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文檔簡(jiǎn)介
ICS65.020.20
B05
DB13
河北省地方標(biāo)準(zhǔn)
DB13/T1767—2013
蘋果品種DNA指紋鑒定
2013-09-05發(fā)布2013-09-30實(shí)施
河北省質(zhì)量技術(shù)監(jiān)督局發(fā)布
DB13/T1767—2013
前言
本標(biāo)準(zhǔn)按照GB/T1.1—2009給出的規(guī)則起草。
本標(biāo)準(zhǔn)由河北省林業(yè)廳提出。
本標(biāo)準(zhǔn)起草單位:河北農(nóng)業(yè)大學(xué)。
本標(biāo)準(zhǔn)主要起草人:劉興菊、楊敏生、梁海永、張軍、左立輝、李雪雁、姚偉明、楊立華、韓志校
魏姍姍、甄紅偉、王瑞霞。
I
DB13/T1767—2013
蘋果品種DNA指紋鑒定
1范圍
本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了蘋果品種DNA指紋鑒定的方法及判定標(biāo)準(zhǔn)。
本標(biāo)準(zhǔn)適用于蘋果品種鑒定及河北省蘋果品種DNA指紋庫的建立。
2原理
不同蘋果品種由于遺傳組成不同,基因組DNA中簡(jiǎn)單重復(fù)序列的重復(fù)次數(shù)有差異,這種差異可經(jīng)過
PCR擴(kuò)增、電泳分離、顯色程序繪制的DNA指紋圖譜加以區(qū)分,從而對(duì)不同品種進(jìn)行鑒定。從蘋果幼苗、
葉片等組織中提取總DNA,利用SSR引物對(duì)位于不同染色體上的SSR位點(diǎn)進(jìn)行PCR擴(kuò)增,不同堿基長(zhǎng)度的PCR
擴(kuò)增產(chǎn)物通過聚丙烯酰胺凝膠電泳分離(或通過DNA分析儀、測(cè)序儀進(jìn)行分離),并通過染色顯示DNA
指紋譜帶類型。
3儀器設(shè)備及試劑
蘋果品種DNA指紋鑒定所需儀器設(shè)備及試劑名單見附錄A。
4溶液配制
蘋果品種DNA指紋鑒定相關(guān)溶液配制方法見附錄B。
5鑒定方法
5.1樣品準(zhǔn)備
5.1.1取樣量
每份送檢樣品至少檢測(cè)3個(gè)個(gè)體,每個(gè)個(gè)體至少1g,對(duì)一致性差的樣品應(yīng)至少檢測(cè)5個(gè)個(gè)體。
5.1.2品種比較方式
a)成對(duì)品種的比較
送檢樣品提供兩份,一份為待檢品種,一份為對(duì)照品種。將待檢品種與對(duì)照品種直接進(jìn)行成對(duì)比
較。雜交后代需提供母本與父本的樣品。
b)品種與DNA指紋庫入庫品種的比較
送檢樣品可提供一份。將待檢樣品與DNA指紋庫所有入庫品種的指紋進(jìn)行比較,篩選出指紋最相
似或相同的品種作為待檢品種的近似品種,然后將待檢品種與近似品種直接進(jìn)行成對(duì)比較。
5.2DNA提取
1
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5.2.1宜采用改良的CTAB法。取200mg干凈葉片置入1.5mL離心管中,加入500μLDNA提取液研磨碎,
并加1mL洗滌液及30μLβ-巰基乙醇,充分搖勻后置冰上5min,于4℃,12000g離心8min后,洗滌
一次,棄上清,再加700μL預(yù)熱的CTAB緩沖液,充分混勻后,于65℃水浴60min,其間顛倒幾次。然
后于室溫冷卻4min~5min,取上清,加等體積的酚/氯仿/異戊醇(25∶24∶1),混勻抽提,室溫靜置5min,
于室溫12000g離心8min。上清液移于一新的1.5mL離心管中,加入等體積氯仿∶異戊醇(24∶1),充
分混勻后室溫靜置5min,室溫12000g離心8min,取上清,重復(fù)加等體積氯仿∶異戊醇(24∶1)抽提,
取上清加入等體積氯仿抽提一次,取上清液,加入2倍體積的無水乙醇(-20℃),輕輕混勻后在-20℃沉
淀30分鐘以上,12000g離心10min,將所得沉淀風(fēng)干后溶于100μL水中,置4℃冰箱備用。
5.2.2其它保證DNA質(zhì)量的方法也可采用,應(yīng)用前需要通過微量紫外分光光度計(jì)進(jìn)行DNA質(zhì)量與濃度
檢測(cè)。
5.3PCR擴(kuò)增
5.3.1SSR擴(kuò)增
基本核心引物名單見附錄C。
5.3.2反應(yīng)體系
反應(yīng)液體積為20μL,組分配制應(yīng)符合表1的規(guī)定(或按比例減少至10μL)。
表1PCR反應(yīng)體系
反應(yīng)組分原濃度終濃度反應(yīng)體積μL
ddH2O13.35
10×buffer10×1×2
MgCl225mmol/L2.5mmol/L2
dNTP2.5mmol/L0.15mmol/L1.2
Taq酶5U/μL1U0.2
引物20μmol/L0.25μmol/L0.25
DNA30~50ng/μL1.5~2.5ng/μL1
5.3.3反應(yīng)程序
94℃預(yù)變性5min;94℃變性50s,55℃退火50s,72℃延伸50s,共30個(gè)循環(huán);72℃延伸7min,4℃保
存。
5.4變性聚丙烯酰胺凝膠電泳
5.4.1清洗玻璃板
用自來水沾洗滌靈將玻璃板反復(fù)擦洗干凈,雙蒸水擦洗兩遍,95%乙醇擦洗兩遍,干燥。在長(zhǎng)板上
涂上0.5mL親和硅烷工作液,帶凹槽的短板上涂0.5mL剝離硅烷工作液。操作過程中防止兩塊玻璃板互
相污染。
5.4.2組裝電泳板
待玻璃板徹底干燥后組裝電泳板,并用水平儀調(diào)平。
2
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5.4.3灌膠
在100mL4.5%PAGE膠中加入TEMED和25%過硫酸銨各100μL,迅速混勻后灌膠。待膠流動(dòng)到下部,
在上部輕輕插入梳子,使其聚合至少lh以上。灌膠過程中防止出現(xiàn)氣泡。
5.4.4預(yù)電泳
在正極槽中加入1×TBE緩沖液600mL,在負(fù)極槽(上槽)加入預(yù)熱至65℃的I×TBE緩沖液600mL,拔
出梳子。90W恒功率預(yù)電泳10min~20min。
5.4.5變性
在20μLPCR樣品中加入4μL6×加樣緩沖液,混勻后,在PCR儀上運(yùn)行變性程序:95℃變性5min,4℃
冷卻10min以上。
5.4.6電泳
用移液器吹吸加樣槽,清除氣泡和雜質(zhì),插入樣品梳子。每一個(gè)加樣孔點(diǎn)入5μL樣品。80W恒功率電
泳至上部的指示帶(二甲苯青)到達(dá)膠板的中部(約40min)。電泳結(jié)束后,小心分開兩塊玻璃板,凝膠會(huì)
緊貼在長(zhǎng)板上。
5.5銀染
5.5.1銀染流程圖
固定液中輕輕晃動(dòng)3min
雙蒸水快速漂洗1次,不超過10s
銀染染色液中染色約10~15min
雙蒸水快速漂洗1次,不超過10s
顯影液中輕輕晃動(dòng)至帶紋出現(xiàn)
雙蒸水快速漂洗1次,不超過30s
定影固定液中定影5min
雙蒸水漂洗1min
6結(jié)果及判定
3
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6.1數(shù)據(jù)表示
以多數(shù)個(gè)體具有的譜帶即主帶作為品種的特征譜帶,當(dāng)無法判斷主帶時(shí),給出各種譜帶所占的比率。
譜帶記錄方式:每個(gè)核心引物的所有譜帶按擴(kuò)增片段從大到小的順序編號(hào),用二位代碼描述(依次為01、
02..….),并確定代表每條譜帶的一套標(biāo)準(zhǔn)品種。每個(gè)待測(cè)品種在每個(gè)引物位點(diǎn)上的譜帶號(hào)用四位代
碼描述,參照標(biāo)準(zhǔn)品種確定待測(cè)品種的譜帶號(hào)。
示例1:在一個(gè)核心引物上僅有一條譜帶02,品種在該引物位點(diǎn)的譜帶代碼為0202;
示例2:在一個(gè)核心引物上有兩條譜帶02和03,品種在該引物位點(diǎn)的譜帶代碼為0203。
6.2檢測(cè)及判定標(biāo)準(zhǔn)
6.2.1先用17對(duì)基本核心引物檢測(cè),獲得待測(cè)品種在17個(gè)引物位點(diǎn)的DNA指紋譜帶數(shù)據(jù),利用17
個(gè)位點(diǎn)的DNA指紋譜帶數(shù)據(jù)進(jìn)行品種間比較。親緣關(guān)系較近難以區(qū)分時(shí)可附加17個(gè)參考位點(diǎn)。
a)品種間差異位點(diǎn)數(shù)≥2,判定為不同品種;
b)品種間差異位點(diǎn)數(shù)=1,判定為相近品種;
c)品種間差異位點(diǎn)數(shù)=0,判定為相同或極近似品種。
6.2.2對(duì)b和c的情況,必要時(shí)繼續(xù)用17對(duì)擴(kuò)展核心引物進(jìn)行檢測(cè),利用34個(gè)位點(diǎn)的DNA指紋譜帶
數(shù)據(jù)進(jìn)行品種間比較:
a)品種間差異位點(diǎn)數(shù)≥2,判定為不同品種;
b)品種間差異位點(diǎn)數(shù)=1,判定為相近品種;
c)品種間差異位點(diǎn)數(shù)=0,判定為相同或極近似品種。
6.3鑒定報(bào)告
鑒定報(bào)告書格式見附錄D。
4
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AA
附錄A
(規(guī)范性附錄)
儀器設(shè)備及試劑
A.1儀器設(shè)備
A.1.1PCR核酸擴(kuò)增儀:規(guī)格為96孔;
A.1.2序列分析電泳槽;
A.1.3高壓電泳儀:規(guī)格為3000V,400mA,400W;
A.1.4水平搖床;
A.1.5膠片觀察燈;
A.1.6電子天平;
A.1.7微量加樣器;
A.1.8磁力攪拌器;
A.1.9高速離心機(jī)
A.1.10微量紫外分光光度計(jì)
A.1.11高壓滅菌鍋;
A.1.12pH酸度計(jì)。
A.2試劑
所用試劑均為分析純,所用水均為去離子水。
A.2.1乙二胺四乙酸二鈉;
A.2.2Tris堿;
A.2.3鹽酸;
A.2.4氫氧化鈉;
A.2.510×Buffe:緩沖液;
A.2.6四種脫氧核苷酸:4×dNTP;
A.2.7TaqDNA聚合酶;
A.2.8SSR引物;
A.2.9礦物油;
5
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A.2.10去離子甲酞胺;
A.2.11澳酚藍(lán);
A.2.12二甲苯青FF;
A.2.13甲叉雙丙烯酰胺;
A.2.14丙烯酰胺;
A.2.15硼酸;
A.2.16脲素;
A.2.17親和硅烷:97%;
A.2.18剝離硅烷:2%二甲基二氯硅烷;
A.2.19無水乙醇;
A.2.20四甲基乙二胺(TEMED);
A.2.21過硫酸銨;
A.2.22冰醋酸;
A.2.23硝酸銀;
A.2.24甲醛溶液:37%。
6
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BB
附錄B
(規(guī)范性附錄)
溶液配制
B.1DNA提取溶液的配制
B.1.10.5mol/LEDTA溶液
186.lgNa2EDTA·2H2O溶于800mL水中,用固體NaOH調(diào)pH至8.0,定容至1000mL,高壓滅
菌。
B.1.21mol/LTris-HCI溶液
60.55gTris堿溶于適量水中,加HCI調(diào)pH至8.0定容至500mL,高壓滅菌。
B.1.3洗滌液
100mMTris-HC,lpH8.0;50mMEDTA;1MNaC;l1%β-巰基乙醇;2%PVP
B.1.4CTAB提取緩沖液
100mmol/LTris-HCl(pH8.0),20mmol/LEDTA-Na2,1.4mol/LNaCl,2%CTAB,使用前加入0.1%
(V/V)的β-巰基乙醇(注:先將除巰基乙醇之外的藥品配好,高壓蒸汽滅菌之后加入巰基乙醇)
B.1.5酚/氯仿/異戊醇
25:24:1。
B.1.6TE緩沖液1
lmol/LTris-HC15mL,0.5mol/LEDTA1mL,加HCI調(diào)pH至8.0,定容至500mL。
B.1.7TE緩沖液2
lmol/LTris-HC15rnL,0.5mol/LEDTA1mL,0.5mol/LHCI100mL,定容至500mL。
B.1.85mol/LNaCI溶液
146g固體NaCI溶于水中,加水定容至500mL。
B.2PCR擴(kuò)增溶液的配制
B.2.1dNTP
用超純水分別配制A、G、C、T終濃度100mmol/L的儲(chǔ)存液。各取20μL混合,用超純720μL定
容至終濃度2.5mmol/Leach的工作液。也可直接購買濃度2.5mmol/Leach的工作液。
B.2.2SSR引物
用超純水分別配制前引物和后引物終濃度均40μmol/L的儲(chǔ)存液,等體積混合成20μmo1/L的工作
7
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液。注:干粉配制前應(yīng)首先快速離心。
B.2.36×加樣緩沖液
去離子甲酞胺49mL,0.5mol/L的EDTA溶液(pH8.0)1mL,澳酚蘭0.125g,二甲苯青0.125g。
B.3變性聚丙烯酞胺凝膠電泳溶液的配制
B.3.140%PAGE膠
丙烯酞胺190g和甲叉雙丙烯酚胺10g,定容至500mL。
B.3.24.5%PAGE膠
尿素450g,10×TBE緩沖液100mL,40%PAGE膠112.5mL,定容至1000mL。
B.3.3Bind緩沖液
49.75mL無水乙醇和250μL冰醋酸,加水定容至50mL。
B.3.4親和硅烷工作液
在1mLBind緩沖液中加入5μLBind原液,混勻。
B.3.5剝離硅烷工作液
2%二甲基二氯硅烷。
B.3.625%過硫酸銨溶液
0.25g過硫酸銨溶于1mL超純水中。
B.3.710×TBE緩沖液
Tris堿108g,硼酸55g,0.5mol/LEDTA溶液37mL,定容至1000mL。
B.3.81×TBE緩沖液
10×TBE緩沖液500mL,加水定容至5000mL。
B.4銀染溶液的配制
B.4.1固定液
100mL冰醋酸,加水定容至1000mL。
B.4.2染色液
2g硝酸銀,加水定容至1000mL。
B.4.3顯影液
1000mL蒸餾水中加入30g氧氧化鈉和5mL甲醛。
8
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CC
附錄C
(規(guī)范性附錄)
基本核心引物名單
標(biāo)記位點(diǎn)染色推薦正向引物序列(5’-3’)反向引物序列(5’-3’)
CH03g121IGCGCTGAAAAAGGTCAGTTTCAAGGATGCGCATGTATTTG
CH02b102ICAAGGAAATCATCAAAGATTCAAGCAAGTGGCTTCGGATAGTTG
CH03g073IAATAAGCATTCAAAGCAATCCGTTTTTCCAAATCGAGTTTCGTT
CH02h11a4ICGTGGCATGCCTATCATTTGCTGTTTGAACCGCTTCCTTC
CH03a095IGCCAGGTGTGACTCCTTCTCCTGCAGCTGCTGAAACTGG
CH03d126IGCCCAGAAGCAATAAGTAAACCATTGCTCCATGCATAAAGGG
CH02a047IGAAACAGGCGCCATTATTTGAAAGGAGACGTTGCAAGTGG
CH01c068ITTCCCCATCATCGATCTCTCAAACTGAAGCCATGAGGGC
CH01f03b9IGAGAAGCAAATGCAAAACCCCTCCCCGGCTCCTATTCTAC
CH02a0810IGAGGAGCTGAAGCAGCAGAGATGCCAACAAAAGCATAGCC
CH02d0811ITCCAAAATGGCGTACCTCTCGCAGACACTCACTCACTATCTCTC
CH01F0212IACCACATTAGAGCAGTTGAGGCTGGTTTGTTTTCCTCCAGC
CH05c0413ICCTTCGTTATCTTCCTTGCATTGAGCTTAAGAATAAGAGAAGGGG
CH03d0814ICATCAGTCTCTTGCACTGGAAATAGGGCTAGGGAGAGATGATGA
CH02c0915ITTATGTACCAACTTTGCTAACCTCAGAAGCAGCAGAGGAGGATG
CH05a0416IGAAGCGAATTTTGCACGAATGCTTTTGTTTCATTGAATCCCC
CH01h0117IGAAAGACTTGCAGTGGGAGCGGAGTGGGTTTGAGAAGGTT
Hi02c071IIAGAGCTACGGGGATCCAAATGTTTAAGCATCCCGATTGAAAGG
CH02c02a2IICTTCAAGTTCAGCATCAAGACAATAGGGCACACTTGCTGGTC
MS14h033IICGCTCACCTCGTAGACGTATGCAATGGCTAAGCATA
CH04e024IIGGCGATGACTACCAGGAAAAATGTAGCCAAGCCAGCGTAT
CH05f065IITTAGATCCGGTCACTCTCCACTTGGAGGAAGACGAAGAAGAAAG
CH03d076IICAAATCAATGCAAAACTGTCAGGCTTCTGGCCATGATTTTA
CH04e057IIAGGCTAACAGAAATGTGGTTTGATGGCTCCTATTGCCATCAT
CH01f098IIATGTACATCAAAGTGTGGATTGAATTCCAATTTCAGAACAGG
CH01h029IIAGAGCTTCGAGCTTCGTTTGATCTTTTGGTGCTCCCACAC
CH02B03b10IIATAAGGATACAAAAACCCTACACAGGACATGTTTGGTTGAAAACTTG
CH04g0711IICCCTAACCTCAATCCCCAATATGAGGCAGGTGAAGAAGGA
CH04d0212IICGTACGCTGCTTCTTTTGCTCTATCCACCACCCGTCAACT
CH03a0813IITTGGTTTGCTAGGAAAAGAAGGAAGTTTATCGGGCCTACACG
CH03g0414IIATGTCCAATGTAGACACGCAACTTGAAGATGGCCTAACCTTGTT
CH02d1115IIAGCGTCCAGAGCAACAGCAACAAAAGCAGATCCGTTGC
CH04f10
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