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文檔簡介
ICS67.120.30
CCSB50
37
山東省地方標準
DB37/T4686—2023
海洋生物體中金剛烷胺的測定液相色譜-
串聯(lián)質譜法
Determinationofamantadineinmarineorganisms—Liquidchromatographytandem
massspectrometry
2023-12-28發(fā)布2024-01-28實施
山東省市場監(jiān)督管理局發(fā)布
DB37/T4686—2023
目次
前言.................................................................................II
1范圍...............................................................................1
2規(guī)范性引用文件.....................................................................1
3術語和定義.........................................................................1
4原理...............................................................................1
5試劑及配制.........................................................................1
6儀器和設備.........................................................................2
7樣品...............................................................................2
8分析步驟...........................................................................3
9結果計算與表示.....................................................................4
10準確度............................................................................5
11質量控制和質量保證................................................................5
12廢物處置..........................................................................5
附錄A(資料性)色譜圖...............................................................6
附錄B(資料性)方法的準確度.........................................................8
I
DB37/T4686—2023
前言
本文件按照GB/T1.1—2020《標準化工作導則第1部分:標準化文件的結構和起草規(guī)則》的規(guī)定
起草。
請注意本文件的某些內容可能涉及專利。本文件的發(fā)布機構不承擔識別專利的責任。
本文件由山東省海洋局提出并組織實施。
本文件由山東省海洋標準化技術委員會歸口。
II
DB37/T4686—2023
海洋生物體中金剛烷胺的測定液相色譜-串聯(lián)質譜法
警告:實驗中使用的標準溶液、有機溶劑等均具有一定的毒性和揮發(fā)性,實驗人員應避免與其直接
接觸,樣品前處理過程應在通風櫥中進行。
1范圍
本文件描述了海洋生物體中金剛烷胺液的液相色譜-串聯(lián)質譜測定方法,包括原理、試劑及配制、
儀器和設備、樣品、分析步驟、結果計算與表示、準確度、質量控制和質量保證、廢物處置等。
本文件適用于海洋生物體魚、蝦、海參、海帶和貝類中金剛烷胺的測定。當稱樣量為3.00g時,金
剛烷胺檢出限為0.5μg/kg,測定下限為1.0μg/kg。
2規(guī)范性引用文件
下列文件中的內容通過文中的規(guī)范性引用而構成本文件必不可少的條款。其中,注日期的引用文件,
僅該日期對應的版本適用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)適用于本
文件。
GB/T6682分析實驗室用水規(guī)格和試驗方法
3術語和定義
本文件沒有需要界定的術語和定義。
4原理
海洋生物體樣品用1%乙酸乙腈提取后,經固相萃取柱凈化,液相色譜-串聯(lián)質譜儀測定,內標法定
量。
5試劑及配制
5.1實驗室用水:GB/T6682,一級。
5.2甲醇(CH3OH):色譜純。
5.3甲酸(HCOOH):色譜純。
5.4乙腈(CH3CN):色譜純。
5.5氨水(NH4OH):優(yōu)級純。
5.6乙酸(CH3COOH):優(yōu)級純。
5.71%乙酸乙腈溶液(體積分數(shù))。
取1mL乙酸,用乙腈定容至100mL。
5.85%氨水甲醇溶液(體積分數(shù))。
取5mL氨水,用甲醇定容至100mL。
1
DB37/T4686—2023
5.90.1%甲酸溶液(體積分數(shù))。
取0.10mL甲酸,用水定容至100mL。
5.100.1%甲酸乙腈定容液(體積分數(shù))。
將1mL甲酸與300mL乙腈,加入到700mL水中。
5.11金剛烷胺標準品:CAS號768-94-5,純度大于99.0%。
5.12D15-金剛烷胺內標溶液:CAS號33830-10-3,1mg/mL。
5.13金剛烷胺標準貯備液。
稱取金剛烷胺0.0100g,用乙腈溶解,并定容至10mL,配制成1.0mg/mL標準貯備液,-20℃下避
光保存,有效期為90d。
5.14金剛烷胺標準工作液。
移取100μL金剛烷胺標準貯備液(5.13),用乙腈溶解,并定容至100mL,配制成1.0μg/mL標準工
作液,4℃下避光保存,有效期為30d。
5.15D15-金剛烷胺內標標準中間液。
移取100μLD15-金剛烷胺內標溶液(5.12),用乙腈溶解,并定容至100mL,配制成1.0μg/mL內
標標準中間液,4℃下避光保存,有效期為30d。
5.16D15-金剛烷胺內標標準工作液。
移取1mLD15-金剛烷胺內標標準中間液(5.15),用乙腈定容至10mL,配制成100μg/L內標標準
工作液,4℃下避光保存,有效期為7d。
6儀器和設備
6.1液相色譜-串聯(lián)質譜儀:配電噴霧電離源(ESI源)。
6.2天平:感量分別為0.01g和0.0001g。
6.3均質機。
6.4高速離心機:10000r/min。
6.5超聲波清洗器。
6.6渦旋混合器。
6.7固相萃取裝置。
6.8固相萃取柱:MCX(混合型陽離子固相萃取柱),60mg/3mL,或相當者。
6.9氮吹儀。
6.10聚丙烯離心管:50mL。
6.11濾膜:聚偏氟乙烯濾膜,孔徑為0.22μm。
7樣品
7.1制備
魚,去鱗、去皮,沿脊背取肌肉,將鱗、皮單獨收集;蝦,去頭、去殼、去腸腺,取肌肉部分;海
參、海帶、貝等取可食部分,樣品充分攪碎、混勻。如不能及時檢測,-18℃以下冷凍保存?zhèn)溆?。取適
量新鮮或解凍的空白或供試組織,絞碎,并使均質。
7.2提取
2
DB37/T4686—2023
稱取3.00(±0.01)g樣品至50mL離心管中,加入100μL內標標準工作液(5.16)和15mL1%乙酸
乙腈溶液(5.7),渦旋30s,超聲提取15min,8000r/min離心10min,待凈化。
7.3凈化
MCX固相萃取柱經6mL甲醇(5.2)和6mL水(5.1)活化后,取5mL上清液移入固相萃取柱,3mL水
(5.1)淋洗,6mL5%氨水甲醇溶液(5.8)洗脫,全程控制流速為2mL/min~3mL/min。收集洗脫液,
用氮吹儀于40℃下吹至近干,用定容液(5.10)定容至1mL,過濾膜,供液相色譜-串聯(lián)質譜儀分析。
7.4空白試樣的制備
除不加試料外,均按上述測定步驟進行。
8分析步驟
8.1液相色譜質譜條件
8.1.1液相色譜條件:
a)色譜柱:C18(100mm×2.1mm,1.8μm),或相當者;
b)色譜柱溫度:40℃;
c)流速:0.25mL/min;
d)進樣量:10μL;
e)流動相:A為乙腈(5.4);B為0.1%甲酸溶液(5.9);流動相梯度洗脫程序見表1。
表1流動相梯度洗脫程序表
時間流速流動相A流動相B
minmL/min%%
0.000.25595
0.500.25595
0.600.25955
5.000.25955
5.100.25595
7.000.25595
8.1.2質譜條件:
a)離子化模式:ESI+;
b)電離電壓:2.50kV;
c)錐孔電壓:25V;
d)離子源溫度:140℃;
e)錐孔反吹氣流速:50L/h;
f)脫溶劑氣溫度:400℃;
g)脫溶劑氣流速:700L/h;
h)氬氣流速:0.12mL/min;
i)測定方式:選擇反應監(jiān)測模式(SRM),定量離子和定性離子參數(shù)見表2。
3
DB37/T4686—2023
表2待測物定量離子和定性離子參數(shù)
母離子子離子錐孔電壓碰撞能量
化合物
m/zm/zVeV
932530
金剛烷胺152
135a2517
金剛烷胺內標167141a2517
a表示定量離子
8.2標準曲線的建立
移取金剛烷胺標準工作液(5.14)10μL、20μL、40μL、50μL、100μL于進樣瓶中,分別加入100μL
內標標準工作液(5.16),用定容液(5.10)定容至1mL,使金剛烷胺濃度分別為10.0μg/L、20.0μg/L、
40.0μg/L、50.0μg/L、100μg/L,現(xiàn)用現(xiàn)配。以各標準工作液金剛烷胺峰面積與內標峰面積的比值為
縱坐標,以各標準工作液濃度為橫坐標,繪制標準曲線。
8.3試樣測定
按照儀器條件(8.1),分別測定金剛烷胺標準工作液(8.2)、試樣(7.3)、空白試樣(7.4),
金剛烷胺標準溶液、空白樣品和加標樣品的色譜圖參見附錄A。
9結果計算與表示
9.1定性分析
在同樣測試條件下,陽性樣品的保留時間與標準工作液中待測物的保留時間偏差在±2.5%以內,在
扣除背景后的樣品質譜圖中,所選擇的特征離子均應出現(xiàn),且檢測到的離子的相對豐度,應與濃度相當
的校正標準溶液相對豐度一致。定性確證時相對離子豐度的允許偏差應符合表3的要求。
表3定性確證時相對離子豐度的允許偏差
相對離子豐度允許偏差
%%
>50±20
>20~50±25
>10~20±30
≤10±50
9.2定量分析
按8.1設定儀器條件,待儀器穩(wěn)定后,根據(jù)表2中的定量離子分別對金剛烷胺和內標進行測定,記錄
保留時間和峰面積,以峰面積比按內標法進行單點或多點校準定量,標準工作液和試樣溶液中待測物的
響應值均應在儀器檢測線性范圍內。
9.3結果計算
樣品中金剛烷胺的含量按公式(1)計算:
(???)?
?=0·········································································(1)
?
4
DB37/T4686—2023
式中:
x——樣品中金剛烷胺的含量,單位為微克每千克(μg/kg);
c——試樣溶液中金剛烷胺的濃度,單位為微克每升(μg/L);
c0——空白試樣溶液中金剛烷胺的濃度,單位為微克每升(μg/L);
V——試樣溶液的定容體積,單位為毫升(mL);
m——樣品的濕重,單位為克(g)。
9.4結果表示
計算結果扣除空白值,測定結果用兩次平行測定的算術平均值表示,保留三位有效數(shù)字。
10準確度
10.1精密度
本方法批內相對標準偏差和批間相對標準偏差均小于15%。詳見表B.1。
10.2正確度
金剛烷胺在添加濃度1.0μg/kg~100μg/kg時,回收率為70%~120%。詳見表B.2。
11質量控制和質量保證
11.1空白試驗
每20個樣品或每批次(少于20個樣品/批)應至少分析1個空白試驗,空白中金剛烷胺的濃度應低于
方法檢出限。
11.2校準
標準曲線建立應與批樣測定同時進行;每20個樣品或每批次(少于20個樣品/批)應至少分析1個中
間點濃度的標準溶液,測定值與該點初始濃度的相對誤差應≤30%;金剛烷胺標準曲線的相關系數(shù)r一般
應大于0.99。
11.3平行樣
每20個樣品或每批次(少于20個樣品/批)應至少測定一個平行樣。平行樣測定結果的相對偏差應
在±10以內。
11.4基體加標
每20個樣品或每批次(少于20個樣品/批)應至少測定一個基體加標樣品,金剛烷胺回收率應在70%~
120%之間,見附錄B。
12廢物處置
實驗過程中產生的廢液和廢物應分類收集,集中保管,委托有資質的單位進行處理。
5
DB37/T4686—2023
附錄A
(資料性)
色譜圖
圖A.1、圖A.2、圖A.3給出了金剛烷胺標準溶液色譜圖、空白樣品色譜圖和加標樣品色譜圖。
RT:0.00-7.02
2.93NL:1.88E4
100
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134.999-135.001]
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20
104.945.09
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0.060.410.710.871.181.281.491.792.122.242.342.733.113.303.503.934.11
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149.999-150.001]
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Time(min)
圖A.1金剛烷胺標準溶液色譜圖(10.0μg/L)
RT:0.00-7.02
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4.84TICF:+cESISRM
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圖A.2空白樣品色譜圖
6
DB37/T4686—2023
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149.99
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