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質(zhì)量保證痰涂片檢查(一)結核病細菌實驗室布局原則1、結核病細菌學檢查要有獨立的實驗室不得與其他實驗室混用,最好為P3級實驗2、培養(yǎng)基制備、洗刷等相對潔凈的操作與涂片鏡檢、培養(yǎng)前處理、藥敏試驗等污染操作要有獨立分開的場所,最好分別在專用的房間進行3、基層只從事涂片鏡檢的實驗室只擁有一間獨立房舍的情況下,相對潔凈區(qū)(鏡檢區(qū)、登記區(qū))與污染區(qū)(涂片、染色區(qū))要有明顯區(qū)分。)痰標本的收集和運送干酪痰、血痰或粘液痰為合格標本,量應為3-5毫升難以獲得合格標本時,也應進行細菌學檢查,但應注明標本性狀,以供分析結果時參考收集標本的容器應用國家參比室推薦的標準痰瓶,或采用直徑4厘米、高2厘米的廣口塑料(或蠟紙)的或密閉容器?！鋈萜魃蠎⒚髋c檢驗單一致的病人姓名、編號及日期需送上一級實驗室檢查的痰標本應置4℃冰箱保存,外送前認真核對檢驗單與痰瓶上標注,放專用的冰盒內(nèi)運送,或用紙袋塑料袋封扎牢后順序放入包裝盒,盒外注明請勿倒置標志(三)痰涂片操作流程及顯微鏡檢報告方式直接涂片法操作流程:■1、涂痰膜(大小10×20m),自然干燥2、復紅加熱初染5分鐘■3、流水沖洗4、鹽酸酒精脫色3分鐘(必要時重復脫色,但不要過度)■5、流水沖洗6、美蘭復染30秒7、流水沖洗■8、自然干燥,鏡檢■顯微鏡檢報告方式:0條/300視野:萋-尼氏抗酸桿菌陰性1-8條/300視野:實報菌數(shù)并重檢3-9條/100視野:萋-尼氏抗酸桿菌陽性(+)1-9條/10視野:萋-尼氏抗酸桿菌陽性(2+)■1-9條/1視野:萋-尼氏抗酸桿菌陽性(3+)≥10條/1視野:萋-尼氏抗酸桿菌陽性(4+)(四)細菌學常規(guī)檢查的注意事項選擇痰標本中膿性、血樣、干酪樣的部分涂片陽性率較高;張玻片只涂一份標本,玻片一次性使用,防止交叉污染;打開痰盒、涂抹痰膜、燒灼接種環(huán)時容易產(chǎn)

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