一、假陽性擴(kuò)增二、假陰性擴(kuò)增三、實(shí)驗(yàn)室污染第一頁，共27頁。PCR技術(shù)具有高度的特異性、選擇性、靈敏性，而且快速、簡便、易于自動化，因此在臨床醫(yī)學(xué)工作中受到廣泛的重視及合理的應(yīng)用。PCR技術(shù)很簡單，原理也很清楚，但畢竟PCR技術(shù)是一種新生事物，受到許多條件因素的影響，所以要做得好也不容易。在PCR技術(shù)應(yīng)用過程中會遇到這樣或那樣的問題，更甚至?xí)玫脚c事實(shí)完成相反的結(jié)果。為了使我們能夠順利地開展PCR工作，更好地發(fā)揮PCR技術(shù)的工具作用，現(xiàn)將PCR擴(kuò)增過程中經(jīng)常出現(xiàn)的一些問題進(jìn)行簡要的總結(jié)，不足之處歡迎指正。

第二頁，共27頁。一、假陽性擴(kuò)增

在實(shí)驗(yàn)過程中有時會碰到所檢驗(yàn)的樣本全部陽性，而且擴(kuò)增產(chǎn)物電泳條帶亮度均一，這是擴(kuò)增系統(tǒng)受到污染時最典型的一種表現(xiàn)，需仔細(xì)檢查，排除污染源，一般應(yīng)從以下步驟著手：⒈

試劑污染：

廠方提供的試劑或其中的某種組分在出廠或運(yùn)輸、貯存過程中受到污染。檢測方法，可按試劑盒說明書將試劑分裝好，直接置于PCR儀中擴(kuò)增（不加陰性對照，可加適量蒸餾水），便可簡單而有效地判斷試劑是否已受到污染。

第三頁，共27頁。一、假陽性擴(kuò)增⒉

實(shí)驗(yàn)室污染：

這是最常見的污染源，由于PCR技術(shù)可以在幾個小時內(nèi)將模板中某些特異性序列擴(kuò)增到數(shù)百萬倍以上，擴(kuò)增產(chǎn)物可能在電泳等過程中污染移液器、操作臺或隨著蒸發(fā)所形成氣溶膠而污染整個實(shí)驗(yàn)室。擴(kuò)增產(chǎn)物又是最有效的模板，一旦出現(xiàn)產(chǎn)物污染其污染程度都較嚴(yán)重。判斷方法：可以將實(shí)驗(yàn)中最關(guān)鍵步驟如試劑分裝、樣品處理等轉(zhuǎn)移到一個新的環(huán)境中或轉(zhuǎn)移到超凈工作臺中完成。當(dāng)然，所用的移液器、吸咀管（離心管）都應(yīng)徹底更換。第四頁，共27頁。第五頁，共27頁。第六頁，共27頁。第七頁，共27頁。一、假陽性擴(kuò)增解決方法：實(shí)驗(yàn)室污染是PCR擴(kuò)增過程中最易出現(xiàn)的現(xiàn)象，而且一旦出現(xiàn)污染，消除污染源又極其困難，往往需對整個實(shí)驗(yàn)室及實(shí)驗(yàn)器材徹底清洗處理，所以應(yīng)該以預(yù)防為主，實(shí)驗(yàn)過程中嚴(yán)格遵守實(shí)驗(yàn)基本要求，樣品處理與擴(kuò)增產(chǎn)物及電泳應(yīng)盡量分開，最好能在兩個房間進(jìn)行。擴(kuò)增前處理所用的移液器及擴(kuò)增后點(diǎn)樣用的移液器應(yīng)嚴(yán)格地分開，不可互換。PCR室應(yīng)保持良好的通風(fēng)、清潔、最好能專用。

第八頁，共27頁。一、假陽性擴(kuò)增⒊采樣污染：

在實(shí)驗(yàn)過程中，有時會出現(xiàn)一批結(jié)果陽性率很高，一批結(jié)果陽性率又下降很多，如此反復(fù)，這種現(xiàn)象大都是由于采樣時污染所致，一般來講正規(guī)試劑生產(chǎn)廠家，其試劑出廠時都要經(jīng)過嚴(yán)格的質(zhì)量檢測、批間，特別是批內(nèi)差異都極小，不致出現(xiàn)如此明顯的反復(fù)，這種現(xiàn)象主要是由于收集樣本的試管或吸管受到污染所致。PCR擴(kuò)增非常敏感，而一般實(shí)驗(yàn)室對重復(fù)使用的試管所進(jìn)行的洗滌方法往注不能去除痕量DNA，這些痕量DNA便成為PCR模板，出現(xiàn)陽性擴(kuò)增結(jié)果，由于采樣試管受污染程度不一，所以出現(xiàn)忽高忽低的現(xiàn)象解決方法建議使用一次試管及吸咀取樣。

第九頁，共27頁。二、假陰性擴(kuò)增如果連續(xù)幾次擴(kuò)增結(jié)果都是陰性，或已知陽性樣本出現(xiàn)陰性擴(kuò)增結(jié)果，一般認(rèn)為這是假陰性，出現(xiàn)這現(xiàn)象有以下幾種原因：

⒈儀器故障：

出現(xiàn)全陰結(jié)果，首先考慮到儀器運(yùn)轉(zhuǎn)是否正常。正確判斷儀器的工作狀況，是排除假陰性其它原因的基礎(chǔ)，儀器運(yùn)轉(zhuǎn)是否正常是PCR擴(kuò)增最關(guān)鍵的步聚之一。判斷儀器是否正常，首先要測定加熱體的溫度是否準(zhǔn)確，波動范圍是否答合要求，各孔之間差異是否符合要求，PCR擴(kuò)增往往對儀器加熱溫度及各管間的差異要求有很高的精度，如果誤差太大，勢必出現(xiàn)假陰性。必須注意的是不能過信名牌，我們經(jīng)常發(fā)現(xiàn)一些名牌機(jī)器溫度差異高達(dá)二度以上。

第十頁，共27頁。二、假陰性擴(kuò)增⒉試劑失效或無效：

了解機(jī)器是否正常，便可對試劑進(jìn)行檢測。首先要了解試劑是否超過有效期，試存放方法是否達(dá)到要求，如果試劑盒在有效期內(nèi)，貯存方法是正確，那么就應(yīng)該仔細(xì)、慎重地判斷試劑是否是無效試劑或稱不合格試劑。可以用已知陽性樣本，或試劑盒提供的陽性對照，嚴(yán)格按說明書操作擴(kuò)增一次，然后把擴(kuò)增產(chǎn)物用雙蒸水稀釋1000倍，作為模板進(jìn)行第二次擴(kuò)增，判斷結(jié)果，如果是陰性說明試劑無效或不合格，如果結(jié)果陽性那么可用以下方法判定試劑的靈敏度。

第十一頁，共27頁。二、假陰性擴(kuò)增3.離心機(jī)問題離心機(jī)的質(zhì)量或使用不正確，造成離心標(biāo)本模板沒有分離出來造成假陰性，切以為這是最易被忽視的問題。其時離心機(jī)使用問題不僅在PCR，在整個檢驗(yàn)工作中都是最易被忽視的問題，只是因?yàn)樵谄渌ぷ髦胁幌驪CR那樣明顯影響檢測結(jié)果罷了。離心機(jī)是常用的固液分離設(shè)備，其利用離心過程中的離心力而將密度不同的物質(zhì)分離出來。因此離心機(jī)的關(guān)鍵在于離心加速度而不是轉(zhuǎn)速，根據(jù)牛頓定律可知離心力加速度與轉(zhuǎn)速和有效半徑的有關(guān)的，因此對于不同有效半徑的離心機(jī)相同的轉(zhuǎn)速其離心加速度是不同的，轉(zhuǎn)速的調(diào)節(jié)要因離心機(jī)而異，但很遺憾，日常工作中忽視了這個問題。第十二頁，共27頁。二、假陰性擴(kuò)增有效半徑短的離心加速度就小，同樣的時間離心效果就差可能造成分離不出導(dǎo)致假陰性。同時由于高速離心機(jī)高速旋轉(zhuǎn)與空氣摩擦?xí)a(chǎn)生大量的熱，因此對于稱能上幾萬轉(zhuǎn)/分而沒有抽真空的離心機(jī)實(shí)際轉(zhuǎn)速本人持懷疑態(tài)度。4.操作者失誤操作問題造成標(biāo)本DNA沒有暴露出來，致使擴(kuò)增無法進(jìn)行，這是造成假陰性的又一主要因素。第十三頁，共27頁。第十四頁，共27頁。三、實(shí)驗(yàn)室污染PCR實(shí)驗(yàn)室污染主要是下面四個方面(一)標(biāo)本間交叉污染：標(biāo)本污染主要有收集標(biāo)本的容器被污染，或標(biāo)本放置時，由于密封不嚴(yán)溢于容器外，或容器外粘有標(biāo)本而造成相互間交叉污染；標(biāo)本核酸模板在提取過程中，由于吸樣槍污染導(dǎo)致標(biāo)本間污染;有些微生物標(biāo)本尤其是病毒可隨氣溶膠或形成氣溶膠而擴(kuò)散，導(dǎo)致彼此間的污染。

(二)PCR試劑的污染：主要是由于在PCR試劑配制過程中，由于加樣槍、容器、雙蒸水及其它溶液被PCR核酸模板污染。

第十五頁，共27頁。三、實(shí)驗(yàn)室污染(三)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物污染：這是PCR反應(yīng)中最主要最常見的污染問題。因?yàn)镻CR產(chǎn)物拷貝量大(一般為1013拷貝/ml)，遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于PCR檢測數(shù)個拷貝的極限，所以極微量的PCR產(chǎn)物污染，就可造成假陽就可形成假陽性。

還有一種容易忽視，最可能造成PCR產(chǎn)物污染的形式是氣溶膠污染；在空氣與液體面摩擦?xí)r就可形成氣溶膠，在操作時比較劇烈地?fù)u動反應(yīng)管，開蓋時、吸樣時及污染進(jìn)樣槍的反復(fù)吸樣都可形成氣溶膠而污染。據(jù)計(jì)算一個氣溶膠顆?？珊?8000拷貝，因而由其造成的污染是一個值得特別重視的問題。

第十六頁，共27頁。三、實(shí)驗(yàn)室污染(四)實(shí)驗(yàn)室中克隆質(zhì)粒的污染：在分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室及某些用克隆質(zhì)粒做陽性對照的檢驗(yàn)室，這個問題也比較常見，因?yàn)榭寺≠|(zhì)粒在單位容積內(nèi)含量相當(dāng)高，另外在純化過程中需用較多的用具及試劑，而且在活細(xì)胞內(nèi)的質(zhì)粒，由于活細(xì)胞的生長繁殖的簡便性及具有很強(qiáng)的生命力，其污染可能性也很大。

第十七頁，共27頁。三、實(shí)驗(yàn)室污染污染的監(jiān)測

一個好的實(shí)驗(yàn)室，要時刻注意污染的監(jiān)測，考慮有無污染是什么原因造成的污染，以便采取措施，防止和消除污染。在進(jìn)行監(jiān)測前用消毒液擦拭工作臺面，打開所有的紫外燈照射一天，將所使用微量進(jìn)樣器、離心管、槍頭、手套、記號筆、記錄本等都更換掉，再將HBV標(biāo)本進(jìn)行檢測。

對照試驗(yàn)

1、陽性對照：在建立PCR反應(yīng)實(shí)驗(yàn)室及一般的檢驗(yàn)單位都應(yīng)設(shè)有PCR陽性對照，它是PCR反應(yīng)是否成功、產(chǎn)物條帶位置及大小是否合乎理論要求的一個重要的參考標(biāo)志。

第十八頁，共27頁。三、實(shí)驗(yàn)室污染陽性對照要選擇擴(kuò)增度中等、重復(fù)性好，經(jīng)各種鑒定是該產(chǎn)物的標(biāo)本，如以重組質(zhì)粒為陽性對照，其含量宜低不宜高(100個拷貝以下)。但陽性對照尤其是重組質(zhì)粒及高濃度陽性標(biāo)本，其對檢測或擴(kuò)增樣品污染的可能性很大.因而當(dāng)某一PCR試劑經(jīng)自己使用穩(wěn)定，檢驗(yàn)人員心中有數(shù)時，在以后的實(shí)驗(yàn)中可免設(shè)陽性對照。

2、陰性對照：每次PCR實(shí)驗(yàn)務(wù)必做陰性對照。它包括①標(biāo)本對照：被檢的標(biāo)本是血清就用鑒定后的正常血清作對照；被檢的標(biāo)本是組織細(xì)胞就用相應(yīng)的組織細(xì)胞作對照。②試劑對照：在PCR試劑中不加模板DNA或RNA，進(jìn)行PCR擴(kuò)增，以監(jiān)測試劑是否污染。

第十九頁，共27頁。三、實(shí)驗(yàn)室污染3、重復(fù)性試驗(yàn)

4、選擇不同區(qū)域的引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增

第二十頁，共27頁。三、實(shí)驗(yàn)室污染防止污染的方法

進(jìn)行PCR操作時，操作人員應(yīng)該嚴(yán)格遵守一些操作規(guī)程，最大程度地降低可能出現(xiàn)的PCR污染或杜絕污染的出現(xiàn)。

(一)劃分操作區(qū)：目前，普通PCR尚不能做到單人單管，實(shí)現(xiàn)完全閉管操作，但無論是否能夠達(dá)到單人單管，均要求實(shí)驗(yàn)操作在三個不同的區(qū)域內(nèi)進(jìn)行，PCR的前處理和后處理要在不同的隔離區(qū)內(nèi)進(jìn)行：

1.試劑準(zhǔn)備區(qū)。

2．標(biāo)本制備區(qū)。

第二十一頁，共27頁。三、實(shí)驗(yàn)室污染3.PCR擴(kuò)增區(qū)及分析區(qū)。

各工作區(qū)要有一定的隔離，操作器材專用，要有一定的方向性。如：試劑準(zhǔn)備→標(biāo)準(zhǔn)制備→PCR擴(kuò)增區(qū)及分析區(qū)。

切記：任何一間的產(chǎn)物及器材不要拿到其他兩個工作區(qū)。

(二)分裝試劑：PCR擴(kuò)增所需要的試劑均應(yīng)在生物安全柜、裝有紫外燈的超凈工作臺或負(fù)壓工作臺配制和分裝。所有的加樣器和吸頭需固定放于其中，不能用來吸取擴(kuò)增后的DNA和其他來源的DNA：

第二十二頁，共27頁。三、實(shí)驗(yàn)室污染(三)實(shí)驗(yàn)操作注意事項(xiàng)

盡管擴(kuò)增序列的殘留污染大部分是假陽性反應(yīng)的原因，樣品間的交叉污染也是原因之一。因此，不僅要在進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng)是謹(jǐn)慎認(rèn)真，在樣品的收集、抽提和擴(kuò)增的所有環(huán)節(jié)都應(yīng)該注意：

1.戴一次性手套，若不小心濺上反應(yīng)液，立即更換手套；2.使用一次性吸頭，嚴(yán)禁與PCR產(chǎn)物分析室的吸頭混用，吸頭不要長時間暴露于空氣中，避免氣溶膠的污染；

第二十三頁，共27頁。三、實(shí)驗(yàn)室污染3.避免反應(yīng)液飛濺，打開反應(yīng)管時為避免此種情況，開蓋前稍離心收集液體于管底。若不小心濺到手套或桌面上，應(yīng)立刻更換手套并用稀酸擦拭桌面；4.操作多份樣品時，制備反應(yīng)混合液，先將dNTP、緩沖液、引物和酶混合好，然后分裝，這樣即可以減少操作，避免污染，又可以增加反應(yīng)的精確度；

5.最后加入反應(yīng)模板，加入后蓋緊反應(yīng)管；6.操作時設(shè)立陰陽性對照和空白對照，即可驗(yàn)證PCR反應(yīng)的可靠性，又可以協(xié)助判斷擴(kuò)增系統(tǒng)的可信性；

第二十四頁，共27頁。