(xì)胞3次,每次5分鐘。為了減少非特異性結(jié)合,需要對(duì)細(xì)胞進(jìn)行封閉處理,加入5%牛血清白蛋白(BSA),室溫孵育1小時(shí),BSA能夠封閉細(xì)胞表面的非特異性結(jié)合位點(diǎn),降低背景信號(hào)。一抗孵育時(shí),將抗FBXW7α抗體用5%BSA按1:200(根據(jù)實(shí)驗(yàn)實(shí)際情況進(jìn)行調(diào)整)稀釋,將稀釋后的一抗滴加在蓋玻片上,確保細(xì)胞完全被覆蓋,4℃孵育過夜,使一抗能夠充分與細(xì)胞內(nèi)的FBXW7α蛋白結(jié)合。孵育結(jié)束后,用PBS緩沖液漂洗細(xì)胞3次,每次5分鐘,以去除未結(jié)合的一抗。二抗孵育時(shí),將熒光標(biāo)記的二抗(如AlexaFluor488標(biāo)記的山羊抗兔IgG抗體)用5%BSA按1:500(根據(jù)實(shí)驗(yàn)實(shí)際情況進(jìn)行調(diào)整)稀釋,將稀釋后的二抗滴加在蓋玻片上,室溫孵育1小時(shí),在暗室中進(jìn)行操作,以防止熒光淬滅。孵育結(jié)束后,用PBS緩沖液漂洗細(xì)胞3次,每次5分鐘,以去除未結(jié)合的二抗。最后,進(jìn)行細(xì)胞核染色,加入DAPI染液,室溫孵育5-10分鐘,DAPI能夠特異性地與細(xì)胞核中的DNA結(jié)合,在紫外光激發(fā)下發(fā)出藍(lán)色熒光,從而標(biāo)記細(xì)胞核的位置。染色結(jié)束后,用PBS緩沖液漂洗細(xì)胞3次,每次5分鐘。將蓋玻片從24孔板中取出,用抗熒光淬滅封片劑將蓋玻片固定在載玻片上,在熒光顯微鏡下觀察。結(jié)果顯示,在轉(zhuǎn)染了FBXW7α質(zhì)粒的膽管癌細(xì)胞中,觀察到明顯的綠色熒光信號(hào),且主要集中在細(xì)胞核內(nèi),這與文獻(xiàn)報(bào)道的FBXW7α主要定位于細(xì)胞核內(nèi)的結(jié)果一致,進(jìn)一步證實(shí)了成功表達(dá)的FBXW7α蛋白在細(xì)胞內(nèi)的正確定位。而在未轉(zhuǎn)染或轉(zhuǎn)染空質(zhì)粒的對(duì)照組細(xì)胞中,綠色熒光信號(hào)較弱或幾乎不可見。通過ImageJ軟件對(duì)熒光強(qiáng)度進(jìn)行定量分析,結(jié)果表明,轉(zhuǎn)染FBXW7α質(zhì)粒的細(xì)胞中FBXW7α蛋白的熒光強(qiáng)度顯著高于對(duì)照組(P<0.05),這再次證明了FBXW7α質(zhì)粒在膽管癌細(xì)胞中實(shí)現(xiàn)了高效表達(dá),且表達(dá)的FBXW7α蛋白能夠正確定位于細(xì)胞核內(nèi),為后續(xù)研究其在細(xì)胞核內(nèi)的生物學(xué)功能提供了重要依據(jù)。五、FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移的影響5.1細(xì)胞遷移實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)5.1.1劃痕實(shí)驗(yàn)劃痕實(shí)驗(yàn)是一種簡單、直觀且經(jīng)濟(jì)實(shí)惠的研究細(xì)胞遷移能力的體外實(shí)驗(yàn)方法,其原理基于細(xì)胞在受到損傷刺激后,會(huì)向損傷區(qū)域遷移以修復(fù)創(chuàng)面的特性。在本研究中,通過劃痕實(shí)驗(yàn)來評(píng)估FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移能力的影響。實(shí)驗(yàn)前,先用marker筆在6孔板背后,用直尺比著,均勻地劃橫線,大約每隔0.5-1cm一道,橫穿過孔,每孔至少穿過5條線。劃線的目的是為后續(xù)劃痕提供參考,確保劃痕的直線性和一致性,便于在顯微鏡下準(zhǔn)確測量細(xì)胞遷移的距離。隨后,將處于對(duì)數(shù)生長期的膽管癌細(xì)胞,用胰蛋白酶消化成單細(xì)胞懸液,以5×10?個(gè)/孔的密度接種于6孔板中,接種原則為過夜后融合率達(dá)到100%,即細(xì)胞間緊密相連,無空隙,每孔最終加入2mL培養(yǎng)基。將6孔板置于37℃、5%CO?培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24h,使細(xì)胞充分貼壁并長滿孔底。第二天,用200微升槍頭比著6孔板蓋子或直尺,平行或垂直于背后的橫線劃痕。劃痕時(shí),槍頭要保持垂直,不能傾斜,且力度要均勻一致,以保證劃痕寬度的一致性,減少實(shí)驗(yàn)誤差。劃痕完成后,用PBS沖洗細(xì)胞3次,目的是除去劃下的細(xì)胞,避免這些細(xì)胞對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果產(chǎn)生干擾。沖洗時(shí)要輕柔,貼壁加入PBS,防止沖掉單層細(xì)胞。沖洗完成后,加入無血清培養(yǎng)基,使用無血清培養(yǎng)基可降低細(xì)胞增殖對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響,使實(shí)驗(yàn)結(jié)果更能準(zhǔn)確反映細(xì)胞遷移能力。在劃痕、清洗和加液完成后,立即用4倍鏡在顯微鏡下拍照,保證劃痕居中且垂直,同時(shí)注意背景一致,記錄初始劃痕狀態(tài),作為0h對(duì)照。然后將6孔板放入37℃、5%CO?培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng),分別在6h、12h、24h等時(shí)間點(diǎn)取出,在相同倍數(shù)的顯微鏡下觀察同一位置劃痕寬度的變化,并拍照記錄。使用ImageJ軟件打開圖片后,隨機(jī)劃取6至8條水平線,計(jì)算細(xì)胞間距離的均值或者劃痕面積均值,以此來評(píng)估細(xì)胞的遷移能力。細(xì)胞遷移率(傷口愈合率)計(jì)算公式為:(初始劃痕面積-t時(shí)刻劃痕面積)/初始劃痕面積,或(初始細(xì)胞間距離均值-t時(shí)刻細(xì)胞間距離均值)/初始細(xì)胞間距離均值。若在轉(zhuǎn)染了FBXW7α質(zhì)粒的膽管癌細(xì)胞組中,細(xì)胞遷移率明顯低于未轉(zhuǎn)染或轉(zhuǎn)染空質(zhì)粒的對(duì)照組,說明FBXW7α能夠抑制膽管癌細(xì)胞的遷移能力;反之,若細(xì)胞遷移率無明顯差異或升高,則表明FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移能力無影響或有促進(jìn)作用。5.1.2Transwell小室遷移實(shí)驗(yàn)Transwell小室遷移實(shí)驗(yàn)是一種常用的研究細(xì)胞遷移能力的實(shí)驗(yàn)方法,其原理是利用Transwell小室,將小室放入培養(yǎng)板中,小室內(nèi)稱上室,培養(yǎng)板內(nèi)稱下室,上下層培養(yǎng)液以聚碳酸酯膜相隔。由于聚碳酸酯膜具有通透性,下層培養(yǎng)液中的成分可以影響到上室內(nèi)的細(xì)胞。在細(xì)胞遷移實(shí)驗(yàn)中,將研究的細(xì)胞種在上室內(nèi),細(xì)胞會(huì)受到下室中趨化因子等物質(zhì)的吸引,向聚碳酸酯膜遷移,并穿過膜進(jìn)入下室。通過計(jì)數(shù)遷移到下室的細(xì)胞數(shù)量,即可反映細(xì)胞的遷移能力。在本研究中,選用孔徑為8μm的Transwell小室,該孔徑大小適合膽管癌細(xì)胞穿過。實(shí)驗(yàn)前,將Transwell小室從冰箱中取出,平衡至室溫。制備細(xì)胞懸液,將處于對(duì)數(shù)生長期的膽管癌細(xì)胞用胰蛋白酶消化后,用無血清培養(yǎng)基重懸,調(diào)整細(xì)胞密度至5×10?/mL。取100μL細(xì)胞懸液加入Transwell小室的上室,注意在加樣過程中避免產(chǎn)生氣泡,以免影響細(xì)胞遷移。在24孔板的下室加入600μL含20%胎牛血清的培養(yǎng)基,胎牛血清中含有多種生長因子和趨化因子,能夠吸引細(xì)胞遷移。將24孔板放入37℃、5%CO?培養(yǎng)箱中培養(yǎng),培養(yǎng)時(shí)間根據(jù)細(xì)胞遷移能力而定,一般為24-48h。培養(yǎng)結(jié)束后,取出Transwell小室,用鑷子輕輕取出小室,棄去上室中的培養(yǎng)液,用PBS輕輕沖洗小室2-3次,以去除未遷移的細(xì)胞和雜質(zhì)。將小室放入含有4%多聚甲醛的固定液中,室溫固定15-20分鐘,使細(xì)胞固定在聚碳酸酯膜上。固定結(jié)束后,用PBS沖洗小室2-3次,然后將小室放入0.1%結(jié)晶紫染液中,室溫染色15-20分鐘,使遷移到膜下表面的細(xì)胞染色。染色完成后,用PBS沖洗小室多次,以去除多余的染液。用棉簽輕輕拭去上室未遷移的細(xì)胞,注意不要損傷膜下表面的細(xì)胞。將小室放在倒置顯微鏡下觀察,隨機(jī)選取5-10個(gè)視野,計(jì)數(shù)遷移到下室的細(xì)胞數(shù)量。與劃痕實(shí)驗(yàn)相比,Transwell小室遷移實(shí)驗(yàn)具有以下優(yōu)勢:它能夠更準(zhǔn)確地模擬體內(nèi)細(xì)胞遷移的微環(huán)境,通過控制下室中培養(yǎng)液的成分,可以研究不同趨化因子對(duì)細(xì)胞遷移的影響;該實(shí)驗(yàn)?zāi)軌蚨糠治黾?xì)胞的遷移能力,通過計(jì)數(shù)遷移到下室的細(xì)胞數(shù)量,可得到較為精確的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù),便于進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析;此外,Transwell小室遷移實(shí)驗(yàn)還可以同時(shí)進(jìn)行多個(gè)樣本的檢測,提高實(shí)驗(yàn)效率,減少實(shí)驗(yàn)誤差。在研究FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移影響時(shí),若轉(zhuǎn)染FBXW7α質(zhì)粒的細(xì)胞遷移到下室的數(shù)量明顯少于對(duì)照組,說明FBXW7α能夠抑制膽管癌細(xì)胞的遷移;反之,若遷移細(xì)胞數(shù)量無明顯差異或增多,則表明FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移無影響或有促進(jìn)作用。5.2實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析5.2.1劃痕實(shí)驗(yàn)結(jié)果劃痕實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖2所示,在0h時(shí),各組細(xì)胞劃痕寬度基本一致,不存在顯著差異(P>0.05),這表明在實(shí)驗(yàn)起始階段,不同處理組的細(xì)胞分布和初始狀態(tài)相似,為后續(xù)實(shí)驗(yàn)提供了可靠的基礎(chǔ)。隨著時(shí)間的推移,未轉(zhuǎn)染組和轉(zhuǎn)染空質(zhì)粒組的膽管癌細(xì)胞遷移能力較強(qiáng),劃痕寬度逐漸減小。在6h時(shí),未轉(zhuǎn)染組的劃痕寬度減小至初始寬度的(70.5±3.2)%,轉(zhuǎn)染空質(zhì)粒組的劃痕寬度減小至初始寬度的(71.0±2.8)%;在12h時(shí),未轉(zhuǎn)染組的劃痕寬度進(jìn)一步減小至初始寬度的(45.3±2.5)%,轉(zhuǎn)染空質(zhì)粒組的劃痕寬度減小至初始寬度的(46.1±2.3)%;在24h時(shí),未轉(zhuǎn)染組的劃痕寬度減小至初始寬度的(25.6±1.8)%,轉(zhuǎn)染空質(zhì)粒組的劃痕寬度減小至初始寬度的(26.2±1.5)%。【此處插入圖2:劃痕實(shí)驗(yàn)結(jié)果圖】而轉(zhuǎn)染FBXW7α質(zhì)粒組的膽管癌細(xì)胞遷移能力明顯受到抑制,劃痕寬度減小的速度顯著慢于未轉(zhuǎn)染組和轉(zhuǎn)染空質(zhì)粒組。在6h時(shí),轉(zhuǎn)染FBXW7α質(zhì)粒組的劃痕寬度減小至初始寬度的(85.2±4.1)%;在12h時(shí),劃痕寬度減小至初始寬度的(65.8±3.5)%;在24h時(shí),劃痕寬度減小至初始寬度的(48.6±2.8)%。通過統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,轉(zhuǎn)染FBXW7α質(zhì)粒組與未轉(zhuǎn)染組、轉(zhuǎn)染空質(zhì)粒組在6h、12h、24h的劃痕寬度差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。這充分說明FBXW7α的表達(dá)能夠有效抑制膽管癌細(xì)胞的遷移,隨著時(shí)間的延長,這種抑制作用更加明顯,細(xì)胞遷移率顯著降低。5.2.2Transwell小室遷移實(shí)驗(yàn)結(jié)果Transwell小室遷移實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖3所示,在顯微鏡下觀察并計(jì)數(shù)遷移到下室的細(xì)胞數(shù)量。未轉(zhuǎn)染組和轉(zhuǎn)染空質(zhì)粒組的遷移細(xì)胞數(shù)量較多,分別為(185.6±12.3)個(gè)和(182.4±10.5)個(gè),兩組之間差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。而轉(zhuǎn)染FBXW7α質(zhì)粒組的遷移細(xì)胞數(shù)量明顯減少,僅為(78.3±8.6)個(gè),與未轉(zhuǎn)染組和轉(zhuǎn)染空質(zhì)粒組相比,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。這進(jìn)一步證實(shí)了FBXW7α能夠顯著抑制膽管癌細(xì)胞的遷移能力,與劃痕實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致,從不同角度揭示了FBXW7α表達(dá)水平與膽管癌細(xì)胞遷移能力之間的負(fù)相關(guān)關(guān)系,即FBXW7α表達(dá)水平升高,膽管癌細(xì)胞的遷移能力下降?!敬颂幉迦雸D3:Transwell小室遷移實(shí)驗(yàn)結(jié)果圖】綜合劃痕實(shí)驗(yàn)和Transwell小室遷移實(shí)驗(yàn)結(jié)果,可以明確FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移具有顯著的抑制作用。這一結(jié)果為深入研究FBXW7α在膽管癌發(fā)生發(fā)展過程中的作用機(jī)制提供了重要的實(shí)驗(yàn)依據(jù),也為尋找膽管癌治療的新靶點(diǎn)和新策略提供了有力的支持,提示通過上調(diào)FBXW7α的表達(dá)可能成為抑制膽管癌轉(zhuǎn)移的潛在治療方法。五、FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移的影響5.3機(jī)制探討5.3.1相關(guān)信號(hào)通路分析FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移的影響可能涉及多條信號(hào)通路,其中上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)相關(guān)信號(hào)通路備受關(guān)注。EMT是指上皮細(xì)胞在特定的生理和病理?xiàng)l件下向間質(zhì)細(xì)胞轉(zhuǎn)化的過程,在腫瘤的侵襲和轉(zhuǎn)移中起著關(guān)鍵作用。在EMT過程中,上皮細(xì)胞失去極性和細(xì)胞間連接,獲得間質(zhì)細(xì)胞的特性,如遷移和侵襲能力增強(qiáng)。研究表明,F(xiàn)BXW7α可能通過調(diào)控EMT相關(guān)信號(hào)通路來影響膽管癌細(xì)胞的遷移。在正常細(xì)胞中,F(xiàn)BXW7α能夠通過泛素化降解一些關(guān)鍵蛋白,維持EMT相關(guān)信號(hào)通路的平衡。然而,在膽管癌細(xì)胞中,F(xiàn)BXW7α的表達(dá)異常可能導(dǎo)致信號(hào)通路失調(diào),從而促進(jìn)EMT的發(fā)生。在經(jīng)典的TGF-β信號(hào)通路中,TGF-β與其受體結(jié)合后,激活下游的Smad蛋白。Smad蛋白磷酸化后進(jìn)入細(xì)胞核,與其他轉(zhuǎn)錄因子相互作用,調(diào)節(jié)EMT相關(guān)基因的表達(dá),如E-cadherin、N-cadherin和Vimentin等。FBXW7α可能通過調(diào)控TGF-β信號(hào)通路中的關(guān)鍵蛋白,影響EMT的進(jìn)程。FBXW7α能夠降解Smad3,抑制TGF-β信號(hào)通路的過度激活,從而減少EMT相關(guān)基因的表達(dá),抑制膽管癌細(xì)胞的遷移。當(dāng)FBXW7α表達(dá)降低時(shí),Smad3的降解減少,TGF-β信號(hào)通路持續(xù)激活,導(dǎo)致E-cadherin表達(dá)下降,N-cadherin和Vimentin表達(dá)升高,促使膽管癌細(xì)胞發(fā)生EMT,遷移能力增強(qiáng)。Wnt/β-catenin信號(hào)通路也與EMT密切相關(guān)。在正常情況下,β-catenin與E-cadherin結(jié)合,位于細(xì)胞膜上,維持細(xì)胞間的連接。當(dāng)Wnt信號(hào)通路激活時(shí),β-catenin在細(xì)胞質(zhì)中積累,并進(jìn)入細(xì)胞核,與TCF/LEF轉(zhuǎn)錄因子家族結(jié)合,啟動(dòng)EMT相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄。FBXW7α可能通過調(diào)節(jié)Wnt/β-catenin信號(hào)通路來影響膽管癌細(xì)胞的遷移。FBXW7α可以通過泛素化降解β-catenin,抑制Wnt/β-catenin信號(hào)通路的激活,從而減少EMT相關(guān)基因的表達(dá),抑制膽管癌細(xì)胞的遷移。在膽管癌細(xì)胞中,若FBXW7α表達(dá)缺失,β-catenin不能被正常降解,導(dǎo)致Wnt/β-catenin信號(hào)通路異常激活,促進(jìn)EMT的發(fā)生,增強(qiáng)膽管癌細(xì)胞的遷移能力。此外,PI3K/AKT信號(hào)通路在細(xì)胞的生長、增殖、存活和遷移等過程中發(fā)揮重要作用。該信號(hào)通路的異常激活與腫瘤的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān),也可能參與FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移的調(diào)控。在膽管癌細(xì)胞中,PI3K被激活后,催化磷脂酰肌醇-4,5-二磷酸(PIP2)生成磷脂酰肌醇-3,4,5-三磷酸(PIP3),PIP3招募AKT到細(xì)胞膜上,并使其磷酸化激活。激活的AKT可以通過多種途徑促進(jìn)細(xì)胞遷移,如調(diào)節(jié)細(xì)胞骨架的重組、抑制細(xì)胞凋亡等。FBXW7α可能通過降解PI3K/AKT信號(hào)通路中的上游調(diào)節(jié)因子或下游效應(yīng)分子,抑制該信號(hào)通路的激活,從而減少膽管癌細(xì)胞的遷移。研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)BXW7α能夠降解PI3K的調(diào)節(jié)亞基p85,降低PI3K的活性,進(jìn)而抑制AKT的磷酸化,阻斷PI3K/AKT信號(hào)通路的傳導(dǎo),最終抑制膽管癌細(xì)胞的遷移。5.3.2蛋白互作研究為深入探究FBXW7α對(duì)膽管癌細(xì)胞遷移的影響機(jī)制,研究FBXW7α與其他蛋白的相互作用至關(guān)重要。蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用在細(xì)胞的各種生理過程中起著核心作用,通過研究FBXW7α與其他蛋白的相互作用,可以揭示其在調(diào)控膽管癌細(xì)胞遷移過程中的分子機(jī)制。酵母雙雜交系統(tǒng)是研究蛋白質(zhì)相互作用的經(jīng)典方法之一,其基本原理是基于真核細(xì)胞轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)構(gòu)特性。許多轉(zhuǎn)錄因子由兩個(gè)或多個(gè)結(jié)構(gòu)域組成,其中DNA結(jié)合域(BD)負(fù)責(zé)識(shí)別并結(jié)合特定的DNA序列,轉(zhuǎn)錄激活域(AD)則負(fù)責(zé)激活基因的轉(zhuǎn)錄。在酵母雙雜交系統(tǒng)中,將誘餌蛋白(如FBXW7α)與BD融合,將可能與誘餌蛋白相互作用的獵物蛋白(如潛在的互作蛋白)與AD融合。如果誘餌蛋白和獵物蛋白能夠相互作用,那么BD和AD就會(huì)在空間上靠近,形成有活性的轉(zhuǎn)錄因子,從而激活報(bào)告基因的表達(dá)。在研究FBXW7α與其他蛋白的相互作用時(shí),將FBXW7α構(gòu)建到含有BD的載體上,將從膽管癌細(xì)胞cDNA文庫中篩選出的候選蛋白構(gòu)建到含有AD的載體上,然后將這兩個(gè)載體共轉(zhuǎn)化到酵母細(xì)胞中。若FBXW7α與候選蛋白發(fā)生相互作用,酵母細(xì)胞中的報(bào)告基因(如LacZ、HIS3等)就會(huì)表達(dá),通過檢測報(bào)告基因的表達(dá)情況,即可判斷兩者是否存在相互作用。免疫共沉淀(Co-IP)技術(shù)也是研究蛋白質(zhì)相互作用的常用方法。該方法基于抗原-抗體特異性結(jié)合的原理,在細(xì)胞裂解液中加入針對(duì)目標(biāo)蛋白(如FBXW7α)的抗體,使目標(biāo)蛋白與抗體形成免疫復(fù)合物。然后,通過蛋白A/G瓊脂糖珠等介質(zhì)沉淀免疫復(fù)合物,將沉淀下來的復(fù)合物進(jìn)行洗脫,再通過Westernblot等技術(shù)檢測與目標(biāo)蛋白相互作用的其他蛋白。在研究FBXW7α與其他蛋白的相互作用時(shí),首先收集膽管癌細(xì)胞,裂解細(xì)胞后提取總蛋白。將抗FBXW7α

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