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文檔簡介
ICS11.220
CCSB41
DH37
山東省地方標準
DB37/TXXXXX—XXXX
鵝星狀病毒感染診斷技術規(guī)范
Diagnostictechnicalspecificationforgooseastrovirusinfection
XXXX-XX-XX發(fā)布XXXX-XX-XX實施
山東省市場監(jiān)督管理局發(fā)布
DB37/TXXXXX—XXXX
-A—
刖B
本文件按照GB/T1.1-2020《標準化工作導則第1部分:標準化文件的結構和起草規(guī)則》的規(guī)定
起草。
請注意本文件的某些內容可能涉及專利。木文件的發(fā)布機構不承擔識別專利的責任。
本文件由山東省畜牧獸醫(yī)局提出并組織或施。
本文件由山東省畜牧業(yè)標準化技術委員會歸口。
I
DB37/TXXXXX—XXXX
鵝星狀病毒感染診斷技術規(guī)范
1范圍
本文件規(guī)定了鵝星狀病毒感染的臨床診斷和實驗室診斷的技術規(guī)范。其中臨床診斷包括流行病學、
臨床癥狀、病理變化;實驗室診斷包括樣品的采集與保存、病毒分離鑒定、反轉錄-聚合酶鏈式反應
(RT-PCR)、實時熒光定量RT-PCR與間接酶聯免疫吸附試驗(ELISA)。
本文件適用于鵝星狀病毒感染的診斷、檢測、監(jiān)測和流行病學調查。鵝星狀病毒感染的流行病學、
臨床癥狀、病理變化適用「鵝星狀病毒的初步診斷;病毒分離、RT-PCR和實時熒光定量RT-PCR檢測方法
適用于鵝組織、分泌物、排泄物和病毒培養(yǎng)物中鵝星狀病毒分離鑒定及核酸檢測;間接ELISA抗體檢測
方法適用于鵝星狀病毒感染的抗體特異性血清學診斷。
2規(guī)范性引用文件
下列文件中的內容通過文中的規(guī)范性引用而構成本文件必不可少的條款。其中,注日期的引用文件,
僅該日期對應的版本適用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)適用于本
文件。
GB19489—2008實驗室生物安全通用要求
GB/T27401實驗室質量控制規(guī)范動物檢疫
NY/T541-2016獸醫(yī)診斷樣品采集、保存與運輸技術規(guī)范
3術語和定義
下列術語和定義適用于本文件。
3.1
鵝星狀病毒感染gooseastrovirusinfection
由鵝星狀病毒引起的5口齡?25口齡雛鵝內臟器官與關節(jié)發(fā)生嚴重尿酸鹽沉積的疾病。
4實驗室要求
4.1環(huán)境
4.1.1實驗室符合GB19489—2008和GB/T27401要求。
4.1.2從事RT-PCR工作的實驗室應進行分區(qū),根據條件劃分出前處理區(qū)、核酸提取區(qū)、核酸擴增區(qū)、
電泳檢測區(qū),形成有效的物理隔離,且為單?流向,不得倒流,特別注意電泳后的瓊嘴凝膠要及時處理,
避免對實驗室造成污染。
4.1.3生物樣品應嚴格控制避免對環(huán)境造成污染,試驗結束后應將相關樣品(如血樣)進行無害化處
理。
4.2人員
1
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5.4.4所有樣品保存溫度在-15°C以下,不超過2wk;-70℃貯存不超過30d。
5.5檢測要求
在每次檢測過程中,需要設置相應的陽性對照和陰性對照。
6臨床診斷
6.1流行病學
鵝群發(fā)病日齡集中于5日齡?20日齡,5日齡左右開始發(fā)病,死亡率逐漸升高,10日齡?15日齡為死
亡高峰,鵝群的死亡率為20%?30%,最高可達50%。
6.2臨床癥狀
患病雛鵝表現為精神沉郁、臥地倦動、采食減少、排白色稀便。
6.3剖檢變化與組織學變化
死亡雛鵝剖檢變化主要表現為內臟器它和關節(jié)腔有大量尿酸鹽沉積,包括心臟、肝臟、腎臟及愉尿
管等,有的病例表現為腎臟出血腫大?;践Z組織學變化主要表現為腎小管上皮細胞壞死、間質出血,腎
小球腫脹,脾臟有大量紅細胞浸潤,肝細胞空泡變性、尿酸鹽沉積。
6.4臨床診斷結果判定
同時符合6.1、6.2、6.3,則判斷為疑似鵝星狀病毒感染。
7病毒分離鑒定
7.1病毒分離
7.1.1儀器設備與材料
7.1.1.1不同溫度的冰箱(2℃-8℃、-20℃、-70℃)o
7.1.1.237c恒溫孵化箱。
7.1.1.34℃離心機。
7.1.1.4打孔器。
7.1.1.51mL注射器。
7.1.1.6石蠟。
7.1.1.7照蛋器。
7.1.1.813口齡鵝星狀病毒III清抗體陰性鵝胚。
7.1.2樣品接種和培養(yǎng)
7.1.2.1將處理后的樣品上清,經絨毛尿囊腔途徑無菌接種13日齡鵝胚,0.2亳升/枚,37c孵育,
連續(xù)觀察6d。
7.1.2.2棄去24h內死亡鵝胚,24h?144h內死亡和存活鵝胚置于4c冰箱過夜或-20C冷凍lh,
分別無菌收集尿囊液并進行無菌檢查,無菌尿囊液宣傳三代。
7.1.3病毒分離結果判定
3
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組織樣品處理液接種鵝胚后,當胚體3d?5d內出現死亡,且胚體尿囊膜增厚,死亡鵝胚全身皮膚
及胚體腹膜有點狀出血斑,肝臟、腎臟、肺臟均呈現點狀出血等變化,可判斷為鵝疑似星狀病毒感染。
7.2病原檢測
7.2.1RT-PCR反應
7.2.11儀器設備
7.2.11.1生物安全柜。
7.2.11.2PCR基因擴增儀。
7.2.11.3臺式低溫高速離心機(最大轉速為15000r/min).
7.2.11.4無RNA酶離心管(1.5mL)。
7.2.11.5PCR反應管(0.2mL)。
7.2.11.6微量移液器(最大量程分別為10uL、20nL、100uL、1000uL)。
7.2.11.7無RNA酶帶濾芯槍頭。
7.2.11.8核酸電泳儀。
7.2.11.9核酸電泳槽。
7.2.11.10紫外凝膠成像儀。
7.2.11.11電子天平:精度為0.01g。
7.2.11.12電磁爐或微波爐。
7.2.12試劑與材料
7.2.12.1DEPC水。
7.2.12.2商品化RNA提取試劑盒。
7.2.12.3RT反應試劑盒。
7.2.12.4PCR反應試劑。
7.2.12.51.0%瓊脂糖凝膠,見A.2。
7.2.12.61XTAE緩沖液,見A.3。
7.2.12.7核酸染料。
7.2.12.8核酸電泳加樣緩沖液,見A.4。
7.2.12.9DNA分子量標準,要求在100bp?2000bp之間,有5條以上的指示條帶。
7.2.12.10陽性對照標準品,使用鵝星狀病毒SDPY株(03TCCNO:V201808,見附錄C),或其他背
景清楚的鵝星狀病毒。
7.2.12.11陰性對照標準品,為健康鵝正常組織或未感染鵝星狀病毒鵝胚尿囊液。
7.2.12.12RT-PCR檢測所需引物:
——上游引物引5'-TGGTGGTGYTTYCTCAARA-3';
——下游引物R:5,-GYCKGTCATCMCCRTARCA-3,,擴增片段長度為601bp,引物濃度為10umol/Lo
7.2.1.3試驗程序
7.2.1.3.1RNA提取
按RNA提取試劑盒說明書提取樣品和對照組的RNA。提取的RNA應立即檢測,否則應置于-70℃凍存。
7.2.1.3.2RT-PCR反應
7.2.1.3.2.1反轉錄體系及程序
4
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RNaseInhibitor0.5uL,M-MLVbuffer2yL,RandomPrimers1.0uL,dNTPs(2.5mmol/L)
1uL,RNaseM-MLV0.5uL,RNA模板5uL,共計10uL反轉錄反應程序為30℃10min,42℃60min,
70℃15min,4℃終止。
7.2.1.3.2.2PCR反應體系及程序
在試劑準備區(qū)配制PCR反應液,在樣品制備區(qū)進行加樣,反應體系如下:10XPCRBuffer2.5uL,
dNTPs(2.5mmol/L)2^L,弓|物F(10umol/L)和R(10umol/L)各0.5uL,模板cDMA3nL,rTaq
DNA聚合酶0.25uL,加DEPC水至25UL。
瞬時離心,置于PCR基因擴增儀內進行擴增,反應程序為:94℃預變性5min;94℃30s,55℃30
s,72℃30s,30個循環(huán);72c延伸10min。
7.2.1.3.2.3瓊脂糖凝膠電泳
1.0與瓊脂糖凝膠板的制備:稱取1g瓊脂糖,加入100磯1XTAE緩沖液中。加熱融化后加5UL核酸
染料溶液,混勻后倒入放置在水平臺面上的凝膠盤中,膠板厚5mm左右。依據樣品數選用適宜的梳子。
待凝膠冷卻凝固后拔出梳子(膠中形成加樣孔),放入電泳槽中,力口1XTAE緩沖液淹沒膠面。
加樣:取6uL?8uLPCR擴增產物和2口L加樣緩沖液混勻后加入一個加樣孔。每次電泳同時設標
準DNAMarker,陰性對照、陽性對照。
電泳:電壓80v?100V或電流40mA?50mA,電泳30min?40min。最后,由凝膠成像系統觀察并拍
照記錄。
7.2.1.4結果判定
7.2.1.4.1試驗成立的條件
陽性對照出現601bp的擴漕條帶,且陰性對照無擴增條帶時,判定試驗結果成立。
7.2.1.4.2試驗結果的判定
7.2.1.4.2.1在試驗成立的前提下,待檢樣品出現601bp的條帶,判定待檢樣品為鵝星狀病毒PCR陽
性,必要時,對擴增片段進行序列測定。
7.2.1.4.2.2在試驗成立的前提下,待檢樣品無條帶,則為鵝星狀病毒PCR陰性(見B.1)。
7.2.2實時熒光定量RT-PCR
7.2.2.1儀器設備
7.2.2.1.1生物安全柜。
7.2.2.1.2臺式低溫高速離心機(最大轉速為15000r/min)。
7.2.2.1.3無RNA睡的離心管(1.5mL)。
7.2.2.1.4無RNA酶的熒光定量PCR管。
7.2.2.1.5微量移液器(最大量程分別為10PL、20uL、100uL.1000uL),
7.2.2.1.6無RNA酶帶濾芯的槍頭。
7.2.2.1.7熒光定量PCR儀。
7.2.2.2試劑與材料
7.2.2.2.1DEPC水。
7.2.2.2.2商品化RNA提取試劑盒。
5
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7.2.2.2.3一步法熒光定量RT-PCR試劑盒。
7.2.2.2.4陽性對照標準品,使用鵝星狀病毒SDPY株(CCTCCNO:V201808),或其他背景清楚的鵝星
狀病毒。
7.2.2.2.5陰性對照標準品,為健康鵝正常組織或未感染鵝星狀病毒鵝胚尿囊液。
7.2.2.2.6熒光定量RT-PCR檢測所需引物及探針:
——上游引物F:5'-GGTGGGCTAATAACGGAACTCAG-3':
——下游引物R:5'-GACCTATTTCCTTGCGGATCAC3;
——探針P:5'FAM-TCGGCTCAACATCGCTGATGGG-BHQ3,擴增片段長度為89bp,引物濃度為10P
mol/Lo
7.2.2.3試驗程序
7.2.2.3.1RNA提取
RNA提取參照7.2.1.3.U
7.2.2.3.2實時熒光定量RT-PCR反應體系及程序
在實驗室潔凈區(qū)域,將試劑盒中預混液、引物和探針取出,置于冰上融化,將下列試劑一次加入到
無RNA酶的熒光定量PCR管中。反應體系如下:2X0neStepRT-PCRBufferIII10uL,TabaraExTaq
HS0.4nL,PrimeScriptRTEnzymeMixII0.4PL,引物F(10nmol/L)和引物R(10ymol/L)各
0.4uL,探針P(10umol/L)0.8uL,模板RNA2uL,力口ddH#至20uL。反應液混勻后置于
LightCycle產96熒光定量PCR儀按照以下程序進行擴增:42c反轉錄5min,95℃10s;95c變性5s,
60℃退火20s(收集信號),進行40個循環(huán)。
7.2.2.4結果判定
7.2.2.4.1試驗成立的條件
陽性對照出現S型擴增曲線,且陰性對照無擴增曲線時,判定檢測結果有效。
7.2.2.4.2試驗結果的判定
7.2.2.4.2.1Ct值<30,且出現S型擴增曲線,表明樣品中存在鵝星狀病毒,判定為陽性。
7.2.2.4.2.2無Ct值,且無擴增曲線,或Ct值>35,表明樣品中無鵝星狀病毒,判定為陰性。
7.2.2.4.2.330VCI值<35的樣品,判定為可疑,需重新檢測(見B.2)。
8病毒抗體檢測(間接ELISA)
8.1儀器設備
8.1.1臺式高速離心機(最大轉速為15()0()rpm)。
8.1.2酶標儀。
8.1.3微量移液器:最大量程分別為10UL、20uL.100pL.1000uL.
8.1.4聚苯乙烯板。
8.1.5水平振蕩器。
8.1.637℃培養(yǎng)箱。
8.2試劑與材料
6
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8.2.1標準陽性血清,見【).1。
8.2.2標準陰性血清,見D.2。
8.2.3鵝星狀病毒抗原,見D.3。
8.2.4酶標二抗:兔抗鵝辣杈過氧化物酶標記的IgG,效價應在1:32以匕
8.2.5包被液,見A.5。
8.2.6洗滌液,見A.6。
8.2.7樣品稀釋液(封閉液),見A.7。
8.2.8底物溶液,TMB底物顯色液。
8.2.9終止液(濃度為2M),見A.8。
8.3操作步驟
8.3.1將0RF2蛋白抗原按照濃度為6.5mg/mL用1X碳酸鹽緩沖液(pH9.6)稀釋2000倍,每孔100u
L加入到96孔聚苯乙烯板中,4℃孵育過夜。孵育后洗滌液洗5次,甩干板上殘余液體。
8.3.2用樣品稀釋液將被檢血清樣品稀釋40倍,注意不要稀釋對照血清。確保每個樣品換一個吸頭,
做好樣品的標記。稀釋的樣品血清充分混勻后,加入包被孔。
8.3.3每孔加入200uL封閉液,37℃溫箱孵育1h,用&3.1方法洗板。
8.3.4在Al、A2孔各加100PL陰性血清對照,A3、A4孔各加100PL陽性血清對照。
8.3.5將100uL稀釋好的待檢血清加入其他各孔,混勻后,37℃孵育1h,用&3.1方法洗板。
8.3.6酶標二抗用樣品稀釋液按1:200倍稀釋,每孔加入100uL,37℃孵育1h,用8.3.1方法洗板。
8.3.7每孔加入100uLTMB顯色液,37℃避光條件下孵育15min。
8.3.8每孔加入50HL終止液,輕輕振蕩,終止反應。
8.3.9將酶標板置于酶標儀中,于450nm測定各孔樣品的吸光值(0D)。
8.4結果判定
8.4.1試驗成立的條件
鵝星狀病毒間接ELISA檢測方法陰性對■照0D均值=(ODA1+0DA2)/2;陽性對照0D均值=(0M+OD.v,)
/2;陽性對照平均值減去陰性對照平均值,其差必須大于0.04;陰性對照平均值必須小于等于().17,試
驗條件成立,否則重復測定。
8.4.2試驗結果的判定
8.4.2.1當樣品OD.15O>O.21時,樣品判定為鵝星狀病毒抗體陽性。
8.4.2.2當樣品OD.,5O<O.17,樣品判定為鵝星狀病毒抗體陰性。
8.4.2.3當樣品0.17VOD450Vo.21,判為可疑,需重復測定。
9鵝星狀病毒感染綜合判定
根據第6章、第7章、第8章中的判定結果,可對鵝星狀病毒感染進行綜合判定。
9.1若患鵝與第6章中所描述相符,且第7章、第8章中結果均呈陽性,則可判定為鵝星狀病毒感染。
9.2若患鵝與第6章中所描述部分相符,但第7章、第8章中結果均呈陽性,則可判定為鵝星狀病毒
感染。
9.3若患鵝在第7章中的結果呈陽性,但在第8章中的結果呈陰性,也可判定為鵝星狀病毒感染。反
之則不成立。
7
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附錄A
(資料性)
相關試劑的配制(試劑要求分析純)
A.1磷酸鹽緩沖液(PBS,0.01mol/LpH7.4)
NaCl8.0g
KC10.2g
KM。』0.2g
Na2HPO(.12H2O0.2g
水加至1000mL
A.21.0*瓊脂糖凝膠的配制
瓊脂糖LOg
0.5XTAE電泳緩沖液加至100mL
微波爐中完全融化,待冷至50C?60C時加入核酸染料,搖勻。倒入板上凝固后,取下梳子,備
用。
A.31XTAE電泳緩沖液的配制
A.3.1配制0.5mol/L乙二胺四乙酸鈉(EDTA-Na2)溶液(pH8.0)
乙二胺四乙酸鈉(EDTA-Naz.2H.0)18.61g
滅菌雙蒸水80.0mL
氫氧化鈉調pH至8.0
水加至100mL
用于配制A.3.2中的50XTAE電泳緩沖液。
A.3.2配制50XTAE電泳緩沖液
羥基甲基氨基甲烷(Tris)242g
冰醋酸57.1mL
0.5mol/L乙二胺四乙酸鈉(EDTA-Na2)溶液(pH8.0)100mL
滅菌超純水加至1000mL
用于配制A.3.3中的1XTAE電泳緩沖液。
A.3.3配制1XTAE電泳緩沖液
50XTAE電泳緩沖液20mL
水加至1000mL
A.4核酸電泳加樣緩沖液(10X)
聚蔗糖25g
滅菌雙蒸水100mL
濱酚藍0.1g
二甲苯青0.1g
A.5包被液(0.05mol/LpH9.6)
8
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Na2cOB0.2756g
NaHCOs0.6216g
水加至100ml.
A.6洗滌液
PBS1000mL
Tween-200.5mL
A.7樣品稀釋液(封閉液)
脫脂奶粉5.0g
洗滌液100mL
A.8終止液(2M)
112so4(98%)58mL
水442mL
9
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附錄B
(資料性)
PCR及熒光定量PCR結果圖
B.1PCR產物大小對照
ZOOObp
lOOObp
750bp
500bp
250bp
lOObp
V為分子量標準;l為陰性對照,2為陽性對照。
圖B.1PCR產物大小對照圖
B.2熒光定量PCR擴增曲線
1為陽性對照,2為陰性對照。
圖B.2熒光定量PCR擴增曲線
10
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附錄C
(資料性)
陽性對照病毒(SDPY)
C.1SDPY鵝星狀病毒的來源
SDPY鵝星狀病毒,是一種鵝源病毒,由山東農業(yè)大學禽病學實驗室分離并鑒定,保藏于中國典型培
養(yǎng)物保藏中心(CCTCC),其保藏編號為CCTCCNO:V201808。該病毒可由山東農業(yè)大學禽病學實驗室提
供,由13日齡血清抗體陰性鵝胚接種病毒后,收集死亡胚體尿囊液后離心所得,病毒滴度21(r°ELD5。。
C.2SDPY鵝星狀病毒涉及的專利信息
該病毒株涉及以下專利:
?種防治新型鵝星狀病毒的滅活疫苗及其制備方法。專利號:ZL201810494586.X,專利公布日:
2020.0
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