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文檔簡介
藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)
基因檢測技術(shù)指南(試行)
前言
藥物體內(nèi)代謝、轉(zhuǎn)運(yùn)及藥物作用靶點(diǎn)基因的遺傳變異及其表達(dá)水平的變化可通過影
響藥物的體內(nèi)濃度和敏感性,導(dǎo)致藥物反應(yīng)性個(gè)體差異。近年來隨著人類基因組學(xué)的發(fā)
展,藥物基因組學(xué)領(lǐng)域得到了迅猛發(fā)展,越來越多的藥物基因組生物標(biāo)記物及其檢測方
法相繼涌現(xiàn)。藥物基因組學(xué)已成為指導(dǎo)臨床個(gè)體化用藥、評(píng)估嚴(yán)重藥物不良反應(yīng)發(fā)生風(fēng)
險(xiǎn)、指導(dǎo)新藥研發(fā)和評(píng)價(jià)新藥的重要工具,部分上市的新藥僅限于特定基因型的適應(yīng)癥
患者。美國FDA已批準(zhǔn)在140余種藥物的藥品標(biāo)簽中增加藥物基因組信息,涉及的藥
物基因組生物標(biāo)記物42個(gè)。此外,部分行業(yè)指南也將部分非FDA批準(zhǔn)的生物標(biāo)記物及
其特性(如MGMT基因甲基化)的檢測列入疾病的治療指南。藥物反應(yīng)相關(guān)基因及其
表達(dá)產(chǎn)物的分子檢測是實(shí)施個(gè)體化藥物治療的前提。
藥理學(xué)與遺傳學(xué)結(jié)合的關(guān)鍵環(huán)節(jié)包括藥物代謝動(dòng)力學(xué)(phairnacokinetics,PK)和
藥物效應(yīng)動(dòng)力學(xué)(pharmacodynamics,PD)兩方面c藥物代謝動(dòng)力學(xué)主要是定量研究藥
物在生物體內(nèi)吸收、分布、代謝和排泄規(guī)律,側(cè)重于闡明藥物的體內(nèi)過程;藥物效應(yīng)動(dòng)
力學(xué)主要研究藥物對(duì)機(jī)體的作用、作用規(guī)律及作用機(jī)制,其內(nèi)容包括藥物與作用靶位之
間相互作用所引起的生化、生理學(xué)和形態(tài)學(xué)變化,側(cè)重于解釋藥物如何與作用靶點(diǎn)發(fā)生
作用。對(duì)藥物代謝酶和藥物靶點(diǎn)基因進(jìn)行檢測可指導(dǎo)臨床針對(duì)特定的患者選擇合適的藥
物和給藥劑量,實(shí)現(xiàn)個(gè)體化用藥,從而提高藥物治療的有效性和安全性,防止嚴(yán)重藥物
不良反應(yīng)的發(fā)生。目前美國FDA和我國食品藥品監(jiān)督管理局(CFDA)都已批準(zhǔn)了一系
列的個(gè)體化用藥基因診斷試劑盒。這些試劑盒基本都是對(duì)人DNA樣本進(jìn)行基因檢測。
而在基因表達(dá)的檢測方面,由于RNA的穩(wěn)定性差,樣本處置不當(dāng)可導(dǎo)致目標(biāo)RNA降解,
使得檢測結(jié)果不準(zhǔn)確,影響臨床判斷。因此,RNA檢測試劑的研發(fā)相對(duì)滯后。
本指南旨在為個(gè)體化用藥基因檢測提供一致性的方法。本指南中所指的藥物基因組
生物標(biāo)志物不包括影響抗感染藥物反應(yīng)性的微生物基因組變異。此外,腫瘤靶向治療藥
物個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測指南見《腫瘤個(gè)體化治疔的檢測技術(shù)指南》。
本指南起草單位:中南大學(xué)湘雅醫(yī)院臨床藥理研究所、中南大學(xué)臨床藥理研究所、
中南大學(xué)湘雅醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)所,并經(jīng)國家衛(wèi)生計(jì)生委個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測技術(shù)專家委員會(huì)、中國
藥理學(xué)會(huì)藥物基因組學(xué)專業(yè)委員會(huì)、中國藥理學(xué)會(huì)臨床藥理學(xué)專業(yè)委員會(huì)和中華醫(yī)學(xué)會(huì)
檢驗(yàn)分會(huì)組織修訂。
本指南起草人:周宏潮、陳小平、張偉、劉昭前、尹繼業(yè)、李智、李曦、唐潔、俞
竟、彭靜波、曹杉、成瑜C
目錄
1.本指南適用范圍.........................................................................1
2.藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測概述.................................................1
3,標(biāo)準(zhǔn)術(shù)語...............................................................................1
4.藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測分析前質(zhì)量保證......................................6
4.1采樣前準(zhǔn)備....................................................................6
4.2標(biāo)本采集......................................................................7
4.3標(biāo)本的運(yùn)輸與保存.............................................................9
4.4標(biāo)本的接收與保存.............................................................9
5.藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測分析中質(zhì)量保證.....................................10
5.1實(shí)驗(yàn)室設(shè)計(jì)要求...............................................................10
5.2檢測方法.....................................................................11
5.3儀器設(shè)備的使用、維護(hù)與保養(yǎng)..................................................17
5.4人員培訓(xùn).....................................................................17
5.5檢測體系的性能驗(yàn)證..........................................................18
6.藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測分析后質(zhì)量保證.....................................19
6.1.檢測報(bào)告、解釋及報(bào)告發(fā)放....................................................19
6.2檢測后樣本的保存和處理.............................................................23
7.藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測的質(zhì)量保證.........................................23
7.1檢測確認(rèn)和特征描述..........................................................24
7.2可操作性的SOP編寫.........................................................24
7.3質(zhì)控品與室內(nèi)質(zhì)控............................................................24
7.4室內(nèi)質(zhì)控的評(píng)價(jià)..............................................................26
7.5室間質(zhì)量評(píng)價(jià)................................................................26
8.制度..................................................................................27
附錄A.基因及突變名稱、核酸信息.......................................................28
附錄B.縮略語...........................................................................30
附錄C.藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測項(xiàng)目列舉................................33
附錄D.藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因相關(guān)的藥物........................................50
參考文獻(xiàn)...............................................................................52
1.本指南適用范圍
本指南由國家衛(wèi)生計(jì)生委個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測技術(shù)專家委員會(huì)制定,旨在為臨慶檢驗(yàn)實(shí)
驗(yàn)室進(jìn)行藥物代謝酣和藥物靶點(diǎn)基因的檢測提供指導(dǎo)。本指南的主要適用對(duì)象為開展個(gè)
體化醫(yī)學(xué)分子檢測的醫(yī)療機(jī)構(gòu)臨床實(shí)驗(yàn)室。
2.藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測概述
藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因特性的變化可通過影響藥物的體內(nèi)濃度和靶組織
對(duì)藥物的敏感性,導(dǎo)致藥物反應(yīng)性(包括藥物的療效和不良反應(yīng)發(fā)生)個(gè)體差異。藥物
基因組生物標(biāo)志物的檢測是臨床實(shí)施個(gè)體化藥物治療的前提。從藥物代謝酶和藥物作用
靶點(diǎn)基因出發(fā),對(duì)個(gè)體化用藥基因檢測的適應(yīng)人群、標(biāo)本采集、運(yùn)輸、接收、處理、樣
本檢測、結(jié)果報(bào)告與解釋、室內(nèi)室間質(zhì)控需遵循的基本原則,以及可能出現(xiàn)的問題與應(yīng)
對(duì)措施等方面的內(nèi)容進(jìn)行介紹,可為基于藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)的基因檢測提供標(biāo)
準(zhǔn)化指導(dǎo)c
3.標(biāo)準(zhǔn)術(shù)語
3.1Ct值(thresholdcycle)
熒光定量PCR反應(yīng)的熒光強(qiáng)度超過設(shè)定的閾值所需的循環(huán)數(shù)。Ct值位于PCR反應(yīng)
的指數(shù)期初期,與標(biāo)本中待測核酸分子的原始拷貝數(shù)呈反比,即樣本中原始拷貝數(shù)越多,
熒光強(qiáng)度升高的就越快,相應(yīng)的Ct值就越小。
3.2RNA(ribonucleicacid)
核糖核酸,與DNA類似的單鏈核酸,由核糖核甘酸按照一定的順序排列而成,含
尿嗑咤而不含胸腺喑呢,存在于細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核中,在細(xì)胞蛋白質(zhì)的合成及其他化學(xué)活
動(dòng)中起重要的作用。RNA分子包含信使RNA(mRNA)、轉(zhuǎn)運(yùn)RNA(tRNA)、核糖體
RNA(rRNA)和其他小RNA等多種類型,分別行使不同的功能。各種RNA的混合物
秘;為總RNAo
3.3rs和ss體系SNP
由美國國立生物技術(shù)信息中心(nationalcenterforbiotechnologyinformation,NCBI)
建立、dbSNP數(shù)據(jù)庫制定的SNP命名體系,rs體系的SNP代表己獲得官方認(rèn)可和推薦
的參考SNP(referenceSNP),ss體系的SNP代表用戶新遞交但尚未得到認(rèn)可的SNP
(submittedSNP)。
3.4TE緩沖液
TE緩沖液由Tris和EDTA配置而成,土要用于溶解DNA,能穩(wěn)定儲(chǔ)存DNA。
3.5錯(cuò)配修復(fù)(mismatchrepair*MMR)
在含有錯(cuò)配堿基的DNA分子中,使正常核甘酸序列恢復(fù)的核甘酸修復(fù)方式,這種
類型的修復(fù)可糾正DNA雙螺旋上錯(cuò)配的堿基對(duì),還可修復(fù)因復(fù)制打滑而產(chǎn)生的核甘酸
插入或缺失。MMR的過程需要區(qū)分母鏈和子鏈,做到只切除子鏈上錯(cuò)誤的核甘酸,而
不會(huì)切除母鏈上的正常核昔酸。修復(fù)的過程是:識(shí)別出正確的鏈,切除掉不正確的部分,
然后通過DNA聚合酶III和DNA連接酶的作用,合成正確配對(duì)的雙鏈DNAo
3.6單核昔酸多態(tài)性(SNP)
是指由單個(gè)核甘酸一A、T、C或G的改變而引起的DNA序列的改變,造成包括人
類在內(nèi)的物種之間染色體基因組的多樣性。
3.7等位基因
一般是指位于一對(duì)同源染色體相同位置上控制某一性狀的不同形態(tài)的一對(duì)基因。若
成對(duì)的等位基因中兩個(gè)成員完全相同,則該個(gè)體對(duì)此性狀來說是純合子C若兩個(gè)等位基
因各不相同,則該個(gè)體對(duì)該性狀來說是雜合子。
3.85-氟尿嘴咤
一種喀咤類似物,作為胸甘酸合成醐抑制劑,阻斷DNA復(fù)制的必需原料胸腺喘咤
的合成。主要用于腫瘤的治療)
3.9光密度
表示紫外光照射下被檢測物吸收的光密度,260nm波長下的吸光值(DNA吸收峰
值)可用來表示DNA的相對(duì)濃度,具體換算公式為:DNA濃度(ng/川)=OD26OX50X
稀釋倍數(shù)。
3.10基因芯片
將大量(通常每平方厘米點(diǎn)陣密度高于400)的核酸探針分子固定于支持物上并與
標(biāo)記的樣品分子進(jìn)行雜交,通過檢測每個(gè)探針分子的雜交信號(hào)強(qiáng)度進(jìn)而獲取樣品分子的
數(shù)量和序列信息。
3.11基因
是遺傳物質(zhì)的最小功能單位,是指具有一定生物學(xué)意義的一段DNAo
3.12基因型
又稱遺傳型,是某一生物個(gè)體全部基因組合的總稱,它反映生物體的遺傳構(gòu)成,即
從雙親獲得的全部基因的總和。據(jù)估計(jì),人類的結(jié)構(gòu)基因有3萬個(gè)。因此,整個(gè)生物的
2
基因型是無法表示的,遺傳學(xué)中具體使用的基因型,往往是指某一性狀的基因型。
3.13基因組生物標(biāo)志物
是一種可用于指示正常生物學(xué)過程、病理過程和/或?qū)χ委熂捌渌深A(yù)措施反應(yīng)性的
可測量的DNA或RNA特性。其中DNA的特性可包括但不僅限于單核甘酸多態(tài)性、短
序列重復(fù)次數(shù)多態(tài)性、單倍型、DNA修飾如甲基化、核甘酸的插入/缺失、拷貝數(shù)變異
及細(xì)胞遺傳學(xué)重排如轉(zhuǎn)位、重復(fù)、缺失或反轉(zhuǎn)。RNA特性包括但不僅限于RNA序列、
RNA表達(dá)水平、RNA處理過程(如剪接和編輯)、微小RNA。
3?14檢出限(limitofdetection,LOD)
標(biāo)本中一種分析物可被檢出的最低的含量,這一分析物含量可能不是量化的具體數(shù)
值。
3.15健康保險(xiǎn)隱私及責(zé)任法案(healthinsuranceportabilityandaccountabilityact,
HIPAA)
美國政府1996年頒布的、醫(yī)療服務(wù)行業(yè)必須遵守的法案。該法案制定了一系列安
全標(biāo)準(zhǔn),就保健計(jì)劃、供應(yīng)商及結(jié)算中心如何以電子文件的形式傳送、訪問和存儲(chǔ)受保
護(hù)的健康信息做出了詳細(xì)的規(guī)定。
3.16聚合酶鏈反應(yīng)(polymerasechainreaction,PCR)
簡稱PCR技術(shù),是一-種體外擴(kuò)增特異DNA片段的技術(shù),應(yīng)用該技術(shù)可以在短時(shí)間
內(nèi)將一個(gè)或幾個(gè)DNA拷貝擴(kuò)增到百萬數(shù)量級(jí)。
3?17臨床檢驗(yàn)實(shí)驗(yàn)室
是指對(duì)取自人體的各種標(biāo)本進(jìn)行生物學(xué)、微生物學(xué)、免疫學(xué)、化學(xué)、血液免疫學(xué)、
血液學(xué)、生物物理學(xué)、細(xì)胞學(xué)等檢驗(yàn),并為臨床提供醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)服務(wù)的實(shí)驗(yàn)室。
3?18靈敏度(sensitivity)
測量系統(tǒng)的示值變化除以相應(yīng)的被測量值變化所得的商。
3.19室內(nèi)質(zhì)量控制
實(shí)驗(yàn)室內(nèi)進(jìn)行的用于滿足質(zhì)量要求的操作技術(shù)和活動(dòng)。
3.20室間質(zhì)量評(píng)價(jià)
室間質(zhì)量評(píng)價(jià)是多家實(shí)驗(yàn)室分析同一標(biāo)本,并由外部獨(dú)立機(jī)構(gòu)收集和反饋實(shí)驗(yàn)室上
報(bào)結(jié)果、評(píng)價(jià)實(shí)驗(yàn)室操作的過程,也稱能力驗(yàn)證。
3.21脫氧核糖核酸(DNA)
3
核酸的一種,是由特殊序列的脫氧核糖核甘酸單元(dNTP)構(gòu)成的多聚核甘酸,
起攜帶遺傳信息的功能。DNA為一種雙鏈分子,通過核甘酸堿基對(duì)間的氫鍵維系。DNA
包含的4種核甘酸包括:腺喋吟(A)、鳥喋吟(G)、胸腺喀咤(T)和胞喀咤(G)o人
類存在兩種類型的DNA:來自染色體的基因組DNA(gDNA)和線粒體DNA。
3.22能力驗(yàn)證(proficiencytestingsPT)
多個(gè)標(biāo)本周期性地發(fā)送到實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行分析和(或)鑒定,將每一實(shí)驗(yàn)室的結(jié)果與同
組的其他實(shí)驗(yàn)室的結(jié)果或指定值進(jìn)行比較,并將比較結(jié)果報(bào)告給參與的實(shí)驗(yàn)室,同室間
質(zhì)量評(píng)價(jià)。
3.23生物標(biāo)記物(biomarker)
患者標(biāo)本中所含有的一種特殊的分析物質(zhì)(如DNA、RNA、蛋白質(zhì)等),可用于疾
病診斷、判斷疾病分期或評(píng)價(jià)新藥或新療法在目標(biāo)人群中的安全性和有效性。
3.24微五星
指基因上含有重復(fù)的DNA短小序列或單核甘酸的區(qū)域,每個(gè)單元長度在1-6bp之
間。根據(jù)重復(fù)單元的構(gòu)成與分布,微衛(wèi)星DNA序列可分為3種類型:單一型、復(fù)合型
和間斷型。
3.25微衛(wèi)星不穩(wěn)定性(niicrosatelliteinstabilityyMSI)
是指腫瘤基因組特定的微衛(wèi)星位點(diǎn)與其對(duì)應(yīng)的非腫瘤基因組相比,因重復(fù)單位的缺
失或插入而造成的結(jié)構(gòu)性等位基因的大小發(fā)生改變,出現(xiàn)新的微衛(wèi)星等位基因現(xiàn)象。
3.26線性
在已知的范圍內(nèi),某檢測提供的結(jié)果能夠直接與標(biāo)本的濃度(或量值)成匕例關(guān)系
的能力。
3.27相對(duì)定量
通過標(biāo)準(zhǔn)曲線法和CT值比較法測定目的基因的相對(duì)表達(dá)量,以比較兩個(gè)或多個(gè)樣
本中目的基因的表達(dá)差異°該方法通常用來檢測基因表達(dá)量是上調(diào)還是下降。
3.28遺傳藥理學(xué)
研究機(jī)體的基因多態(tài)性對(duì)藥物反應(yīng)個(gè)體差異的影響,是藥物基因組學(xué)的重要內(nèi)容。
3.29藥物不良反應(yīng)(adversedrugreaction,ADR)
是指上市的合格藥品在常規(guī)用法、用量情況下出現(xiàn)的,與用藥目的無關(guān),并給患者
帶來痛苦或危害的反應(yīng)。
4
3.30藥物的反應(yīng)性
包括藥物吸收和分布(即藥代動(dòng)力學(xué))、藥物效應(yīng)(如藥物效應(yīng)動(dòng)力學(xué))、藥物的療
效及藥物不良反應(yīng)。
3.31藥物基因組學(xué)
研究人類基因組信息與藥物反應(yīng)之間的關(guān)系,同時(shí)也可以發(fā)現(xiàn)藥物新靶點(diǎn)和提高臨
床試驗(yàn)的成功率。
3.32熒光定量PCR
通過應(yīng)用熒光染料或熒光標(biāo)記的特異性探針,對(duì)聚合酶鏈反應(yīng)產(chǎn)物進(jìn)行標(biāo)記跟蹤,
實(shí)時(shí)監(jiān)控反應(yīng)過程,結(jié)合相應(yīng)的軟件可以對(duì)熒光信號(hào)進(jìn)行分析,實(shí)現(xiàn)基因檢測的定性和
(或)定量分析。
3.33熒光原位雜交(FISH)
一種細(xì)胞遺傳學(xué)技術(shù),可以用來對(duì)核酸進(jìn)行檢測和定位.熒光標(biāo)記的核酸探針只與
具有高度相似性的核酸雜交,可用于染色體上基因的定位和定量。
334雜交
兩個(gè)以上的分子具有相近的化學(xué)結(jié)構(gòu)和性質(zhì)而在適宜的條件下形成雜交體,雜交體
中的分子不是來自一個(gè)二聚體分子。利用兩條不同來源的多核甘酸鏈之間的互補(bǔ)性而使
它們形成雜交體雙鏈被稱為核酸雜交。
3.35知情同意(informedconsent)
患者有權(quán)利知曉自己的病情,并可以對(duì)醫(yī)務(wù)人員所采取的治療措施和臨床檢測項(xiàng)目
有決定取舍的權(quán)利。
3.36控制品
僅用于質(zhì)量控制目的而不是用于校準(zhǔn)分析的標(biāo)本或溶液。
3.37準(zhǔn)確度(accuracy)
是測量結(jié)果中系統(tǒng)誤差與隨機(jī)誤差的綜合,表示測量結(jié)果與真值的一致程度。
3.38正確度(trucness)
無窮多次重復(fù)測量所得量值的平均值與一個(gè)參考量值間的一致程度。
3.39精密度(precision)
是指在一定條件下進(jìn)行多次測定時(shí),所得測定結(jié)果之間的符合程度,表示測量結(jié)果
中的隨機(jī)誤差大小的程度C
5
3.40特異性(specificity)
在出現(xiàn)干擾現(xiàn)象(影響量)時(shí),試驗(yàn)或檢測程序能夠正確地識(shí)別或定量確定某一實(shí)
體物質(zhì)的能力。
4.藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測分析前質(zhì)量保證
根據(jù)臨床檢驗(yàn)實(shí)驗(yàn)室的條件確定合適的分子診斷項(xiàng)目和恰當(dāng)?shù)臉颖咎幚硎谴_保核
酸定性定量檢測準(zhǔn)確性的關(guān)鍵。標(biāo)本在檢測前必須確保標(biāo)本的采集、運(yùn)輸和儲(chǔ)存符合要
求。標(biāo)本處置不當(dāng)可能引起核酸降解,導(dǎo)致定量檢測結(jié)果不準(zhǔn)確。
4.1采樣前準(zhǔn)備
1)分子診斷項(xiàng)目的申請與完善
藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測采樣前需填寫規(guī)范的申請單,申請單應(yīng)包含足
夠的信息,以識(shí)別患者和有資格開具申請單的臨床醫(yī)生。臨床醫(yī)生應(yīng)根據(jù)臨床需求合理
選擇分子診斷項(xiàng)目C個(gè)體化用藥領(lǐng)域發(fā)展迅速,臨檢實(shí)驗(yàn)室應(yīng)加強(qiáng)與臨床醫(yī)師的溝通,
及時(shí)指導(dǎo)臨床醫(yī)師選擇有價(jià)值的診斷項(xiàng)目,幫助醫(yī)師合理解釋檢驗(yàn)結(jié)果;不斷接受正確
合理的臨床醫(yī)師的反饋意見,及時(shí)了解臨床對(duì)個(gè)體化用藥分子檢測的需求,優(yōu)化項(xiàng)目目
錄。實(shí)驗(yàn)室應(yīng)根據(jù)其具體的工作流程,確定質(zhì)量監(jiān)測指標(biāo),如患者診斷信息完整率、適
當(dāng)臨床判斷率等,并定期對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行回顧性分析,定期對(duì)檢驗(yàn)申請進(jìn)行評(píng)審。
2)患者的正確識(shí)別及知情同意
患者的正確識(shí)別是確保獲得正確的臨床標(biāo)本的前提。收集標(biāo)本的容器上應(yīng)注明患者
的信息,通常應(yīng)包括姓名、送檢醫(yī)院及科室、住院號(hào)等。醫(yī)護(hù)人員在采樣前需首先核對(duì)
確定患者的身份,核實(shí)能標(biāo)示患者的信息。
標(biāo)本收集前應(yīng)向患者介紹個(gè)體化用藥基因檢測的意義,以得到患者的認(rèn)同,即知情
同意。采樣前需告知患者所檢測項(xiàng)目的目的、意義、基本過程、項(xiàng)目可能存在的不足如
檢測結(jié)果可能出現(xiàn)與臨床用藥實(shí)際不相符的情況、剩余核酸的去向(包括可能匿名用于
科研項(xiàng)目)及保存時(shí)間,保護(hù)受檢者的個(gè)人隱私(包括醫(yī)疔記錄和醫(yī)疔數(shù)據(jù))。對(duì)實(shí)施
有創(chuàng)檢查的分子診斷項(xiàng)目如穿刺取活檢組織,應(yīng)清楚地告知患者及家屬檢查可能遇到的
風(fēng)險(xiǎn)和緊急情況下的緊急預(yù)案。知情同意書是醫(yī)方履行如實(shí)告知義務(wù)的證據(jù),也是患者
行使選擇權(quán)的書面依據(jù)。
3)送檢單的填寫與項(xiàng)目的復(fù)核
標(biāo)本采集前需填寫送檢申請單,提供受檢者必需的信息。申請單需填寫的信息包括:
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申請的檢測項(xiàng)目、標(biāo)本編號(hào)、受檢者姓名、性別、出生日期、民族、采樣日期及時(shí)間、
標(biāo)本來源(組織類型)、相關(guān)臨床資料(如身高、體重、疾病診斷、疾病分型分期、合
并疾病、用藥情況)、采樣單位及科室名稱、送檢醫(yī)師姓名等信息。臨檢實(shí)驗(yàn)室應(yīng)有專
業(yè)人員根據(jù)信息采集表對(duì)檢測項(xiàng)目的合理性進(jìn)行審核,必要時(shí)可與送檢醫(yī)師討論。
4.2標(biāo)本采集
臨床分子診斷實(shí)驗(yàn)室應(yīng)對(duì)各種個(gè)體化用藥分子診斷臨床標(biāo)本的采集按檢測要求建
立SOP。標(biāo)本采集人員應(yīng)經(jīng)過系統(tǒng)的培訓(xùn)。采樣前應(yīng)對(duì)標(biāo)本采集容器進(jìn)行評(píng)價(jià),確保容
器本身不會(huì)干擾測定過程,并保存評(píng)估記錄。用于藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測
的標(biāo)本在采集時(shí)間上無特殊要求。靜脈血液采集之前應(yīng)按要求對(duì)預(yù)采血的部位徹底消
毒。腫瘤組織中DNA的分析利用常規(guī)診斷所用的標(biāo)本即可,但用于RNA分析的標(biāo)本需專
門采集,并準(zhǔn)備好液氮等速凍所需的材料及設(shè)備。標(biāo)本采集需要在密閉、一次性采樣系
統(tǒng)中完成,所用的材料如注射器、棉簽、拭子等應(yīng)為一次性使用,以防止污染「無論采
集哪種類型的標(biāo)本,采樣時(shí)都必須戴手套,以避免標(biāo)本中病原微生物感染和皮膚脫落細(xì)
胞對(duì)標(biāo)本的污染。
用于藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測的標(biāo)本類型有多種,包括全血標(biāo)本、組織
標(biāo)本(新鮮組織、冰凍組織、石蠟包埋組織、穿刺標(biāo)本)、口腔拭子、骨髓、胸腹水等。
樣本采樣原則見《個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測質(zhì)量保證指南》。
1)全血和骨髓標(biāo)本
全血標(biāo)本采集到含有適當(dāng)抗凝劑或添加物的采樣管中,添加物根據(jù)被測量(DNA、
細(xì)胞內(nèi)RNA)、檢測項(xiàng)目和采樣體積而定。因肝素可抑制PCR,全血或骨髓標(biāo)本一般用
EDTA或枸椽酸鹽抗凝。采樣前需在采樣管或注射器上標(biāo)注標(biāo)本信息。全血標(biāo)本采集外
周靜脈血2?3mL并置于采血管中,將采血管輕輕顛倒混勻數(shù)次以確保充分抗凝,避免
溶血。如檢測目的是細(xì)胞內(nèi)RNA,建議用含RNA穩(wěn)定劑的采樣管,或采樣后盡快將全
血或骨髓加入到RNA穩(wěn)定溶液中。采集干血斑標(biāo)本時(shí),可向無菌濾紙上滴加約5()RL
全血,根據(jù)需要可連續(xù)在數(shù)個(gè)印圈上滴加標(biāo)本,于室溫自然干燥至少4小時(shí)。干血斑標(biāo)
本采集時(shí)不要堆疊血斑,不與其他界面接觸,待血斑充分干燥后應(yīng)放入無菌袋口,避免
血斑之間的相互污染,同時(shí)加入干燥劑和濕度指示卡,密封包裝后運(yùn)送。
2)組織標(biāo)本
當(dāng)待檢測的組織與血液或口腔脫落細(xì)胞基因型不一致時(shí),或當(dāng)組織是待測核酸必須
7
的來源時(shí)(如檢測腫瘤組織中mRNA表達(dá)、融合基因、基因擴(kuò)增或缺失、甲基化水平、
微衛(wèi)星不穩(wěn)定等),需采集組織標(biāo)本進(jìn)行檢測。可用的組織標(biāo)本包括新鮮組織、活檢組
織、石蠟包埋組織和石蠟切片。
a)新鮮組織和活檢組織:采樣大小取決于組織類型。一般而言,無論是哪種組織類型,
在沒有大量脂肪細(xì)胞侵潤的情況下,10mg組織標(biāo)本可提取DNA或RNA10強(qiáng)。無
菌條件下取米粒大小手術(shù)或活檢組織(約25mg);腫瘤組織要求未壞死腫瘤組織比
例>70%。穿刺取實(shí)體腫瘤組織時(shí),取得的細(xì)胞數(shù)與穿刺針的粗細(xì)有關(guān),21G細(xì)針每
次獲得2100個(gè)細(xì)胞,19G細(xì)針每次獲得2150個(gè)細(xì)胞,支氣管活檢每次獲得2300個(gè)
細(xì)胞,CT介導(dǎo)的細(xì)針穿刺每次可獲得2500個(gè)細(xì)胞。通常檢測時(shí)標(biāo)本中腫瘤細(xì)胞的
數(shù)量需達(dá)到200?400個(gè)。在某些情況下,要求同時(shí)采集無病變的組織或外周血作為
對(duì)照(如微衛(wèi)星不穩(wěn)定性檢測)。組織塊取樣后的處理與保存見《個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測質(zhì)
量保證指南》c
b)石蠟包埋組織:推薦用10%中性緩沖甲醛溶液固定組織標(biāo)本,避免使用含重金屬離
子的固定液如Bouin液等。甲醛介導(dǎo)的DNA損傷在固定3小時(shí)后明顯發(fā)生,且時(shí)間
越長,DNA損傷越嚴(yán)重。因此推薦較小的組織(如活檢組織標(biāo)本)固定6?12小時(shí),
較大的組織(如手術(shù)切除標(biāo)本)固定6?48小時(shí)。甲醛固定的石蠟包埋組織不適于
用作RNA檢測,但在沒有其他標(biāo)本可供選擇時(shí),可考慮選擇沒有污染部分提取的
RNA用于檢測,待測RNA序列的長度最好vl30bp。組織標(biāo)本切片時(shí)應(yīng)特別注意避
免標(biāo)本間的交叉污染。
c)組織切片:用于DNA檢測時(shí),手術(shù)標(biāo)本需提供10厚的石蠟切片4?8張,面積
為成人拇指蓋大??;活檢穿刺標(biāo)本提供10Rm厚切片8?10張。所有切片均為白片。
腫瘤組織切片應(yīng)在HE染色后,經(jīng)病理醫(yī)師顯微鏡下觀察,以判斷是否含有腫瘤細(xì)
胞及腫瘤細(xì)胞的數(shù)量是否足夠(一般要求>50%)、壞死組織比例〈10%,并在對(duì)應(yīng)的
白片上畫出癌巢,對(duì)腫瘤細(xì)胞密集區(qū)域進(jìn)行標(biāo)注。DNA測序法要求腫瘤細(xì)胞至少占
組織細(xì)胞的50%。應(yīng)采取措施避免核酸交叉污染,制備不同患者病理切片標(biāo)本時(shí),
需更換新刀片。
3)口腔脫落細(xì)胞
口腔脫落細(xì)胞可同時(shí)用于DNA和RNA分析。常用的是口腔拭子,患者清水漱口后,
將消毒醫(yī)用棉簽伸進(jìn)口腔,在口腔內(nèi)側(cè)臉頰粘膜處左右反復(fù)擦拭20次左右,取出棉簽,
8
將棉簽置于干凈濾紙上陰干,每位受檢者至少采集棉簽3根。棉簽立即放入干凈封口塑
料袋內(nèi)封閉并放入紙質(zhì)信封,信封上應(yīng)做好詳細(xì)標(biāo)記。濾紙應(yīng)經(jīng)過滅菌處理,以防細(xì)菌
生長抑制核酸前的活性。漱口標(biāo)本也可作為口腔脫落細(xì)胞的來源。用于RNA分析的口
腔脫落細(xì)胞必須保存在RNA穩(wěn)定劑中。
4.3標(biāo)本的運(yùn)輸與保存
分子檢測人員應(yīng)熟知標(biāo)本運(yùn)送與保存的條件要求。標(biāo)本一經(jīng)采集,應(yīng)盡快送到臨檢
實(shí)驗(yàn)室。臨檢實(shí)驗(yàn)室應(yīng)制定樣本運(yùn)輸與保存的SOP。在運(yùn)送工具的選擇、標(biāo)本的運(yùn)送和
保存環(huán)境等方面應(yīng)嚴(yán)格按規(guī)定執(zhí)行。
運(yùn)送過程中應(yīng)防止盛放標(biāo)本的容器破碎和標(biāo)本丟失,注意標(biāo)本的隔離、封裝、容器
的密閉。標(biāo)本應(yīng)標(biāo)明采集的日期和時(shí)間、運(yùn)送時(shí)間、實(shí)驗(yàn)室接收時(shí)間、實(shí)驗(yàn)室接收時(shí)標(biāo)
木的溫度。運(yùn)送條件根據(jù)標(biāo)本類型和待測靶核酸的性質(zhì)而定。DNA分析應(yīng)在采集后8
小時(shí)內(nèi)送達(dá)實(shí)驗(yàn)室,否則需低溫運(yùn)送「當(dāng)待測核酸為RNA時(shí),能在10分鐘內(nèi)送達(dá)實(shí)驗(yàn)
室的標(biāo)本可室溫運(yùn)送;如果運(yùn)送時(shí)間較長,則應(yīng)將標(biāo)本置于干冰中,4小時(shí)內(nèi)送達(dá)實(shí)驗(yàn)
室;如果標(biāo)本中添加了RNA穩(wěn)定劑,則可室溫運(yùn)送或郵寄。標(biāo)本的長距離運(yùn)送應(yīng)符合
生物安全要求。標(biāo)本運(yùn)輸人員應(yīng)接受適用于標(biāo)本類型和遠(yuǎn)程運(yùn)輸?shù)陌踩桶b程序的培
訓(xùn)。
1)樣本運(yùn)輸中需注意的常規(guī)事項(xiàng)
a)放置血液標(biāo)本的采血管應(yīng)用石蠟?zāi)せ蛲该髂z帶封住管蓋,以防標(biāo)本運(yùn)送過程中采血
管管蓋脫離;標(biāo)本運(yùn)輸過程中選用輕質(zhì)且不易破碎的包裝物,并在包裝間隙用細(xì)碎
輕質(zhì)材料填充。
b)標(biāo)本運(yùn)輸和儲(chǔ)存過程中要避免將標(biāo)本暴露于可能導(dǎo)致核酸降解的環(huán)境中。
c)選擇可靠的快遞公司,樣本寄出后應(yīng)盡快告知檢測實(shí)驗(yàn)室快遞單號(hào)及相關(guān)信息,以
便對(duì)樣本運(yùn)輸情況進(jìn)行查詢和跟蹤。樣本要求在盡量短的時(shí)間內(nèi)送達(dá)臨檢實(shí)驗(yàn)室。
d)組織或血液標(biāo)本的采集過程中可能引起部分基因的表達(dá)上調(diào),定量分析基因表達(dá)時(shí)
需考慮到。
2)常見標(biāo)本運(yùn)輸和保存注意事項(xiàng)
見《個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測質(zhì)量保證指南》。
4.4標(biāo)本的接收與保存
1)標(biāo)本的驗(yàn)收、接受與拒收:臨床分子診斷實(shí)驗(yàn)室應(yīng)建立嚴(yán)格的標(biāo)本驗(yàn)收制度和
9
不合格標(biāo)本拒收制度,并安排專人接收標(biāo)本。標(biāo)本驗(yàn)收的內(nèi)容包括:檢查申請單的項(xiàng)目
填寫是否符合要求、標(biāo)識(shí)是否清楚;申請單有無醫(yī)師簽字;申請單所填項(xiàng)目是否與標(biāo)本
所示一致;申請單姓名、科別、門診或住院號(hào)與標(biāo)本的標(biāo)簽是否一致;是否簽署了知情
同意書;核實(shí)標(biāo)本采集及送檢之間的時(shí)間間隔(要求采樣1周以內(nèi)):檢查標(biāo)本的量和
外觀質(zhì)量,血液標(biāo)本的外觀質(zhì)量包括采血管是否密閉、有無溶血、管壁有無破損、標(biāo)本
是否有明顯的污染跡象(如開蓋),樣本接收時(shí)的大致溫度,樣本量是否符合要求。手
術(shù)切除組織標(biāo)本需做切片和HE染色,由有經(jīng)驗(yàn)的病理醫(yī)師評(píng)價(jià)腫瘤細(xì)胞的數(shù)量是否滿
足檢測需要。若送檢的為DNA樣本時(shí),要求體積大于20uL,OD260/280為1.6?1.8
之間,濃度大于50ng/UL,瓊脂糖電泳后電泳條帶大于50kb。拒收無標(biāo)簽、標(biāo)簽不清
晰、采血管破裂、已開蓋、運(yùn)送時(shí)間超過1周的樣本。拒收標(biāo)本時(shí)應(yīng)及時(shí)與送檢單位聯(lián)
系,要求重新采樣或重新送樣。每個(gè)接受的合格標(biāo)本均應(yīng)分配一個(gè)唯一的標(biāo)識(shí)碼。樣本
簽收時(shí)實(shí)行送樣人和收樣人雙簽名制度.標(biāo)本接收后,如不能立即檢測,必須按要求進(jìn)
行適當(dāng)?shù)谋4妗?/p>
2)樣本的登記與錄入:樣本簽收后立即登記樣本基本信息,收樣日期和時(shí)間,并
盡快將標(biāo)本信息錄入實(shí)驗(yàn)室(或醫(yī)院)信息系統(tǒng),后續(xù)的操作過程及樣本保存均用唯一
編號(hào)。
3)標(biāo)本預(yù)處理:部分送檢標(biāo)本到達(dá)實(shí)驗(yàn)室后需進(jìn)行預(yù)處理,如保存于濾紙上的血
液標(biāo)本需采用穿孔機(jī)將濾紙上的血斑取下裝入離心管中,用溶解液沖洗浸泡濾紙,搖床
上室溫孵育以除去濾紙上的血紅蛋白。為避免交叉污染,一個(gè)干血斑取材完畢后,穿孔
機(jī)需用70%的乙醇徹底清洗,PBS沖洗后,方可用于下一個(gè)干血斑的采集。甲醛固定石
蠟包埋組織在進(jìn)行核酸檢測前需進(jìn)行徹底的脫蠟,二甲苯是常用的高效脫蠟有機(jī)溶劑。
4)接收后標(biāo)本的保存見《個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測質(zhì)量保證指南》。
5.藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測分析中質(zhì)量保證
藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測必須有嚴(yán)格的質(zhì)量控制措施,涉及基因擴(kuò)增的
檢測項(xiàng)目必須在通過技術(shù)審核的臨床基因擴(kuò)增檢驗(yàn)實(shí)驗(yàn)室完成。分析中質(zhì)量控制的內(nèi)容
包括:實(shí)驗(yàn)室設(shè)計(jì)的要求;檢測程序的選擇、驗(yàn)證及確認(rèn);儀器設(shè)備的使用、維護(hù)與校
準(zhǔn);人員培訓(xùn);樣本的準(zhǔn)備(如核酸純化等);執(zhí)行檢測;確認(rèn)檢測結(jié)果的可靠性。實(shí)
驗(yàn)室應(yīng)制定室內(nèi)質(zhì)量控制操作程序(SOP)和參加室間質(zhì)評(píng)或?qū)嶒?yàn)室間比對(duì)。
5.1實(shí)驗(yàn)室設(shè)計(jì)要求
10
原則上按照《個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測質(zhì)量保證指南》的要求進(jìn)行。作為藥物代謝商和藥物
作用靶點(diǎn)基因檢測核心技術(shù)之一的PCR,要保證結(jié)果的可靠性和準(zhǔn)確性,首要措施就是
防“污染”。檢測實(shí)驗(yàn)室應(yīng)按《醫(yī)療機(jī)構(gòu)臨床基因擴(kuò)增實(shí)驗(yàn)室管理辦法》要求進(jìn)行設(shè)置,
并按要求嚴(yán)格控制空氣流向,避免PCR產(chǎn)物污染。
5.2檢測方法
藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測過程一般包括核酸提取和靶標(biāo)檢測兩階段。
5.2.1核酸提取方法
DNA提取用酚-氯仿提取法和鹽析法等均可。酚?氯仿法提取可能導(dǎo)致DNA樣品中
酚或氯仿殘留,從而抑制后續(xù)的PCR反應(yīng)。鹽析法提取可能存在蛋白質(zhì)及其他物質(zhì)的
殘余,DNA的純度和得率不高。DNA提取操作要求在生物安全柜內(nèi)進(jìn)行。DNA一般溶
解在pH為7.2的TE(Tris-EDTA)溶液中,可減少其降解。但如果DNA在提取后幾天
內(nèi)用于PCR,也可用雙蒸水進(jìn)行溶解.提取出的DNA要求OD260/2X0介于1.6~1木之
間,濃度大于50ng/^L。
DNA相對(duì)穩(wěn)定,在無DNA酶的情況下,常溫二純化的DNA在TE緩沖液中可放
置26周,2~8OC冰箱中可放置至少1年。為降低DNA酶的活性和確保DNA的完整性,
純化的DNA標(biāo)本的長期保存應(yīng)在Oy以下的環(huán)境中。建議將DNA原液保存于々(TC或
以下的環(huán)境中。DNA應(yīng)放置在帶蓋密封、疏水的塑料管中(帶橡膠墊片的塑料管更好,
可防蒸發(fā))。聚丙烯容易吸附DNA,尤其是在高離子強(qiáng)度的時(shí)候,聚乙烯結(jié)合DNA的
能力更強(qiáng)。DNA最適于俁存在異質(zhì)同晶聚合物材料的塑料管或經(jīng)特殊處理的聚丙烯塑
料管中。
RNA的提取用異硫氨酸呱結(jié)合酚-氯仿提取法,要求提取后的RNAOD260/280介于
1.8?2.1之間,瓊脂糖電泳28S:18s22。因RNA很容易被降解,純化好的RNA最好沉淀在
無水乙醇中或更低溫度下保存。RNA需儲(chǔ)存在滅菌、疏水、并用焦碳酸二乙酯
(DEPC)滅活了RNA酶的塑料管中,操作過程需帶手套。盡量將RNA溶解于偏堿性(pH
7.1?7.5)溶液中。純化的RNA在首次凍融后3小時(shí)內(nèi)保持穩(wěn)定,但反復(fù)凍融可導(dǎo)致降解。
5.2.2藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測的檢測方法
用于靶標(biāo)檢測的方法包括PCR-直接測序法、PCR-焦磷酸測序法、熒光定量PCR法、
PCR-基因芯片法、PCR-電泳分析、PCR.高分辨率熔解曲線法、等位基因特異性PCR法、
PCR.限制性片段長度多態(tài)性方法、原位雜交(ISH)等多種方法,每種方法的原理和優(yōu)
11
缺點(diǎn)如下:
1)PCR-直接測序法
也稱PCR-Sanger測序,該方法基于雙脫氧核糖核酸(ddNTP)末端終止法,根據(jù)核
昔酸在某一固定點(diǎn)開始延伸,隨機(jī)在某一特定堿基處終止,由于摻入的每個(gè)堿基都進(jìn)行
了熒光標(biāo)記,因此產(chǎn)生了以A、T、C、G結(jié)束的四組相差一個(gè)堿基的不同長度的系列核
酸片段;通過毛細(xì)管電泳分離這些片段后讀取待測核酸的堿基序列。Sanger法測序是
DNA序列分析的經(jīng)典方法。由于該方法可直接讀取DNA的序列,因此被認(rèn)為是基因分
型的金標(biāo)準(zhǔn)。
PCR-Sanger測序法的操作過程主要包括PCR擴(kuò)增和PCR產(chǎn)物純化、測序反應(yīng)、測
序和結(jié)果分析四個(gè)主要步喉。分析時(shí)需要設(shè)置陰性對(duì)照和陽性質(zhì)控品。該方法屬于定性
檢測,優(yōu)點(diǎn)是測序長度較長,可發(fā)現(xiàn)新的變異位點(diǎn)。主要不足:靈敏度不高,尤其是在
進(jìn)行腫瘤組織體細(xì)胞突變檢測時(shí),當(dāng)姐織中靶標(biāo)基因突變比例低于20%時(shí),可能出現(xiàn)假
陰性結(jié)果;對(duì)試劑和儀器有特殊要求,不易普及;操作復(fù)雜,成本相對(duì)較高,速度慢、
通量低。
2)PCR?焦磷酸測序法
本方法是由4種酶催化的同一反應(yīng)體系中的酶級(jí)聯(lián)化學(xué)發(fā)光反應(yīng)。實(shí)驗(yàn)需設(shè)計(jì)一條
生物素標(biāo)記的測序引物,當(dāng)引物與單鏈模板DNA退火后,在DNA聚合酶、ATP硫酸
化酶、熒光素酶和三磷酸腺甘雙磷酸酶4種酶的協(xié)同作用下,將引物上每一個(gè)dNTP的
聚合與一次熒光信號(hào)的釋放偶聯(lián)起來,通過檢測熒光的釋放和強(qiáng)度,達(dá)到實(shí)時(shí)測定DNA
序列的目的。所需試劑包括樣本處理試劑、核酸擴(kuò)增試劑、單鏈模板制備試劑、焦磷酸
測序試劑和陽性質(zhì)控品五大類。所需儀器為PCR儀和焦磷酸測序儀。為避免假陽性和
假陰性結(jié)果,應(yīng)嚴(yán)格區(qū)分陽性質(zhì)控品和反應(yīng)試劑的使用,防止因試劑污染致假陽性發(fā)生。
該方法的主要優(yōu)點(diǎn):檢測靈敏度較高,對(duì)體細(xì)胞突變和甲基化等可實(shí)現(xiàn)定量檢測;
分型準(zhǔn)確可靠,通量較高,實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)靈活,可發(fā)現(xiàn)新的突變或遺傳變異。主要缺點(diǎn):對(duì)
試劑和儀潛有特殊要求,不易普及;檢測靈敏度有限,對(duì)腫瘤組織中的低豐度體細(xì)胞突
變(<3%)容易出現(xiàn)假陰性;測序長度僅10多個(gè)堿基,不能對(duì)長片段進(jìn)行分析。
3)實(shí)時(shí)熒光PCR法
根據(jù)檢測原理的不同,實(shí)時(shí)熒光PCR法可分為探針法和非探針法兩種,前者利用
與靶序列特異雜交的探針(Taqman和分子信標(biāo))來指示擴(kuò)增產(chǎn)物的增加,后者利用熒
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光染料或特殊設(shè)計(jì)的引物來指示擴(kuò)增產(chǎn)物的增加。Taqman探針法同時(shí)綜合了5,端核酸
酶活性和熒光等技術(shù),其在反應(yīng)過程使用4條真核甘酸鏈,其中兩條為等位基因特異性
探針,兩條為PCR引物。兩條探針可分別與突變型和野生型模板互補(bǔ),其兩端分別應(yīng)
用含報(bào)告基團(tuán)和淬滅基團(tuán)的染料進(jìn)行標(biāo)記,兩條探針的報(bào)告基團(tuán)熒光染料不一樣。在進(jìn)
行SNP檢測時(shí),PCR擴(kuò)增的退火過程導(dǎo)致探針與模板雜交結(jié)合,當(dāng)引物延伸至探針處
時(shí),DNA聚合酶的5,端外切酶活性將探針的5,端報(bào)告基團(tuán)從探針上切除,使之與淬滅
基團(tuán)分離,從而釋放出相對(duì)應(yīng)的熒光,而沒有配對(duì)的探針仍然保持完整而不會(huì)發(fā)熒光。
不同的等位基因探針由于標(biāo)記的熒光染料不同,因此所發(fā)熒光信號(hào)不同,可通過對(duì)熒光
信號(hào)的檢測判斷樣本的基因型。
實(shí)時(shí)熒光PCR法靈敏度高,分型準(zhǔn)確,操作簡便快捷,所用儀器容易普及,易于
推廣使用。但該方法通量不高,探針成本較高,單個(gè)位點(diǎn)的檢測成本與樣本量有關(guān),樣
本量越小,成本越高.本方法主要適于對(duì)少量位點(diǎn)、大樣本進(jìn)行分型.目前CFDA已批
準(zhǔn)CYP2C9、VK0RC1等多種基因多態(tài)性檢測的PCR-熒光檢測試劑盒。
4)PCR-基因芯片法
該方法以特定的寡核甘酸片段作為探針,將其有規(guī)律地排列固定于支持物上,然后
將樣品DNA通過PCR擴(kuò)增、熒光標(biāo)記等程序,按堿基配對(duì)原理與芯片雜交,再通過熒
光檢測系統(tǒng)對(duì)芯片上的熒光信號(hào)進(jìn)行檢測和分析,從而迅速獲得個(gè)體的基因型信息?;?/p>
因芯片分型法的操作過程包括PCR核酸擴(kuò)增、雜交、芯片掃描和結(jié)果分析。該方法用
于DNA基因分型時(shí)屬于定性檢測,靈敏度為50ng/^Lo基因芯片法分析時(shí)需設(shè)置陰性
對(duì)照和陽性質(zhì)控品。應(yīng)用基因芯片檢測試劑盒時(shí)應(yīng)確保試劑在開封前按要求保存、各組
分液體使用前振蕩混勻,雜交和洗片操作務(wù)必在避光條件下進(jìn)行,PCR反應(yīng)液和定位參
照需避光保存,芯片加樣時(shí)注意使液體鋪滿整個(gè)反應(yīng)區(qū),但不能溢出、不能出現(xiàn)氣泡,
以防交叉污染。其主要優(yōu)點(diǎn)是可同時(shí)對(duì)多個(gè)待測SNP位點(diǎn)進(jìn)行檢測。我國CFDA已批
準(zhǔn)多種用丁藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因如"。〃2、CYP2C9.CY2c19、CYP2D6.
ADRI、ACE.VKORC/多態(tài)性檢測的基因芯片試劑盒。
5)PCR-電泳分析
該方法是指對(duì)待分析的目的基因片段進(jìn)行PCR擴(kuò)增,并通過瓊脂糖凝膠電泳或毛
細(xì)管電泳分析,根據(jù)PCR產(chǎn)物的大小對(duì)基因多態(tài)性位點(diǎn)進(jìn)行基因分型。該方法屬于定
性檢測,且只能用于對(duì)已知的多態(tài)性位點(diǎn)進(jìn)行檢測,不能識(shí)別未知多態(tài)性。瓊脂糖電泳
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法適用于對(duì)片段較長的插入缺失多態(tài)性進(jìn)行檢測,如ACE插入缺失多態(tài)性;毛細(xì)管電
泳法適于對(duì)較短的插入缺失多態(tài)性如UGTJA1^28多態(tài)性和微衛(wèi)星不穩(wěn)定性(MSI)進(jìn)
行檢測。PCR過程中需建立陽性質(zhì)控品和陰性質(zhì)控品,電泳分析時(shí)需同時(shí)用分子量標(biāo)記
物進(jìn)行片段大小的判斷。當(dāng)分子量標(biāo)記物反應(yīng)管無條帶或出現(xiàn)較弱的條帶時(shí),可能的原
因包括點(diǎn)樣孔漏、熒光染料不夠或失效、電泳時(shí)間過長或電壓過大。該方法的優(yōu)點(diǎn)是成
本低,在普通實(shí)驗(yàn)室即可開展;缺點(diǎn)是只適合對(duì)DNA插入/缺失多態(tài)性或融合基因進(jìn)行
定性測定,不能用于SNP的檢測。
6)PCR.高分辨率熔解曲線(HRM)法
該方法通過對(duì)PCR反應(yīng)的熔解曲線分析進(jìn)行基因分型。PCR擴(kuò)增的熔解曲線取決
于其擴(kuò)增序列,序列中一個(gè)堿基的差異都可導(dǎo)致雙鏈DNA的解鏈溫度發(fā)生變化。HRM
法應(yīng)用實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀監(jiān)測這種細(xì)微的溫度變化,確定所擴(kuò)增的目的片段中是否
存在突變,從而用于基因分型.HRM分析使用ICGreen等飽和熒光染料,該類染料在
飽和濃度時(shí)對(duì)PCR反應(yīng)無抑制作用,因此可以高濃度使用,從而全部結(jié)合DNA雙螺旋
結(jié)構(gòu)中的小溝。在雙鏈DNA的變性過程不存在熒光分子的重排,其特異度得到大幅提
升,因此,熔解曲線細(xì)微的變化可以反映擴(kuò)增片段中堿基的差異。應(yīng)用本方法進(jìn)行基因
分型屬于定性分析。
該方法操作簡便、快速、通量大、使用成本低、結(jié)果準(zhǔn)確,有利于實(shí)現(xiàn)閉管操作,
在進(jìn)行甲基化檢測時(shí)可根據(jù)熔解曲線確定甲基化程度的高低。該方法的缺點(diǎn)是:不能排
除待測核酸中新出現(xiàn)的遺傳變異;由于單個(gè)堿基突變導(dǎo)致DNA解鏈溫度的變化非常小,
該方法對(duì)儀器的靈敏度和分辨率有較高要求。
7)等位基因特異性PCR(Allele-specificPCR,AS-PCR)
又稱為擴(kuò)增阻滯突變系統(tǒng)PCR(AmplificationRefractoryMutationSystemPCR,
ARMS-PCR)o該技術(shù)的基本原理:由于TaqDNA聚合酶缺乏3,到5,端的外切酶活性,
3,端錯(cuò)配的堿基會(huì)導(dǎo)致引物延伸速度變慢,當(dāng)錯(cuò)配達(dá)到定程度時(shí),引物延伸將終止,
得不到特異長度的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,從而提示模板DNA沒有與引物3,端配對(duì)的堿基,反
之則有。因此,AS-PCR反應(yīng)需要兩條等位基因特異的引物和一條共用的反向引物,兩
條非特異性引物在3,端與模板錯(cuò)配,但其他部分堿基序列完全一樣。只有引物的3,端與
模板完全配對(duì)時(shí),PCR擴(kuò)增才可以進(jìn)行。PCR產(chǎn)物可通過凝膠電泳進(jìn)行分析和基因型的
判斷。該方法也可與實(shí)時(shí)熒光定量PCR結(jié)合起來進(jìn)行基因分型。該方法可以用于檢測
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各種類型的SNP,其優(yōu)勢是靈敏度高,特別適合于對(duì)腫瘤組織中的體細(xì)胞突變進(jìn)行檢測;
缺點(diǎn)是假陽性率較高。
8)PCR-限制性片段長度多態(tài)性方法
限制性片段長度多態(tài)性方法(RFLP)是一種基于酶切原理的方法,是最早用于基
因分型的經(jīng)典方法之一,現(xiàn)在仍被廣泛采用。該方法主要基于某些限制性內(nèi)切酶可以特
異性識(shí)別某一特定序列和結(jié)構(gòu)DNA,并對(duì)其進(jìn)行剪切的原理。限制性內(nèi)切酶通常識(shí)別
雙鏈DNA的某一特定序列,并在特定位置或者附近將雙鏈DNA切斷,從而產(chǎn)生較短
的DNA片段。由于限制性內(nèi)切酶識(shí)別序列的嚴(yán)格性,一個(gè)堿基的變化都可以導(dǎo)致酶切
活性的消失。利用這一特性,若待分型的SNP位點(diǎn)在某一限制性內(nèi)切酶的識(shí)別位點(diǎn)上,
將會(huì)導(dǎo)致該酶只對(duì)其中的一種等位基因具有酶切活性。因此,對(duì)位于限制性酶切識(shí)別位
點(diǎn)的SNP進(jìn)行分型時(shí),可以使用包含該位點(diǎn)的PCR產(chǎn)物與相應(yīng)的限制性內(nèi)切防進(jìn)行溫
育.酶切以后的產(chǎn)物進(jìn)行電泳,并根據(jù)酶切產(chǎn)物片段的大小來進(jìn)行基因分型.該方法不
需要任何探針,也不需要特別的儀器設(shè)備,成本較低,實(shí)驗(yàn)過程簡單,可操作性強(qiáng)。但
缺點(diǎn)也很明顯,主要是通量太低,大量分型時(shí)工作量大,并且只適用于部分SNP分型。
9)原位雜交(ISH)法
ISH法以各種人體標(biāo)本,包括相應(yīng)實(shí)驗(yàn)方法制備的細(xì)胞學(xué)和組織學(xué)標(biāo)本(福爾馬林
固定石蠟包埋)作為靶標(biāo),采用目的DNA探針與該靶標(biāo)進(jìn)行分子雜交,從而檢測相關(guān)
的靶基因異常。ISH技術(shù)按照探針標(biāo)記物的類型,可分為亮視野原位雜交和熒光原位雜
交(FISH)。ISH法檢測的靶標(biāo)具有完整的細(xì)胞核,無需進(jìn)行核酸的提取。其具體的方
法學(xué)原理見《原位雜交(ISH)指南》。在藥物代謝酶和靶點(diǎn)基因檢測中,ISH法主要用
于測定基因擴(kuò)增和基因缺失異常。
表1.各種藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測技術(shù)優(yōu)缺點(diǎn)及適用性比較
方法優(yōu)點(diǎn)缺點(diǎn)適用性
AS-PCR靈敏度高,適于對(duì)通量低對(duì)小樣本、低突變比例的
腫瘤組織中突變體細(xì)胞突變進(jìn)行檢測。
比例較低的體細(xì)
胞突變進(jìn)行檢測。
實(shí)時(shí)熒光PCR通量較高,操作簡探針較昂貴對(duì)相同位點(diǎn)、大樣本標(biāo)本
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單,儀器設(shè)備易普進(jìn)行檢測,可用于mRNA
及。表達(dá)檢測。
焦磷酸測序高通量,高靈敏需要特殊儀器設(shè)適合于較大樣本、突變比
度,可以檢測插入備。例高于5%的各種類型
/缺失突變和未知SNP檢測、甲基化位點(diǎn)的
突變。等位基因含確定。
量的比例可用于
室內(nèi)質(zhì)控。
HRM成本低,靈敏度需要特殊儀淵設(shè)適合有該類機(jī)潛的實(shí)驗(yàn)室
高,閉管操作,降備,條件摸索過程開展各種類型SNP分型研
低污染風(fēng)險(xiǎn)。較為困難究;可用于已知甲基化位
點(diǎn)的檢測.
Sanger法測序直接獲取序列,分通量低,不能檢測各種SNP的檢測,未知突
型的金標(biāo)準(zhǔn),可發(fā)突變比例小于變的篩查以及驗(yàn)證其他分
現(xiàn)未知突變。20%的SNP。型的結(jié)果。
PCR-RFLP無需特殊的儀器通量低,只適用于適用于無條件夠買貴重儀
設(shè)備,成本較低,部分SNP分型器設(shè)備的實(shí)驗(yàn)室開展小樣
實(shí)驗(yàn)過程簡單,可本的分型檢測。
操作性強(qiáng)。
基因芯片法通量高靈活度低,成本適用于具備芯片檢測能力
高,需要特殊的儀的實(shí)驗(yàn)室對(duì)已知固定位
器設(shè)備。點(diǎn)、大樣本標(biāo)本進(jìn)行檢測。
原位雜交在細(xì)胞核原位對(duì)成本高,通量低,適于對(duì)基因擴(kuò)增和缺失異
(ISH)基因的異常進(jìn)行時(shí)間較長。常進(jìn)行檢測。
檢測
5.2.3藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因檢測項(xiàng)目及類型
遺傳藥理學(xué)知識(shí)庫(PharmGKB)根據(jù)項(xiàng)目成熟程度將個(gè)體化用藥基因檢測項(xiàng)目分
為4級(jí),并認(rèn)為其中1級(jí)項(xiàng)目(包括1A級(jí)和1B級(jí))滿足臨床應(yīng)用的最高標(biāo)準(zhǔn),而4
級(jí)項(xiàng)目適于臨床應(yīng)用的證據(jù)最少⑴。1A級(jí)項(xiàng)目為同時(shí)獲臨床遺傳藥理學(xué)實(shí)施聯(lián)盟
16
(ClinicalPharmacogeneticsImplementationconsortium,CPIC)、認(rèn)可CPIC藥物基因組
學(xué)指南的醫(yī)學(xué)會(huì)、以及美國國家衛(wèi)生研究院藥物基因組學(xué)研究網(wǎng)絡(luò)(Pharmagenomics
ResearchNetwork,PGRN)認(rèn)同的項(xiàng)目,這類項(xiàng)目通常經(jīng)大規(guī)模隨機(jī)對(duì)照臨床試驗(yàn)(RCT)
對(duì)項(xiàng)目的意義進(jìn)行了論證;1B級(jí)項(xiàng)目有確切的臨床證據(jù)提示相關(guān)性,且這種相關(guān)性被
具有一定樣本規(guī)模的研究所證實(shí),但還需進(jìn)一步的臨床證據(jù)。根據(jù)檢測項(xiàng)目所涉及的基
因在影響藥物反應(yīng)中的作用機(jī)制和被測靶分子(DNA或RNA)的不同,個(gè)體化用藥分
子檢測項(xiàng)目包括藥物代謝酶與轉(zhuǎn)運(yùn)體基因遺傳多態(tài)性檢測、藥物作用靶點(diǎn)基因遺傳變異
檢測、其他基因變異檢測和藥物作用靶點(diǎn)基因mRNA表達(dá)檢測四種類型(附錄C)。
5?3儀器設(shè)備的使用、維護(hù)與保養(yǎng)
原則上按照《個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測質(zhì)量保證指南》的要求進(jìn)行。藥物代謝酶和藥物作用
靶點(diǎn)基因檢測涉及的儀器設(shè)備眾多,實(shí)驗(yàn)室可參考生產(chǎn)商提供的操作說明書編寫書面
的、有案可查的預(yù)防性維護(hù)及校準(zhǔn)計(jì)劃,確定儀器設(shè)備的維護(hù)周期,建立儀器設(shè)備口常
維護(hù)的SOP。對(duì)于某些計(jì)量分析儀器,應(yīng)依照我國計(jì)量法規(guī)定,由計(jì)量檢定機(jī)構(gòu)定期進(jìn)
行校驗(yàn),并保存好校驗(yàn)證書。加熱系統(tǒng)及冰箱等設(shè)備的維護(hù)包括對(duì)溫度進(jìn)行監(jiān)測。儀器
維護(hù)過程中要注意清潔劑的使用,尤其是儀器的光路系統(tǒng)。每臺(tái)儀器應(yīng)該配備專用的清
潔工具。在例行儀器的維護(hù)和保養(yǎng)后,應(yīng)填寫儀器維護(hù)保養(yǎng)記錄表。如維護(hù)中發(fā)現(xiàn)問題,
應(yīng)及時(shí)匯報(bào)并將出現(xiàn)的問題詳細(xì)記錄,最后由維護(hù)操作人員簽名。
5?4人員培訓(xùn)
原則上按照《個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測質(zhì)量保證指南》的要求進(jìn)行。藥物代謝酶和藥物作用
靶點(diǎn)基因檢測通常要涉及試劑配制、核酸提取、儀器編程、結(jié)果分析和報(bào)告等步驟。操
作人員需要有一定的專業(yè)技術(shù)知識(shí)和經(jīng)驗(yàn)才能獲得穩(wěn)定可靠的檢測結(jié)果。加強(qiáng)人員培訓(xùn)
是確保檢測質(zhì)量的關(guān)鍵。人員培訓(xùn)分為入職培訓(xùn)、內(nèi)部培訓(xùn)和外部培訓(xùn)。通過培訓(xùn),讓
操作人員掌握和建立安全操作的概念、“防污染”的概念、具備獨(dú)立進(jìn)行質(zhì)控活動(dòng)和儀
器維護(hù)的能力,可對(duì)試劑和質(zhì)控品的出入庫及使用情況、設(shè)備保養(yǎng)等情況進(jìn)行準(zhǔn)確記錄,
進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。實(shí)驗(yàn)室工作人員在培訓(xùn)后書面確認(rèn)其己接受適當(dāng)?shù)呐嘤?xùn),閱讀并理解了
相關(guān)SOP。實(shí)驗(yàn)室應(yīng)對(duì)實(shí)驗(yàn)室工作人員進(jìn)行處事能力考核和周期性能力再考核,定期開
展內(nèi)部培訓(xùn)。外部培訓(xùn)包括國家衛(wèi)生計(jì)生委臨床檢驗(yàn)中心和國家衛(wèi)生計(jì)生委個(gè)體化醫(yī)學(xué)
檢測培訓(xùn)基地等機(jī)構(gòu)組織開展的各種技術(shù)培訓(xùn)。
5.5檢測體系的性能驗(yàn)證
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原則上按照《個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測質(zhì)量保證指南》的要求進(jìn)行。臨床檢驗(yàn)實(shí)驗(yàn)室應(yīng)用的
體外診斷試劑包括國家藥品食品監(jiān)督管理總局(CFDA)批準(zhǔn)的試劑盒和國家衛(wèi)生計(jì)生
委個(gè)體化醫(yī)學(xué)檢測試點(diǎn)單位通過性能評(píng)定、具有嚴(yán)格標(biāo)準(zhǔn)操作規(guī)程(SOP)的自配試劑
(LDT)o所有試劑都需進(jìn)行性能評(píng)價(jià)。實(shí)驗(yàn)室所購買的商業(yè)化的儀器應(yīng)根據(jù)說明書進(jìn)
行驗(yàn)證。在報(bào)告結(jié)果之前實(shí)驗(yàn)室應(yīng)該證明其性能能夠滿足廠家規(guī)定的準(zhǔn)確度、精密度、
線性與可報(bào)告范圍和參考區(qū)間。實(shí)驗(yàn)室還應(yīng)該為每個(gè)檢測系統(tǒng)建立性能規(guī)范,包括適用
性、準(zhǔn)確度、精密度和分析特異性(包括干擾物質(zhì))、可報(bào)告范圍和其他重要特性,并
根據(jù)性能規(guī)范確定系統(tǒng)的校準(zhǔn)和質(zhì)控程序,保持性能特征建立、校準(zhǔn)和質(zhì)控程序相關(guān)活
動(dòng)的記錄。同時(shí)也需對(duì)檢驗(yàn)中的耗材進(jìn)行質(zhì)檢。
個(gè)體化醫(yī)學(xué)分子檢測包括定性檢測和定量檢測。定性檢測的性能驗(yàn)證指標(biāo)主要包括
重復(fù)性/精密度、準(zhǔn)確度(突變型的檢測能力)、分析特異性、檢出限等,可參考美國臨
床實(shí)驗(yàn)室標(biāo)準(zhǔn)化協(xié)會(huì)(CISI)的F.PI2—A2文件進(jìn)行「定量檢測監(jiān)測體系性能驗(yàn)證的指
標(biāo)主要包括準(zhǔn)確度、精密度、線性、可報(bào)告范圍、檢出限、參考區(qū)間、靈敏度、特異性
等。
準(zhǔn)確度的評(píng)價(jià)有兩種方法,一種方法是與標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)進(jìn)行比較,使用待評(píng)估的項(xiàng)目對(duì)
已知標(biāo)準(zhǔn)的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(如定性檢測中用到的陽性參照品)進(jìn)行分析,將檢測結(jié)果與已知
標(biāo)準(zhǔn)值進(jìn)行比較;第二種方法是同時(shí)用待評(píng)估項(xiàng)目與標(biāo)準(zhǔn)方法(或參考方法)對(duì)同一批
次樣品進(jìn)行分析,然后將不同方法得到的結(jié)果進(jìn)行對(duì)比分析。精密度是指重復(fù)檢測條件
下,獲得的獨(dú)立測量結(jié)果間的一致程度,是對(duì)檢測體系隨機(jī)誤差的一種度量,常用標(biāo)準(zhǔn)
差表示,標(biāo)準(zhǔn)差越小精密度越好。定性檢測的精密度還包括一份陽性或陰性樣本在多次
檢測中,是否能得到可重復(fù)的陽性或陰性結(jié)果。藥物代謝酶和藥物作用靶點(diǎn)基因變異檢
測體系進(jìn)行準(zhǔn)確度、精密度等性能驗(yàn)證時(shí)所使用的參考物質(zhì)為各種突變型和野生型質(zhì)粒
或突變細(xì)胞株。
線性分析可直接分析己知濃度的樣品,也可將一定濃度的樣品進(jìn)行系列稀秤后,根
據(jù)稀釋因子來研究檢測值與逐步下降的預(yù)期估計(jì)濃度之間是否存在線性??蓤?bào)告范圍是
能夠報(bào)告的可靠的最低和最高檢測結(jié)果,實(shí)驗(yàn)室可通過“多點(diǎn)法”進(jìn)行簡單驗(yàn)證,推薦
應(yīng)用5個(gè)不同濃度水平的樣品進(jìn)行驗(yàn)證。
LoD是指可被檢測體系檢出的最低檢測濃度,又稱最小檢測濃度或檢測底限。建立
和驗(yàn)證LoD時(shí),需同時(shí)建立、驗(yàn)證空白檢測限。檢出限一般由廠家、方法建立者完成,
18
實(shí)驗(yàn)室LDT試劑應(yīng)確立方法的LoD。
臨界值是鑒別樣品、作為判斷特定疾病、狀態(tài)或被測量物存在與否的界限的量值。
測量結(jié)果高于臨界值判斷為陽性,低于臨界值判斷為陰性,接近臨界值判斷為非確定性。
臨界值的選擇決定檢驗(yàn)的診斷特異性和診斷靈敏度。目前已有部分臨床治療指南將藥物
靶點(diǎn)基因的mRNA表達(dá)水平高低(如m
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