實(shí)驗(yàn)七等電聚焦電泳測(cè)定蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)_第1頁(yè)
實(shí)驗(yàn)七等電聚焦電泳測(cè)定蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)_第2頁(yè)
實(shí)驗(yàn)七等電聚焦電泳測(cè)定蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)_第3頁(yè)
實(shí)驗(yàn)七等電聚焦電泳測(cè)定蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)_第4頁(yè)
實(shí)驗(yàn)七等電聚焦電泳測(cè)定蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)_第5頁(yè)
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實(shí)驗(yàn)七等電聚焦電泳測(cè)定蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)第1頁(yè)/共13頁(yè)一、目的要求1.學(xué)習(xí)和掌握?qǐng)A盤電泳技術(shù)2.學(xué)習(xí)和掌握等電聚焦電泳測(cè)定蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)原理和方法

第2頁(yè)/共13頁(yè)二、原理蛋白質(zhì)屬于兩性電解質(zhì),所帶電荷的性質(zhì)與數(shù)量與所處環(huán)境的pH值有關(guān):環(huán)境pH<pI,帶正電,電場(chǎng)下向陰極移動(dòng);環(huán)境pH>pI,帶負(fù)電,電場(chǎng)下向陽(yáng)極移動(dòng);環(huán)境pH=pI,不帶電,電場(chǎng)下不移動(dòng)。有一類兩性電解質(zhì):它具有依次遞變而又相差不大的等電點(diǎn),在電場(chǎng)下形成遞變而又連續(xù)的pH梯度,故在電泳介質(zhì)中加入這種物質(zhì)則能造成介質(zhì)pH由酸到堿逐步變化。第3頁(yè)/共13頁(yè)等電聚焦原理:

利用:1)各種蛋白質(zhì)pI不同

2)兩性電解質(zhì)載體在電場(chǎng)作用下,按各自pI形成從陽(yáng)極到陰極逐漸增加的連續(xù)而穩(wěn)定的pH梯度以聚丙烯酰胺凝膠為電泳支持介質(zhì),并在凝膠中加入兩性電解質(zhì)載體,在電場(chǎng)作用下,蛋白質(zhì)在此pH梯度的凝膠中泳動(dòng),當(dāng)遷移至pH值等于pI處時(shí),就不再泳動(dòng),而被濃縮成狹窄的區(qū)帶。第4頁(yè)/共13頁(yè)兩性電解質(zhì)載體(carrierampholytes)(1)易溶于水,在pI處應(yīng)有足夠的緩沖能力,形成穩(wěn)定的pH梯度,不致被蛋白質(zhì)或其它兩性電解質(zhì)改變pH梯度。(2)在pI處應(yīng)有良好的電導(dǎo)及相同的電導(dǎo)系數(shù),以保持均勻的電場(chǎng)。(3)分子量小,可通過(guò)透析或分子篩法除去,便于與生物大分子分開。(4)化學(xué)性能穩(wěn)定,與被分離物不起化學(xué)反應(yīng),也無(wú)變性作用,其化學(xué)組成不同于蛋白質(zhì)。第5頁(yè)/共13頁(yè)三、實(shí)驗(yàn)試劑與儀器1)兩性電解質(zhì)2)30%丙烯酰胺溶液3)TEMED4)10%過(guò)硫酸銨溶液5)負(fù)極緩沖液:0.1MNaOH正極緩沖液:0.1M磷酸或硫酸固定液:10%(W/V)三氯乙酸染色液脫色液蛋白質(zhì)等電點(diǎn)標(biāo)準(zhǔn)電泳儀圓盤電泳槽第6頁(yè)/共13頁(yè)圖聚丙烯酰胺凝膠圓盤電泳示意圖

(A為正面,B為剖面)第7頁(yè)/共13頁(yè)四、操作方法1.凝膠柱的制備(1)玻璃管的一端插在橡皮帽中(2)配膠表10mL7.5%凝膠的配制試劑名稱 體積(mL) 凝膠貯液 2.5 兩性電解質(zhì)載體 0.5 蒸餾水 6.7510%過(guò)硫酸銨 0.0510%TEMED 0.1 蛋白質(zhì)混合樣品 0.1 混勻后置真空干燥器中抽氣10min

第8頁(yè)/共13頁(yè)(3)將配好的凝膠溶液用細(xì)長(zhǎng)頭滴管加到預(yù)先準(zhǔn)備好的玻管中,至離上端1cm處,再用注射器緩緩加水3-5mm高。(4)待凝膠聚合2.電泳

將裝有膠的玻管固定到電泳槽上槽的洞中(安裝時(shí)要保證凝膠管垂直且橡膠塞孔密封不漏)在上槽中裝入0.1mol/L氫氧化鈉溶液,在下槽中加入0.1mol/L磷酸緩沖液。連接到電泳儀,接通電源,調(diào)電壓至160V,聚焦過(guò)夜,至電流降為0,則可關(guān)閉電源。第9頁(yè)/共13頁(yè)3.剝膠

電泳結(jié)束后,取下凝膠管,用蒸餾水洗凈兩端電極液,在凝膠條的正極端作上標(biāo)記。用灌滿水的注射器長(zhǎng)針頭插入凝膠與玻管管壁之間,邊壓水邊慢慢轉(zhuǎn)動(dòng)玻管,推針前進(jìn),同時(shí)注入水,靠水流壓力和潤(rùn)滑力將玻璃管內(nèi)壁與凝膠分開,凝膠條即可流出。4.固定染色

取出凝膠條放在一塊潔凈的玻板上,用尺量出固定前的凝膠條長(zhǎng)度。放入帶蓋試管中加入固定液。固定20min2后,倒掉固定液后用脫色液漂洗2次,再染色1h,用蒸餾水漂洗數(shù)次后用脫色液脫色,直至蛋白質(zhì)區(qū)帶清晰,量出蛋白帶距正極端的距離。第10頁(yè)/共13頁(yè)5.蛋白質(zhì)條帶聚焦位置的計(jì)算

求出蛋白質(zhì)聚焦部位距凝膠條正極端的實(shí)際長(zhǎng)度為:蛋白區(qū)帶中心距凝膠條正極端的距離

固定染色前凝膠條長(zhǎng)度

固定染色后凝膠條長(zhǎng)度

第11頁(yè)/共13頁(yè)6.pH梯度的制作

取已知等電點(diǎn)的標(biāo)準(zhǔn)蛋白聚焦凝膠條放在玻板上,量出各蛋白條帶至正極端的實(shí)際長(zhǎng)度,以條帶實(shí)際長(zhǎng)度為橫坐標(biāo),對(duì)應(yīng)的pH值為縱坐標(biāo)

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