凝膠柱色譜分離蛋白質(zhì)_第1頁(yè)
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文檔簡(jiǎn)介

1、凝膠柱色譜分離蛋白質(zhì)第1頁(yè),共12頁(yè),2022年,5月20日,9點(diǎn)1分,星期一【目的要求】 1、熟悉凝膠色譜分離的基本原理; 2、掌握凝膠柱色譜填充物的裝柱、平衡、加樣、洗脫等基本操作技術(shù)。第2頁(yè),共12頁(yè),2022年,5月20日,9點(diǎn)1分,星期一【實(shí)驗(yàn)原理】凝膠色譜是利用某些凝膠對(duì)于不同組分因分子大小不同而阻滯作用不同的差異而進(jìn)行分離的技術(shù)。當(dāng)溶液在色譜柱內(nèi)流過時(shí),各種物質(zhì)分子在柱內(nèi)同時(shí)進(jìn)行向下的移動(dòng)和不定向的分子擴(kuò)散運(yùn)動(dòng)。大分子物質(zhì)由于分子直徑大,難于進(jìn)入凝膠顆粒的微孔,只能在凝膠顆粒的間隙中隨流動(dòng)相快速向下移動(dòng);而小分子物質(zhì)能夠擴(kuò)散進(jìn)入凝膠顆粒的微孔中,因此在流動(dòng)過程中不斷地進(jìn)出于膠粒的

2、微孔,這樣就使小分子物質(zhì)向下移動(dòng)的速度落后于大分子物質(zhì),從而使溶液中的各組分按分子量從大到小的順序先后流出色譜柱,達(dá)到分離純化的目的。第3頁(yè),共12頁(yè),2022年,5月20日,9點(diǎn)1分,星期一【實(shí)驗(yàn)用品】 1、材料葡聚糖凝膠Sephadex G-100、藍(lán)色葡聚糖2000、溶菌酶 2、試劑(1)藍(lán)色葡聚糖-2000(2mg/mL)和溶菌酶(6mg/mL)組成的混合液(2)乙酸緩沖液 3、器具色譜柱、鐵架臺(tái)、試管、紫外分光光度計(jì)或紫外檢測(cè)儀、電爐、容量瓶、燒杯、三角瓶、滴管、移液管、玻棒。第4頁(yè),共12頁(yè),2022年,5月20日,9點(diǎn)1分,星期一【實(shí)驗(yàn)過程】凝膠溶脹:根據(jù)預(yù)計(jì)的總床體積和所用干膠

3、的床體積,稱出所需干凝膠放入大三角瓶或燒杯中,加入過量的緩沖溶液或去離子水,浸泡24h以上或沸水浴中煮沸溶脹23h,冷卻至室溫。用傾瀉法將不易沉下的較細(xì)的顆粒傾去。第5頁(yè),共12頁(yè),2022年,5月20日,9點(diǎn)1分,星期一1、凝膠柱的制備。裝柱:升高或關(guān)閉色譜柱的出水口,在柱內(nèi)先注入約1/3柱高的緩沖液。輕輕攪動(dòng)三角瓶中的凝膠(切勿攪動(dòng)太快,以免空氣進(jìn)入),使之形成均一的凝膠漿,并立即緩慢并連續(xù)不斷地沿玻棒倒入柱中,讓其沉降約12cm高時(shí),然后降低或打開柱的出水口,讓緩沖液慢慢地流出。隨著下面水的流出,上面陸續(xù)不斷地添加凝膠,直至凝膠完全沉降至所需的柱高為止,然后在凝膠表面上放一片濾紙,以防將

4、來在加樣時(shí)凝膠被沖起。柱要一次裝完,不能間歇,并始終保持凝膠上端有一段液體。層析分離系統(tǒng)第6頁(yè),共12頁(yè),2022年,5月20日,9點(diǎn)1分,星期一2、平衡:用乙酸緩沖液流動(dòng)平衡凝膠色譜柱。開始時(shí),流速控制在低于0.5mL/min,在平衡過程中逐漸增加到色譜時(shí)的速度即34mL/5min,一般用約23倍總床體積的緩沖溶液流過柱即可平衡。第7頁(yè),共12頁(yè),2022年,5月20日,9點(diǎn)1分,星期一3、加樣:吸去柱床表面以上的溶液,面上留下一些液體從柱的出口流出。等到凝膠床面上的液體正好流干時(shí),小心地用滴管將約1mL藍(lán)色葡聚糖和溶菌酶的混合液加到凝膠床面上。先使滴管尖端接觸離柱床表面約1cm高處的內(nèi)壁,

5、隨加隨沿柱內(nèi)壁轉(zhuǎn)動(dòng)一周,然后迅速移至中央,使樣品盡可能快地覆蓋住全膠面,打開下口,以便使樣品均勻地滲入柱內(nèi),當(dāng)樣品液下降至與膠面相平(膠面必須覆蓋一層薄薄的溶液)時(shí),關(guān)閉下口。待其正好流干時(shí)再加少量緩沖溶液,這樣滴入洗脫液時(shí)不會(huì)沖動(dòng)凝膠床面。加樣前,如果膠面不平整,可用玻棒將膠表層輕輕攪起,待其自然沉降至平整后,方可加樣,加樣過程中注意不要破壞膠面的平整。第8頁(yè),共12頁(yè),2022年,5月20日,9點(diǎn)1分,星期一4、洗脫:用乙酸緩沖液進(jìn)行洗脫。流速控制在0.25mL/min。每15分鐘收集一管,然后用紫外分光光度計(jì)于280nm處測(cè)定每管吸光度(A280)。洗脫過程中要注意觀察藍(lán)色區(qū)帶向下移動(dòng)的

6、情況,如前沿平齊,區(qū)帶均勻,說明柱是均勻的,可以使用。如不均一,必須重新裝柱。以管號(hào)(或洗脫體積)為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo)作出洗脫曲線,并分辨藍(lán)色葡聚糖-2000和溶菌酶的洗脫峰或洗脫位置。第9頁(yè),共12頁(yè),2022年,5月20日,9點(diǎn)1分,星期一【注意事項(xiàng)】1、色譜柱大小可根據(jù)實(shí)際需要選擇,一般來說,細(xì)長(zhǎng)的柱分離效果較好。若樣品量多,最好選用內(nèi)徑較粗的柱,但此時(shí)分離效果稍差。柱管內(nèi)徑太小時(shí),會(huì)發(fā)生管壁效應(yīng),即柱管中心部分的組分移動(dòng)慢,而管壁周圍的移動(dòng)快。柱越長(zhǎng),分離效果越好,但柱過長(zhǎng),實(shí)驗(yàn)時(shí)間長(zhǎng),樣品稀釋度大,分離效果反而不好。2、裝好的色譜柱凝膠要均勻,不能有斷層或紋路或氣泡,將柱管對(duì)著光照方向觀察,若色譜柱床不均勻,必須重新裝柱。第10頁(yè),共12頁(yè),2022年,5月20日,9點(diǎn)1分,星期一3、各接頭不能漏氣,連接用的小乳膠管不要有破損,否則造成漏氣、漏液。操作過程中,色譜柱內(nèi)液面不斷下降,則表示整個(gè)系統(tǒng)有漏氣之處,應(yīng)仔細(xì)檢查并加以糾正。4、始終保持柱內(nèi)液面高于凝膠表面,否則水分揮發(fā),凝膠變干。也要防止液體流干,使凝膠混入大量氣泡,影響液體在柱內(nèi)的流動(dòng),導(dǎo)致分離效果變差,不得不重新裝柱。5、洗脫用的液體應(yīng)與凝膠溶脹所用液體相同,否則,由于更換溶劑引起凝膠容積變化,從而影響分離效果第11頁(yè),共12頁(yè),2022年,5月

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